To investigate the distribution of Borrelia burgdorferi and human granulocytic ehrlichiosis (HGE) agent in ticks, adult ixodid ticks of Ixodes spp. and Haemaphysalis spp. were collected from the high mountain areas of Kangwon Province. Using DNAs extracted and purified in the collected ticks, polymerase chain reaction (PCR) was performed to amplify the specific nucleotide sequences of both agents. Of the 516 ticks, a total of 68 (13.2%) ticks was positive for Borrelia burgdorferi sensu lato with PCR analysis (2 for B. burgdorferi sensu stricto; 1 for B. afzelii;33 for B. garinii; 8 for B. tanukii;4 for B. turdae). However a little more than half of PCR-positive ticks (37/68) was found to be positive in the southern blot analysis with Bl6S oligonucleotide probe. One hundred and one (19.2%) ticks were positive for Ehrlichia spp. in PCR, and a quarter of them (25/101) was positive in southern blot with El6S oligonucleotide probe. But none of them was found to be the DNA of HGE agent. And 0.6% (3/516) ticks were positive for both of B. burgdorferi sensu late and Ehrlirhia spp. These findings might implicate the possibility of the outbreak of Iyme borreliosis and ehrlichiosis in Korea, and more extensive studies may be need for the diagnosis of multiple tick-borne diseases.
Total bacterial community DNA, which was extracted from microcosm soil and field soil after 2,4-D amendments, was analyzed on Southern blots, using the tfdA gene probe derived from plasmid pJP4 and the Spa probe from Sphingomonas paucimobilis. Southern blot analyses with total bacterial DNA extracted from soils Inoculated with Pseudomonas cepacia/pJP4 revealed that DNA probe method could detect the 2,4-D degrading bacteria down to $10^5\;cells/g$ dry soil. In the microcosm experiment, there was a good correlation between 2,4-D degradation and banding patterns in hybridization analyses performed after each 2,4-D treatment using the two probes. When bacterial DNA extracted from microcosm soil was hybridized with the Spa probe, a change in the position of hybrid bands was observed over time in a Southern blot, suggesting that population change or possibly genetic rearrangement in 2,4-D degrading microbial populations occurred in this soil. With the Spa probe, one hybrid DNA band was persistently observed throughout the five 2,4-D additions. When bacterial DNA isolated from the field soil was probed with the tfdA and Spa, strong hybridization signal was observed in the 100 ppm-treated subplot, weak signal In the 10 ppm-treated subplot, and no significant signal in the 1 ppm-treated and control subplots. The data show that DNA probe analyses were capable of detecting and discriminating the indigenous 2,4-D degrading microbial populations in soil amended with 2,4-D under laboratory and field conditions.
The objective of this study was to clone a partial fragment of $\alpha$-amylase from Korean maize. We designed and synthesized an oligonucleotide probe and two kinds of PCR primers based on cDNA conserved region of $\alpha$-amylase sequences from other plants. Total RNA from 3-day-old maize seedling was used as template for 1st strand cDNA synthesis and RNA-DNA hybrid was used as template for polymerase chain reaction(PCR). The product of PCR was about 0.5 kb long and inserted into pUC19. We named this recombinant plasmid as pZM$\alpha$'. The cloned fragment was certified by Southern blot analysis using labeled synthetic oligonucleotide as probe.
Agrobacterium harboring vector pCHBs with hygromycin phosphotransferase(hph) and hepatitis B virus surface antigen(HBsAg)gene was transformed into the mycelial culture of Flammulina velutipes. In particular, mild NaOH solution was treated to the mycelia before Agrobacterium infection step. This was purposed to generate putative surface wounds in the mycelial cell walls. The results showed that hygromycin-resistant($hyg^r$) mycelia could be obtained only from NaOH-treated mycelia but not from intact mycelia. The integration of $hyg^r$ gene in fungal genome was confirmed by PCR. In addition, a single transgene integration and heterologous protein expression in F. velutipes could be verified by Southern blot hybridization and western blot analysis, respectively. This study demonstrated an efficient tool for the Agrobacterium-mediated transformation of F. velutipes mycelia.
This research was carried out for evaluating diagnostic value of antibody test in Fragile X syndrome. In antibody test of control individuals and carriers with a premutation, FMRP were detected in the lymphocytes, whereas the lymphocytes of male Fragile X syndrome patients were devoid of FMRP. Five Fragile X syndrome male patient, two Fragile X syndrome female patients, three carriers were diagnosed by southern blot. Five boys who were diagnosed as the patients by antibody test were turned out full mutation and having multiple smear beside normal single band. However, fragile site of X chromosome was not expressed in Fragile X syndrome patients by chromosome analysis. These results showed that antibody test was a fast and simple method, but the diagnostic power was "perpect" for males, whereas the results were less specific for females.r females.
