Objective s: To estimate the frequency of Y chromosome microdeletions in the Korean population of infertile men and to evaluate the relationship between microdeletion on the Y chromosome and clinical phenotypes of infertile men with idiopathic azoospermia and oligozoospermia. Materials and Methods: Genomic DNA was extracted from blood samples collected from 330 infertile men attending the Infertility Clinic at Samsung Cheil Hospital, Korea. Six sequence tagged sites (STSs) spanning the azoospermia factor (AZF) regions of the Y chromosome were amplified by polymerase chain reactions (PCRs). Results: Microdeletions on Y chromosome were detected in 35 (10.6%) of the 330 infertile men. Most of the microdeletions (91.4%) involved AZFb or AZFc. The high incidence of microdeletions were found in AZFc region (57.1%), but the low in AZFa (8.6%) and AZFb (5.7%). Larger microdeletions involving two or three AZF regions were detected in 28.6% of cases. All patients (6 patients) with deletion of AZFa region showed no germ cell phenotypes, Sertoli cell only syndrome or Leydig cell hyperplasia in histopathologic examinations. Conclusion: Microdeletions on the Y chromosome, especially, at AZFc/DAZ regions may be the major cause of azoospermia and severe oligozoospermia. We suggest that idiopathic infertile men have genetic counselling and microdeletion analysis on the Y chromosome before IVF-ET and ART program.
Genes on the long arm of Y chromosome, particularly interval 6, are believed to playa critical role in human spermatogenesis. The objective of this study was to validate a sequenced-tagged site(STS)-mapping strategy for the detection of Yq microdeletion and to use this method to determine the proportion of men with Yq microdeletions in idiopathic, obstructive, nonobstructive azoospermia, severe OATS and in normal males. We analyzed three STS markers mapped to interval 6 within long arm of the Y chromosome from 106 nonobstructive, 30 obstructive azoospermia, 15 severe OATS patients, and normal 42 males in Korean men. By PCR, we tested leukocyte DNA, for the presences of STS markers(DAZ, sY129 and sY134) and SRY gene as internal control. And PCR results were confirmed by Southern hybridization, and were investigated by SSCP analysis for DAZ gene mutation. None of 42 normal males and 30 obstructive azoospermia had microdeletions, Of the 15 severe OATS typed with DAZ, sY129 and sY134, 3(20.0%) patients failed to amplify 1 or more STS markers, and of the 106 nonobstructive azoospermia typed with DAZ, sY129 and sY134, 12(11.3%) patients failed to amplify 1 or more STS markers. From these results, high prevalence(12.4%) of Yq deletion(DAZ, sY129, sY134) in men with nonobstructive idopathic azoospermia and severe OATS were observed in Korean infertility patients. To avoid the infertile offspring by assisted reproductive technique using ICSI or ROSI, genetic diagnosis will be needed in IVF-ET program.
Objective: Environmental chemicals alter reproduction, growth, and survival by changing the normal function of the endocrine system. Bisphenol A (BPA), one of the endocrine disruptors, is known to be an estrogen receptor agonist. Therefore, we hypothesized that BPA may affect male reproduction including spermatogenesis in the mouse testis. Methods: We used 7-week-old ICR mice. The first experiment group received BPA in sesame oil (vehicle, 1 mg/kg, 10 mg/kg, and 100 mg/kg) by i.p. injection and mice were sacrificed 24 hr later. The second experiment group received BPA (vehicle, 10 ${\mu}g/kg$, 1 mg/kg, and 100 mg/kg) daily for 14 days by subcutaneous injection. Expression of cell type-specific marker genes in the testis was evaluated by RT-PCR. Histological analysis, immunofluorescence staining, and TUNEL staining were also performed. Results: RT-PCR analyses showed that expression of luteinizing hormone receptor (LHR), a marker gene for the Leydig cell, was notably decreased in the testes of high dose-exposed mice. No obvious difference in the histology of testes was noted among treatment groups. Immunostaining of LHR in the first experiment group did not show noticeable difference in LHR protein expression in Leydig cells. Immunohistochemistry also revealed heightened expression of the immunoreactive Bax in the treatment group, and this was accompanied by positive TUNEL staining in the interstitial area within testis where Leydig cells reside. Conclusions: Our result suggests that BPA affects Leydig cell functions by altering gene expression and by increasing apoptosis in the mouse testis.
