Cho, Jae Won;Lim, Chun Kyu;Shin, Mi Ra;Bang, Kyoung Hee;Koong, Mi Kyoung;Jun, Jin Hyun
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.33
no.3
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pp.171-178
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2006
Objective: Human embryonic stem (ES) cells have a great potential in regenerative medicine and tissue engineering. The human ES cells could be differentiated into specific cell types by treatments of growth factors and alterations of gene expressions. However, the efficacy of guided differentiation and isolation of specific cells are still low. In this study, we characterized isolated cells from differentiated human ES cells by magnetic activated cell sorting (MACS) system using specific antibodies to cell surface markers. Methods: The undifferentiated hES cells (Miz-hESC4) were sub-cultured by mechanical isolation of colonies and embryoid bodies were spontaneously differentiated with DMEM containing 10% FBS for 2 weeks. The differentiated cells were isolated to positive and negative cells with MACS system using CD34, human epithelial antigen (HEA) and human fibroblast (HFB) antibodies, respectively. Observation of morphological changes and analysis of marker genes expression were performed during further culture of MACS isolated cells for 4 weeks. Results: Morphology of the CD34 positive cells was firstly round, and then it was changed to small polygonal shape after further culture. The HEA positive cells showed large polygonal, and the HFB positive spindle shape. In RT-PCR analysis of marker genes, the CD34 and HFB positive cells expressed endodermal and mesodermal genes, and HEA positive cells expressed ectodermal genes such as NESTIN and NF68KD. The marker genes expression pattern of CD34 positive cells changed during the extension of culture time. Conclusion: Our results showed the possibility of successful isolation of specific cells by MACS system from undirected differentiated human ES cells. Thus, MACS system and marker antibodies for specific cell types might be useful for guided differentiation and isolation of specific cells from human ES cells.
Background: Cytokine-mediated ex vivo expansion has been proposed as a means of increasing the number of cord blood (CB) hematopoietic stem cells for transplantation. As well as stem cell number, stromal cells are necessary for functional maturation of hematopoiesis. The purpose of this study was to analyze the development of stromal cells during ex vivo expansion of CB $CD34^+$ cells. Methods : $CD34^+$ cells were purified from CB by magnetic bead selection. The levels of of interleukin-3, interleukin-$1{\beta}$, interleukin-6, granulocyte macrophagecolony stimulating factor and tumor necrosis factor-${\alpha}$ were measured in culture supernatants on 0, 1, 2, and 3 weeks, using ELISA techniques. CB $CD34^+$ cells were expanded in Iscoves modified Dulbeccos medium in the presence of several cytokines. The expression of E-selectin, vascular cell adhesion molecule-1, intercellular adhesion molecule-1, platelet/endothelial cell adhesion molecule-1, von Willebrand factor, vimentin, and CD14 in newly developed stromal cells was examined by immunocytochemical method. Relevant extracellular matrix (ECM) proteins and proper cytokines were also assayed for the most suitable condition for expansion of stromal cells. Results: Several cytokines were found to have been produced by CB $CD34^+$ cells as well as bone marrow-derived $CD34^+$ cells. During ex vivo expansion of CB $CD34^+$ cells, stromal cells appeared in the culture by day 4 and expanded over the following 7-10 days before being confluent by day 2 1. These cells expressed surface markers characteristic of cells of endothelial lineage. Furthermore, these stroaml cells also expanded effectively when treated with thrombopoietin+flt-3 ligand+stem cell factor+leukemia inhibitory factor or 0.1% poly-L-lysine-coated wells. Conclusion: Stromal cells were developed during ex vivo expansion of CB $CD34^+$ cells and that this development could be enhanced further by treating the stromal cells with cytokines or ECM.