We isolated a cDNA clone, BLSC1, encoding 5' exon of ATP synthase CF0 subunit I from broccoli. BLSC1 is 285 nucleotides long which consists of a 5' noncoding region of 34 nucleotides, a 5' exon of 145 nucleotides and an intron of 106 nucleotides. The 5' exon codes for 48 amino acids which reveals mostly hydrophobic. The amino acid sequence deduced from BLSC1 shares 83%, 83% and 91% identities with the genes coding for atpF from wheat, rice and spinach, respectively. Genomic Southern blot analysis for BLSC1 showed a typically strong signal for a gene located in the chloroplast genome. Northern blot analysis identified three major classes of transcripts showing strong positive signals in the leaves, but only trace amounts of the transcripts were identified in the other organs like stems, flowr buds and roots.
Fragile-X-syndrome (FXS) is the most common type of inherited cognitive impairment. The underlying molecular alteration consists of a CGG-repeat amplification within the FMR-1 gene. The phenotype is only apparent once a threshold in the number of repeats has been exceeded (full mutation). The aim of this study was to characterize the FMR-1 CGG-repeat status in Argentine patients exhibiting mental retardation. A total of 330 blood samples from patients were analyzed by PCR and Southern blot analysis. Initially, DNA from 78 affected individuals were studied by PCR. Since this method is unable to detect high molecular weight alleles, however, we undertook a second approach using the Southern blotting technique to analyze the CGG repeat number and methylation status. Southern blot analysis showed an altered pattern in 14 out of 240 (6%) unrelated patients, with half of them presenting a mosaic pattern. Eight out of 17 families (47%) showed a (suggest deleting highlight). The characteristic FXS pattern was identified in 8/17 families (47%), and in 4 of these families 25% of the individuals presented with a mosaic model. The expansion from pre-mutation to full mutation was shown to occur both at the pre and post zygotic levels. The detection of FXS mutations has allowed us to offer more informed genetic counseling, prenatal diagnosis and reliable patient follow-up.
A rapid, simple and efficient method to extract RNA from the adult polyps of a soft coral, marine cnidarian, Scleronephthya gracillimum $(K\ddot{u}kenthal)$; was developed in this study. The highest yield and purity of RNA was obtained with the lysis solution containing 35 mM EDTA, 0.7 M LiCl, 7.0% SDS, and 200 mM Tris-Cl (pH 9.0). Approximately $40{\mu}g$ of total RNA was extracted from 200 mg of liquid nitrogen-pulverized polyp tissue. The ratio of absorbance at 260 nm and 280 nm ranged from 1.8 to 2.0. The results of the reverse transcription polymerase chain reaction (RTPCR) with ${\beta}-actin$ gene specific primers and Northern blot analysis using the same gene probe revealed that the RNA extracted by our method had high quality, and was sufficient for subsequent molecular biological analyses. This method was effective for RNA extraction from other soft coral species which belong to the genus Dendronephthya.
For the gene tagging of Armoracia rusticana, maize controlling element Ac and Ds were introduced into A.rusticana via Agrobacterium-mediated transformation method. We established an efficient in via regeneration and transformation system for gene transfer in A. rusticana. The optimum in via regeneration condition has been obtained from leaf, petiole and root organs on modified MS medium supplemented with NAA 0.1 mg/L plus BA 1.0 mg/L for direct shooting and with free growth regulators for root induction for transformation, the leaf, petiole and root explants of A. rusticana were concultivated with Agrobacterium tumefaciens, LBA4404 which carries a binary vector pEND4K containing maize controlling element Ac or Ds, respectively: Selections were performed in the shoot induction medium supplemented with 100 mg/L kanamycin, and 500 mg/L carbenicillin transformation frequency showed about 8 to 10% in case of leaf disks. PCR md Southern blot analyses showed that the Ac and the Ds elements were integrated into the chromosome of donor plants.
In order to improve phosphate use efficiency of rice using phosphate transporter (PT), transgenic rice plants containing a tobacco PT gene were developed. Calli from Dongjinbyeo (Oryza sativa L.) were cocultured with A. tumefaciens LBA 4404 harboring PT gene. Multiplied calli were transferred to MS medium supplemented with 50 mg/L hygromycin, 500 mg/L carbenicillin, 2 mg/L kinetin, 0.1 mg/L NAA. After 2 weeks, hygromycin resistant shoots were obtained from the calli on the selection medium. The putative transgenic shoots were transferred to rooting MS medium supplemented with 250 mg/L cabenicillin. Plant regeneration rate from the calli was about 52%. Stable incorporation of the tobacco PT gene into rice genomic DNA was confirmed by PCR and Southern blot analysis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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