In the azoospermic patients, there are many of undiagnosed factors related to genetic bases. Among them, Klinefelter's syndrome (47,XXY; KS) and Y-chromosomal microdeletion with normal karyotype(46,XY; YMNK) are the most frequent causes of male infertility. This research focused on the comparative analysis of YMNK (n = 66) and K5 (n = 30) patients suffered from male infertility in Korean population. We used the polymerase chain reaction (PCR) approach including 19 pairs of sequence-tagged site (STS) primers for detecting the Y-chromosomal microdeletion on AZFa, b, c regions, indicating that Y chromosomal microdeletions were almost evenly occurred in AZF all regions in Korean population. Comparative analysis indicated that 34.9% YMNK and 73.4% KS patients harbored the microdeleted Y-chromosome. It seems to be high instability of Y-chromosome in KS patients than that of YMNK infertility patients. Taken together, genome instability containing microdeletion could bring male infertility with the disturbance of normal spermatogenesis.
Kim, Sung-Wan;Yun, Eun-Young;Kim, Seong-Ryul;Park, Seung-Won;Kang, Seok-Woo;Kwon, O-Yu;Goo, Tae-Won
Journal of Life Science
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v.21
no.12
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pp.1726-1731
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2011
Human Stem Cell Factor (hSCF) is a cytokine that binds to the c-Kit receptor and plays an important role in hematopoiesis, spermatogenesis, and melanogenesis. To produce the human Stem Cell Factor (hSCF) recombinant protein, we constructed a germline transgenic silkworm using the piggyback vector. The expression of the hSCF gene was driven by the Drosophila heat shock protein 70 (dHsp70) promoter. 3XP3 promotor-driven EGFP was used as a marker which allowed us to rapidly distinguish the transgenic silkworm. A mixture of the donor and helper vector was micro-injected into 1,020 eggs of bivoltin silkworms, Keomokjam. We obtained approximately 22 G1 broods that were EGFP-positive. The expression of the hSCF gene in the transgenic silkworm was analyzed by SDS-PAGE and immunoblotting. Also, analysis of insertion sites into the silkworm genome using inverse PCR showed that exogenous DNA was inserted into the transgenic silkworm genome. These results show that successfully constructed transgenic silkworm expresses the hSCF recombinant protein.
Sperrnatogenesis, the process by which the male germ-line stem cells(GSCs; type A spermatogonia) divide and differentiate to produce the mature spermatozoa, occurs in the seminiferous tubules of the testis. The GSCs proliferate actively to produce two types of cells: other GSCs and differentiating spermatogonia. GSCs have unipotentcy, devoted solely to the generation of sperm. The function of GSCs has broad implications for development, disease, and evolution. Spermatogenesis is fundamental for propagation of species and the defects of this system can result in infertility or disease. The ability to identify, isolate, culture, and alter GSCs will allow powerful new approaches in animal transgenesis and human gene therapy relating to infertility. Until recently, research on stem cells in the testis has been limited because of technical difficulties in isolating and identifying these cell populations. Here, we were trying to find out optimal conditions for in vitro culture of GSCs for identifying and isolating GSCs. We collected mouse GSCs from 3-days old mouse by two-step enzyme digestion method. GSCs were plated and grown on mouse embryonic fibroblasts in Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) containing 15% fatal bovine serum, 10 mM 2-mercaptoethanol, 1% non-essential amino acids, 1 ng/$m\ell$ bFGF, 10 $\mu$M forskolin, 1500 U/$m\ell$ human recombinant leukemia inhibitory factor (LIF). Over a period 3∼5 days, GSCs gave rise to large multicellular colonies resembling those of mouse pluripotent stem cells. After 5th passages, cells within the colonies continued to be alkaline phosphatase and Oct-4 positive and tested positive against a panel of two immunological markers(Integrin $\alpha$ 6 and Integrin $\beta$ 1) that have been recognized generally to characterize GSCs. SSEA-1, SSEA-3, and SSEA-4 also showed positive signals. Based on our data, these GSCs-derived cultures meet the criteria for GSCs itself and even other pluripotent stem cells. We reported here the establishment of in vitro cultures from mouse male GSCs.
Spermatogonial stem cells (SSCs) developed into sperms through spermatogenesis have been utilized as a useful tool in the field of regenerative medicine and infertility. However, a small number of highly qualified SSCs are resided in the seminiferous tubule of testis, resulted in developing effective in-vitro culture system of SSCs for solving simultaneously quantitative and qualitative problems. Presently, SSCs can be enriched on testicular stromal cells (TSCs), but there are no systematic researches about TSC culture. Therefore, we tried to optimize culture condition of TSCs derived from mouse with different strains. For these, proliferation and viability were measured and compared by culturing ICR outbred or DBA/2 inbred mouse-derived TSCs at 35 or $37^{\circ}C$. In case of ICR strain, primary TSCs cultured at $37^{\circ}C$ showed significantly higher proliferation and viability than those at $35^{\circ}C$ and significant increase of proliferation and viability in sub-passaged TSCs was detected in the $35^{\circ}C$ culture condition. Moreover, sub-passage of primary TSCs at $35^{\circ}C$ induced no significant effects on proliferation and viability. In contrast, in case of DBA/2 strain, significantly improved proliferation were detected in the primary TSCs cultured at $35^{\circ}C$, which showed no significant difference in the viability, compared to those at $37^{\circ}C$. Furthermore, sub-passaged TSCs cultured at $37^{\circ}C$ showed no significant differences in proliferation and viability, compared to those at $35^{\circ}C$. However, with significant decrease of proliferation induced by sub-passage of primary TSCs at $35^{\circ}C$, no significant effects on proliferation and viability were resulted from sub-passage of primary TSCs at $37^{\circ}C$. From these results, culture temperature of primary TSCs derived from outbred and inbred strain of mouse could be separately optimized in primary culture and subculture.
