유소직 세포들은 aldose인 D-glucose ketose인 D-fructose에 대하여 다른 능동 수송계를 소유하고 있었다. D-glucose와 D-fructose 수송계의 $K_{m}$ 값은 각각 0.28 mM과 15.02mM이었다. D-mannose는 $K_{m}$ 값이 0.44 mM로 D-glucose와 유사하였지만, 그러나 D-glucose와는 다른 수송계를 소유하고 있었다. L-glucose도 고유한 수송계를 통하여 세포내로 수송되었으며, 그러나 그 기능을 전혀 알지 못하고 있다. 유조직 원형질체는 단당류 능동 수송계만을 소유하고, 이당류인 sucrose능동 수송계는 소유하지 않고 있었다. 발달 초기단계에 있는 사부 원형질체는 glucose와 sucrose 수송계를 동시에 소유하고 있었다. 완전히 발달된 사부세포에서는 이미 존재하였던 glucose 능동 수송계는 사라지고, 새로 유도된 sucrose 능동 수송계만 존재하는 것으로 측정되었다.
BACK, Kyoungwhan;SHIN, Dong Hyun;KIM, Kil Ung;De HAAS Cynthia R.;CHAPPELL Joseph;CURTIS Wayne R.
식물조직배양학회지
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제24권5호
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pp.279-284
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1997
Hyoscyamus muticus의 phytoalexin으로 알려진 solavetivone, lubimin, rishitin 생합성에 결정적 역할을 담당하는 isoprenoid pathway의 첫 분지효소인 vetispiradiene synthase의 유도특성과 solavetivone, lubimin phytoalexin 생합성과의 관련성을 구명하기 위하여 H. muticus 현탁세포배양 및 모상근배양에 Rhizoctonia solani 추출액을 elicitor로 처리하였다. Elicitor을 처리하지 않은 현탁세포 및 모상근배양에서는 효소활성, 효소단백질 및 solavetivone, lubimin등이 전혀 검출되지 않았으나, elicitor을 처리한 세포에서는 효소활성이 급속히 유도되어 처리 12시간 후에 최고의 활성을 보였으며 그 후 점점 감소하였다. 효소활성의 정도는 면역반응을 이용하여 측정한 효소 단백질의 함량과 밀접한 상관관계를 보였으며, phytoalexin 총 함량은 모상근배양에서 2배이상 높았다. 특히 solavetivone 및 lubimin 생합성은 현탁 및 모상근배양에서 서로 다른 특이성을 보였는데, 현탁배양에서는 lubimin을, 모상근배양에서는 solavetivone을 선택적으로 다량 생산하였다.
식물세포의 느린 생장과 낮은 생산량의 이유로 지금까지 는 주로 미생물이나 동물세포에서 유전자 재조합 단백질을 생산하여 왔다. 그러나 저렴한 배지 가격, 동물 유래 바이러스 감염 위험성으로부터의 안정성, glycosylation 등의 post-translational modification이 가능하다는 장점들로 인하여 최근 들어 식물세포배양은 생물학적 활성을 가진 고부가가치의 단백질을 생산하는데 많이 이용되고 있다. 본 연구에서는 생장배지에 첨가했던 sucrose의 소비와 induction 배지로의 교환에서 오는 배지내의 삼투압을 조절하여 hCTLA4-Ig의 생산성을 높이고자 하였다. 다양한 삼투압 조절제 첨가 실험을 통해 sorbitol을 선별하고, 40 mM의 sorbitol 첨가에서 상대적으로 높은 생존도와 induction 후 7일째 대조구보다 1.7배 높은 생산성을 확인하였다. 또한, 저농도의 glucose 첨가를 통한 생산성 증대에 있어서는 8 mM glucose에서 induction 이후에도 높은 세포농도를 유지하면서 최대 37.3 mg/L까지 hCTLA4-Ig 생산량을 증가시켰다. 5-L bioreactor에서 회분식 배양과 induction시의 hCTLA4-Ig 생산량을 비교한 결과 induction시 배양 18일째 최고 45.3 mg/L까지 높일 수 있었으며, 회분식 배양에 비해 2.1배 증가됨을 확인하였다.
