A feeding trial was conducted to study the effect of tannin rich Pakar (Ficus infectoria) leaves on microbial profile, rumen fermentation and nutrient utilization in goats. Eight goats divided in two groups were fed pakar leaves (experimental group) and green oats (control group) as sole roughage source along with a fixed quantity of concentrate mixture for a period of 3 months. Two metabolic trials of six days duration were conducted after 30 and 90 days of experimental feeding. The dry matter intake was significantly higher (p<0.05) and digestibility's of DM, OM, CP, EE, NDF and ADF were reduced in experimental as compared with the control group. The TDN intake was similar (236.52 vs. 240.39 g/d) in both the groups. All the animals were in positive nitrogen balance. The concentration of ammonia nitrogen, TVFA, lactic acid and activities of xylanase and protease were reduced in pakar leaves fed goats. The rumen microbial profile as obtained by MPN technique showed no change in total bacterial population but total fungi and cellulolytic bacteria were reduced (p<0.05), whereas, tannin degrading/tolerant bacteria increased with the feeding of pakar leaves. Real time PCR data revealed a decrease in Ruminococcus flavefaciens, an increase in methanogens and no change in the Fibrobacter succinogenes population by feeding of pakar leaves.
This study was determined protein reaction, antioxidative activity, nitrite scavening ability and antimicrobial activity of tannins isolated from astringent persimmon fruits. Tannins extracted from green persimmon fruits reacted highly with BSA(bovine serum albumin). Reactions between tannins and BSA were more active when contents of tannin were higher than that of BSA. Antioxidative abilities of green persimmon tannin were comparable to that of BHT(butylated hydroxytoluene). Green persimmon tannins exhibited remarkable nitrite-scavenging activity. Different antimicrobial activities of persimmon tannins were observed depending on the maturity. The growth of V. parahaemolyticus and E coil were highly inhibited by the addition of persimmon tannins. Tannins from soft persimmon did not have antimicrobial activities against B. subtilis and S. typhimurium.
The effect of cyclic-AMP on the induction of acid phosphatase activity in barley aleurone layers was examined. Tannic acid was used as a inhibitor. Decursinol and coumarin were also used as a comparison. Maxiumu promotion of the enzyme activity was obtained with 10-5M cyclic-AMP, but this promotion was lower than that of 10-5M GAS induced enzyme activity in incubation medium. The inhibition rate in the addition of tannic acid was shown 17% and 63% at a ratio to GAs (by weight) of 10 : 1, and 58% and 94% at a ratio of 100 : 1 treated with GAs, and cyclic-AMP, respectively. The most potentiation of 10-6M GAS effect was induced by the additiion of suboptimal concentration (10-6M) of cyclic-AMP. Additional GAs and cyclic-AMP were shown the recovery of the enzyme activity inhibited by tannic acid. The combination with cyclic-AMP and theophylline enhanced the enzyme activity, too. Any other nucleotides tested except cyclic-AMP didn't show the action. There were no differences in acid phosphatase isozyme patterns by polyacrylamide disc electrophoresis, in conjunction with the different additions but the size of bands showed great differences. Especially, the 3rd band and the 5th band group were remarkable.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.27
no.4
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pp.648-652
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1998
Astringency in persimmons was removed by immersing in 0.5% acetic acid or various concentrations(0.1%, 0.5%, and 1.0%) of chitosan solutions for 4 days at 18$^{\circ}C$. During 5-days immersion, soluble tannin contents in persimmons decreased more rapidly while pH, 。Brix, and hardness decreased more slowly with increasing chitosan concentration. No noticeable color changes and decay were observed during this period. Sensory analyses 4 days after immersion indicated that persimmons immersed in 1.0% chitosan solution showed the best results for firmness and overall acceptability.