In order to produce polyploid quail, the patterns of spermatogenesis and induction of diploid spermatozoa were analyzed by administration of spindle fiber inhibitor agent. Colcemid at the dose level of 37 $\mu\textrm{g}$ /100 g BW was Injected intraperitoneally to 50 Japanese quail males for 3 consecutive days. Five to 20 days after the first colcemid injection, the metaphase spreads from mitotic spermatogonia, primary spermatocyte and secondary spermatocyte were observed. By cytogenetic analysis, 9.4% of spermatogonia and spermatocyte cells in germ cells from the treated males was found to be polyploid cells. As compared with colcemld treated, the males with non-treated colcemid had only 2.3% polyploid cells in germ cells. The induction of diploid germ cells was highest in 10 days after the first colcemid injection and was lowest in 5 days after the first colcemid injection. These results suggested that between 10 to 15 days before maturation of the spermatozoa, the male germ cells were most sensitive to colcemid treatment. Spindle fiber inhibitor agent was also more sensitive to mitotic division of spermatogonia than meiotic division of primary and secondary spermatocyte.
Azoospermia factor(AZFa, b, and c) regions have been focused on their involvement in the spermatogenic process by frequent observation of microdeletion in male infertility. Among the azoospermia factors, RBMY1, CDY1, and VCY2 genes are strongly associated with the male germinal cell differentiation and development in testis. Using RT-PCR approach, expression patterns of RBMY1, CDY1, and VCY2 genes are examined in testicular biopsy specimens from 42 Korean azoospermic patients. No expression of RBMY1, CDY1, and VCY2 genes appeared as 34%, 66%, and 27% of the male infertility, respectively. Patients who had no expression of RBMY1 and VCY2 genes also showed negative expression of the CDY1 gene in their testis tissues. All Sertoli cell-only syndrome patients showed no expression of the CDY1 gene. Taken together, the CDY1 gene expression seems to be necessary factor to complete spermatogenesis in Korean population.
연구목적: 본 연구는 아직 그 기능이 파악되지 않은 탈유비퀴틴효소 중 하나인 HIDE에 대한 기본적인 생화학적 특징과 고환에서의 발현 양상을 파악하고 있다. 연구재료 및 방법: 인간의 HIDE 유전자를 클로닝하여 효소활성이 있는지 세포 외 실험을 통해 확인하였고, 아미노산 서열을 분석하여 진화상 보존된 부분을 찾아 그 기능을 파악한 다음 HSP90과의 상호작용을 공동면역침전반응으로 확인하였다. HIDE의 조직별 발현양상을 파악하기 위해서 인간과 쥐의 RNA 블롯과 쥐의 단백질 블롯을 이용하여 각각 노던 블롯팅과 웨스턴 블롯팅을 수행하여 고환에서 많이 발현된다는 것을 알았고 이 사실을 바탕으로 쥐의 고환을 절개하여 면역조직화학반응으로써 고환 내의 HIDE 단백질의 발현양상을 파악하였다. 결 과: HIDE는 세포 외에서 유비퀴틴 잔기를 제거하는 탈유비퀴틴 활성이 있으나 세포 내에서 전체적인 유비퀴틴 복합체를 줄여주는 효과는 없었다. HIDE는 HSP90이라는 분자 샤페론과 상호작용한다. HIDE의 전사체는 고환에서 가장 많이 발현되며 다른 조직에서도 소량 발현된다. HIDE의 단백질은 웨스턴 블롯상에서 고환에서만 확인되었다. 고환 내에서의 HIDE의 발현양상은 왕성한 감수분열을 하는 정모세포에서 높았으며 지지세포나 정조세포에는 발현되지 않았다. 결 론: HIDE는 분자 샤페론 HSP90과 상호작용하며 고환 내의 감수분열 중인 세포에서 많이 발현되는 것으로 보아 감수분열이나 정자형성에 관여하는 것으로 보인다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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