Plastid transformation was attempted with soybean [Glycine max (L.) Merr.] leaves and photoautotrophic and embryogenic cultures by particle bombardment using the transforming vector pZVII that carries the coding sequences for both subunits of Chlamydomonas reinhardtii Rubisco and a spectinomycin resistance gene (aadA). Spectinomycin resistant calli were selected from the bombarded leaves but the transgene was not present, indicating that the resistance was due to mutations. The Chlamydomonas rbcL and rbcS genes were shown to be site-specifically integrated into the plastid genome of the embryogenic cells with a very low transformation efficiency. None of the transformed embryogenic lines survived the plant regeneration process so no whole plants were recovered. This result does indicate that it should be possible to insert genes into the plastid genome of the important crop soybean if the overall methods are improved.
Plant cell culture provides a viable alternative over whole plant cultivation for the production of secondary metabolites. In order to successfully cultivate the plant cells at large scale, several engineering parameters such as, cell aggregation, mixing, aeration, and shear sensitivity are taken into account for selection of a suitable bioreactor. The media ingredients, their concentrations and the environmental factors are optimized for maximal synthesis of a desired metabolite. Increased productivity in a bioreactor can be achieved by selection of a proper cultivation strategy (batch, fed-batch, two-stage etc.), feeding of metabolic precursors and extraction of intracellular metabolites. Proper understanding and rigorous analysis of these parameters would pave the way towards the successful commercialization of plant cell bioprocesses.
Supended cells of Camptotheca acuminata were observed to lose their ability to synthesize camptothecin and its derivatives as a result of repeated cultures. Accordingly, the maintenance of high-yield cells by cryopreservation was sudied to overcome this stability problem, and various factors involved were optimized. Pregrowing the cells in 8% myoinositol for 4 days was found to be the most effective in improving survival. The highest survival was obtained when the pregrown cells were cryoprotected with a mixture of 10% DMSO, 0.6M mannitol, and 10% glycerol. When the cryopreserved cells were maintained in a freezer at $-70^{\circ}C$, 94% survival was obtained after 4 months. The survivals after 5 and 8 months of storage decreased to 52% and 45%, respectively. No loss of biosynthetic capacility of camptothecin was observed after short to medium term cryopreservation of C. acuminata.
Addition of ${\beta}$-cyclodextrin (${\beta}$-CD) polymer during the biotransformation of digitoxin into digoxin using cell suspension cultures of Digitalis lanata enhanced the conversion yield. Digitoxin showed better adsorption to CD polymer compared to digoxin, so that the optimization of addition time was found to be necessary. In the case of adding CD polymer 24 hours after the feeding of substrate digitoxin, the highest digoxin production could be achieved. At this period, digitoxin was almost consumed by cells and productivity was proportionally enhanced according as the amount of substrate was increased. Immobilization of CD polymer did not promote the biotransformation. When 3.33 g/L of CD selective inclusion complex formation could be expected. Adsorption rate was found to be rapid and saturation was obtained within 10 hours of contact.
For the enhanced production of a cardiac glycoside, digoxin, using in situ adsorption by biotransformation from digitoxin in plant cell suspension cultures, selection of proper resins was attempted and the culture conditions were optimized. Among various kinds of resins tested, Amberlite XAD-8 was found to be the best for digoxin production in considering adsorption characteristics as well as the effect on cell growth. Adequate time for resin addition was determined to be 36 h from the beginning of biotransformation and the presence of resins should be as short as possible to increase the productivity. In addition, to prevent the cells from direct contact with resin particles, immobilized systems were designed and examined. Immobilization further improved the advantages of in situ adsorption. It was confirmed that the increase of the contact area for mass transfer was an important factor in utilizing an immobilized system to enhance digoxin production.
The effects of phosphate concentration in the medium, feeding of biosynthetic precursor, and the addition of exogenous berberine on cell growth and berberine production were studied in cell suspension cultures of Thalictrum rugosum. The depletion of phosphate in the medium enhanced the specific productivity up to twofold with significant release of berberine into the medium. Extracellular berberine was 19% of the total in the culture without phosphate while it was 2-5% of total berberine in the culture with even low amounts of phosphate. Precursor feeding was not effective in enhancing alkaloid formation. Initial presence of exogenous berberine did not have much effect on cell growth and alkaloid production. It was found that the cells have the capacity to take up large quantities of berberine. When $500{\;}mg{\cdot}l^{-1}$ of berberine was added exogenously at the beginning, 81% of total berberine was found in the cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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