Aracri, Fernanda Mansano;Cavalcanti, Rayza Morganna Farias;Guimaraes, Luis Henrique Souza
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.11
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pp.1749-1759
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2019
Aspergillus ochraceus biofilm, developed on an inert support, can produce tannase in Khanna medium containing 1.5% (w/v) tannic acid as the carbon source, at an initial pH of 5.0, for 72 h at 28℃. Addition of 0.1% (w/v) yeast extract increased enzyme production. The enzyme in the crude filtrate exhibited the highest activity at 30℃ and pH 6.0. At 50℃, the half-life (T50) was 60 min and it was 260 min at pH 6.0. In general, addition of detergents and surfactants did not affect tannase activity significantly. Tannase has potential applications in various biotechnological processes such as the production of propyl gallate and in the treatment of tannin-rich effluents. The content of tannins and total phenolic compounds in effluents from leather treatment was reduced by 56-83% and 47-64%, respectively, after 2 h of enzyme treatment. The content of tannins and total phenolic compounds in the sorghum flour treated for 120 h with tannase were reduced by 61% and 17%, respectively. Interestingly, the same A. ochraceus biofilm was able to produce tannase for three sequential fermentative process. In conclusion, fungal biofilm is an interesting alternative to produce high levels of tannase with biotechnological potential to be applied in different industrial sectors.
The purpose of this study was to measure the bioactivity and antioxidant activity of Orostachys japonicus A. Berger. Orostachys japonicus A. Berger have been known to contain functional materials such as kaempferol, hydroquinone, methyl gallate, quercetin, gallic acid etc. To identify the main functional materials of Orostachys japonicus A. Berger, the contents of flavonoid and phenol were measured. We extracted Orostachys japonicus A. Berger powder from four solvents such as chloroform:methanol (CM, 2:1, v/v), distilled water (DW), 70% methanol, 70% ethanol. After that, this study determined tannin, total phenol, flavonoid content, DPPH radical scavenging activity, ABTS radical scavenging activity, ferric reducing antioxidant power and reducing power of Orostachys japonicus A. Berger extracts and as results of comparing each extract. respectively. From the above results shows that antioxidant activity and bioactivity of Orostachys japonicus A. Berger extracts was higher in the order of 70% ethanol, 70% methanol, DW and CM (p<0.05). The results showed that antioxidant activity of Orostachys japonicus A. Berger extracts supposed to affect by the total phenol and flavonoid contents.
The present study were conducted to determine physiological activities and antioxidant effects [2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging activity, 2,2-azino-bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) radical scavenging activity, reducing power, Ferric Reducing Antioxidant Power (FRAP) and Fe2+ (ferrous ion) chelating capacity] of 70% methanol, chloroform:methanol, 2:1 volume ratio (CM) and ethyl acetate extract of turmeric (Curcuma longa L.). Bioactive compound of tannin $0.125{\pm}0.007mg$ Catechin Equivalent (CE)/g dry weight. Turmeric extracts yield were 70% methanol 16.54%, CM 5.64% and ethyl acetate 4.14%, respectively. Antioxidant activity of the samples exhibited a dose-dependent increase. Results showed that extraction solvent had significant effects on total flavonoid content and antioxidant effects of ethyl acetate. But ferrous ion-chelating capacity of 70% methanol extract was higher than CM and ethyl acetate extract. From the results of this study, turmeric can be utilized as a valuable and potential nutraceutical for the functional food industry.