A major barrier to progress in pig to primate organ transplantation or cell therapy is the presence of terminal ${\alpha}$-1,3-galactosyl epitopes on the surface of pig cells. Therefore, the purpose of this experiment was to establish and cha- racterize mesenchymal stromal/stem cells (MSCs) derived from ${\alpha}$-1,3-galactosyltransferase (GalT) knock out (GalT KO) pig to confirm their potential for cell therapy. Bone marrow (BM)-MSCs from GalT KO pig of 1 month old were isolated by Ficoll-Paque PLUS gradient and cultured with A-DMEM + 10% FBS on plastic dishes in 5% $CO_2$ incubator at 38.5. GalT KO BM-MSCs were analyzed for the expression of CD markers ($CD45^-$, $29^+$, $90^+$ and $105^+$) and in vitro differentiation ability (adiopogenesis and osteogenesis). Further, cell proliferation capacity and cell aging of GalT KO BM-MSCs were compared to Wild BM-MSCs by BrdU incorporation assay (Roche, Germany) using ELISA at intervals of two days for 7 days. Finally, the cell size was also evaluated in GalT KO and Wild BM-MSCs. Statistical analysis was performed by T-test (P<0.05). GalT KO BM-MSCs showed fibroblast-like cell morphology on plastic culture dish at passage 1 and exhibited $CD45^-$, $29^+$, $90^+$ and $105^+$ expression profile. Follow in ginduction in StemPro adipogenesis and osteogenesis media for 3 weeks, GalT KO BM-MSCs were differentiated into adipocytes, as demonstrated by Oilred Ostaining of lipid vacuoles and osteocytes, as confirmed by Alizarinred Sstaining of mineral dispositions, respectively. BrdU incorporation assay showed a significant decrease in cell proliferation capacity of GalT KO BM-MSCs compared to Wild BM-MSCs from 3 day, when they were seeded at $1{\times}10^3$ cells/well in 96-well plate. Passage 3 GalT KO and Wild BM-MSCs at 80% confluence in culture dish were allowed to form single cells to calculate cell size. The results showed that GalT KO BM-MSCs($15.0{\pm}0.4{\mu}m$) had a little larger cell size than Wild BM-MSCs ($13.5{\pm}0.3{\mu}m$). From the above findings, it is summarized that GalT KO BM-MSCs possessed similar biological properties with Wild BM-MSCs, but exhibited a weak cell proliferation ability and resistance to cell aging. Therefore, GalT KO BM-MSCs might form a good source for cell therapy after due consideration to low proliferation potency in vitro.
Background : As the pleural inflammation progresses, exudative pleural fluid becomes loculated rapidly with pleural thickening. Complete drainage is important to prevent pleural fibrosis, entrapment and depression of lung function. Intrapleural urokinase instillation therapy has been advocated as a method to facilitate drainage of gelatinous pleural fluid and to allow enzymatic debriment of pleural surface. This study was designed to investigate the predictors of effectiveness of intrapleural urokinase in the treatment of loculated pleural effusion. Method : Thirty-five patients received a single radiographically guided pig-tail catheter ranging in size from 10 to 12 French. Twenty-two patients had tuberculous pleural effusions, and 13 had non-tuberculous postpneumonic empyemas. A total of 240,000 units of urokinase was dissolved in 240 ml of normal saline and the aliquots of 80mL was instilled into the pleural cavity via pig-tail catheter per every 8hr. Effectiveness of intrapleural urokinase instillation therapy was assessed by biochemical markers, ultrasonography, and technical details. A greater than 50% improvement on follow-up chest radiographs was defined as success group. Result : Twenty-seven of 35 (77.1%) patients had successful outcome to urokinase instillation therapy. Duration of symptoms before admission was shorter in success group ($11.8{\pm}6.9day$) than in failure group ($26.62{\pm}16.5day$) (P<0.05). Amount of drained fluid during urokinase therapy was larger in success group ($917.1{\pm}392.7ml$) than in failure group ($613.8{\pm}259.7ml$) (P<0.05). Pleural fluid glucose was higher in success group ($89.7{\pm}35.9mg/dl$) than in failure group ($41.2{\pm}47.1mg/dl$) (P<0.05). Pleural fluid LDH was lower in success group ($878.4{\pm}654.3IU/L$) than in failure group ($2711.1{\pm}973.1IU/L$) (P<0.05). Honeycomb septated pattern on chest ultrasonography was observed in six of eight failure group, but none of success group (P<0.05). Conclusion : Longer duration of symptoms before admission, smaller amount of drained fluid during urokinase therapy, lower glucose value, higher LDH value in pleural fluid examination, and honeycomb septation pattern on chest ultrasonograph were predictors for failure group of intrapleural urokinase instillation therapy.