Sucrose, glucose, starches hydrolyzates and raw starchy materials hydrolyzates were caramelized using various catalysis and the caramel products were analysed, in order to carry out the basic research for the replacement of caramel coloring. The results obtained were summarized as follows. 1. The caramel which was manufactured by sucrose syrup being pH 3.5 adjusted by sulfuric acid showed strong color intensity and hue as well as good stability in the solutions of table salt, tannin and alcohol. 2. The product caramelized from sucrose syrup being pH 9.5 adjusted by sodium carbonate showed very strong color intensity and black color component, and was quite stable in alcohol solution but not in table salt and tannin solutions. 3. The caramel products made from sucrose syrup using ammonium salts of strong acid like $NH_4Cl$ and $(NH_4)_2SO_4$ as catalyst showed strong color intensity and black color component but hazy apparence in solution of table salt, tannin and alcohol. 4. The product caramelized from glucose syrup being pH 9.5 adjusted by sodium carbonate indicated strong color intensity but weak red color component and was transparent in solution of table salt and alcohol but hazy in tannin solution. 5. In glucose caramel using $NH_4Cl$, $(NH_4)_2SO_4$, $(NH_4)_2CO_3$ and $(NH_4)_2SO_3$ as catalyst, $NH_4Cl$ plot was very weak in color intensity and insufficient in red color component but stable in solution of table salt, tannin and alcohol. In the case of $(NH_4)_2CO_3$, $(NH_4)_2SO_4$ and $(NH_4)_2SO_3$ plots, all products were strong in color intensity but little insufficient in red color component. On the stability in solutions, $(NH_4)_2SO_3$ plot was stable in two solutions expect tannin solution, $(NH_4)_2CO_3$ plot was only stable in alcohol solution and $(NH_4)_2SO_3$ plot was only stable in table salt solution. 6. When the acid hydrolyzed starch syrups without neutralization were caramelized using $(NH_4)_2SO_4$ as catalyst, the potato starch hydrolyzate caramel showed higher in color intensity being similar to its of glucose caramel than sweet potato starch hydrolyzate caramel and corn starch hydrolyzate caramel. 7. Dried sweet potato powder, dried acorns powders, the acorns (from Q. serrata THUNB and Q. acutissima CARR.) powders extracted with water for 7 days and with 50% alcohol solution for 24 hrs were hydrolyzed by sulfuric acid in autoclave at $3.5kg/cm^2$ as pressure for 60 mins, and were caramelized using $(NH_4)_2SO_4$ as catalyst. It was supposed that all of those products were poor quality on color and stability in solutions at the viewpoint of food coloring matter.
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.37
no.1
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pp.61-66
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2011
Antioxidant activity of Geranium nepalense subsp. thunbergii extract was evaluated by DPPH free radical scavenging assay. Geranium nepalense subsp. Thunbergii extract contains tannin, (-)epicatechin, kaempferitin, kaepferol -7-rhamnoside, brevifolin, corilagin, pyrogallol, ellagitannin, geraniin, gallic acid, succinic acid, quercetin, protocatechuic acid, etc. Geranium nepalense subsp. Thunbergii showed excellent antioxidant activity compared to positive control, quercetin. Geranium nepalense subsp. thunbergii extract showed a 98.33 % inhibition of DPPH radical at a concentration of $50\;{\mu}g/mL$. Quercetin showed a 78.05 % inhibition of DPPH radical at the same concentration. To investigate reactive oxygen species (ROS) scavenging activity, Geranium nepalense subsp. thunbergii extract was treated to human keratinocytes (HaCaT). $IC_{50}$ value of Geranium nepalense subsp. thunbergii extract was $43.22\;{\mu}g/mL$ and $IC_{50}$ value of quercetin was $102.35\;{\mu}g/mL$. Geranium nepalense subsp. thunbergii extract showed excellent antioxidant activity. Skin irritation test and cytotoxicity test suggested that Geranium nepalense subsp. thunbergii extract is a safe antioxidant ingredient for cosmetics.
Six species under the basidiomycetes were screened for extracellular tannase (tannin acyl hydrolase EC 3.1. 1.20) production in submerged culture and Lenzites betulina was found to be most effective for the production of tannase. The optimum cultural conditions for tannase production were $25^{\circ}C$, pH 6.0 and 21 days of culture period, The efficient composition of culture medium for the production of tannase was performed in synthetic medium containing tannic acid, 2g; sucrose, 5g; bacto-peptone, 2g; ,$ KH_2PO_4, \;2g,\; MgSO_4.7H_2O \;0.5g,\; CuS0_4.5H_2O$, 2 mg; thiamine HCl, 100 ug and distilled water 100 ml, The tannase produced from Lenzites bdulin*r was 223.3 unit (umole of gaUic acidiml of brothlmin). The tannase had an optimal reaction conditions ofpH 6.0 and temperature of $40^{\circ}C$. The enzyme was stable at temperature below $40^{\circ}C$ and lost its activity by 50% above $60^{\circ}C$. And the stable pH range was 5.5 to 6.0.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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