Background : The cell-mediated immune response plays an important role in tuberculosis. After being activated by mycobacterial antigens, T lymphocytes express a high affinity receptor (IL-2R) for interleukin-2 (IL-2) on their own surface and release a soluble fraction of the IL-2 receptor (sIL-2R) from the cell membrane into the circulation. Neopterin is a metabolite of guanosine-triphosphate, which is produced by stimulated macrophages under the influence of IFN-$\gamma$ with a T lymphocyte origin. Therefore, the utility of sIL-2R, IFN-$\gamma$ and the neopterin levels as immunologic indices of the cell-mediated immune response and severity of disease in patients with pulmonary tuberculosis was assessed. Methods : The serum sIL-2R, IFN-$\gamma$ and neopterin levels were measured in 39 patients with pulmonary tuberculosis, 6 patients with tuberculous lymphadenitis prior to treatment and 10 healthy subjects. The serum and pleural sIL-2R, neopterin and ADA levels were measured in 22 patients with tuberculous pleurisy. The patients with pulmonary tuberculosis were divided into a mild, moderate and severe group according to the severity by ATS guidelines. To compare the results from these patients with those of the pretreatment levels, the sIL-2R, IFN-$\gamma$ and neopterin levels were measured in 36 of the 39 patients(1 patient, expired; 2 patients were referred to a sanitarium) with pulmonary tuberculosis after 2 months of treatment. Results : 1) the serum sIL-2R and IFN-$\gamma$ levels were elevated in patients with tuberculosis when compared to those of healthy subjects (p>0.05). The neopterin concentration in the serum was significantly lower in patients with pulmonary tuberculosis($2967{\pm}2132.8$ pg/ml) than in healthy controls($4949{\pm}1242.1$ pg/ml)(p<0.05). 2) In the pulmonary tuberculosis group, the serum sIL-2R and IFN-$\gamma$ levels were higher in patients with severe disease than those in patients with mild and moderate disease. However, the neopterin levels declined as the pulmonary tuberculosis became more severe (p<0.01). 3) The mean serum sIL-2R and IFN-$\gamma$ levels declined from $1071{\pm}1139.4$ U/ml to $1023{\pm}1920.9$ U/ml(p>0.05), $41{\pm}52.8$ pg/ml to $22{\pm}23.9$ gm/ml(p<0.05), respectively, after 2 month of treatment. The mean serum neopterin levels increased from $3158{\pm}2272.6$ pg/ml to $3737{\pm}2307.5$ pg/ml(p>0.05) after a 2 month of treatment. These findings were remarkable in the severe group of pulmonary tuberculosis with a clinical correlation. 4) In the patients with tuberculous pleurisy, the serum sIL-2R and ADA were significantly higher than those in the pleural fluid, However, the neopterin levels in the sera and pleural effusion were similar. Conclusion : On the basis of this study, sIL-2R, IFN-$\gamma$ and neopterin measurements may not only provide an insight into the present state of the cell-mediated immune response, but also serve as parameters monitoring of the prognosis of the disease, particularly in patients with severe pulmonary tuberculosis. In addition, an assay of the pleural sIL-2R levels might signal a stimulated local immunity including T cell activation in the tuberculous pleural effusion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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