Hwi-Won Jeong;Tae Ho Ryu;Hyo-Jeong Lee;Kook-Hyung Kim;Rae-Dong Jeong
The Plant Pathology Journal
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제39권5호
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pp.449-465
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2023
Plants are challenged by various pathogens throughout their lives, such as bacteria, viruses, fungi, and insects; consequently, they have evolved several defense mechanisms. In addition, plants have developed localized and systematic immune responses due to biotic and abiotic stress exposure. Animals are known to activate DNA damage responses (DDRs) and DNA damage sensor immune signals in response to stress, and the process is well studied in animal systems. However, the links between stress perception and immune response through DDRs remain largely unknown in plants. To determine whether DDRs induce plant resistance to pathogens, Arabidopsis plants were treated with bleomycin, a DNA damage-inducing agent, and the replication levels of viral pathogens and growth of bacterial pathogens were determined. We observed that DDR-mediated resistance was specifically activated against viral pathogens, including turnip crinkle virus (TCV). DDR increased the expression level of pathogenesis-related (PR) genes and the total salicylic acid (SA) content and promoted mitogen-activated protein kinase signaling cascades, including the WRKY signaling pathway in Arabidopsis. Transcriptome analysis further revealed that defense-and SA-related genes were upregulated by DDR. The atm-2atr-2 double mutants were susceptible to TCV, indicating that the main DDR signaling pathway sensors play an important role in plant immune responses. In conclusion, DDRs activated basal immune responses to viral pathogens.
In plants, salicylic acid (SA) is a central immune signal that is involved in both local and systemic acquired resistance (SAR). In addition to SA, several other chemical signals are also involved in SAR and these include N-hydroxy-pipecolic acid (NHP), a newly discovered plant metabolite that plays a crucial role in SAR. Recent discoveries have led to a better understanding of the biosynthesis of SA and NHP and their signaling during plant defense responses. Here, I review the recent progress in role of SA and NHP in SAR. In addition, I discuss how these signals cooperate with other SAR-inducing chemicals to regulate SAR.
Pathogen-associated molecular patterns (PAMPs) activate mitogen-activated protein kinases (MAPKs), essential components of plant defense signaling. Salicylic acid (SA) is also central to plant resistance responses, but its specific role in regulation of MAPK activation is not completely defined. We have investigated the role of SA in PAMP-triggered MAPKs pathways in Arabidopsis SA-related mutants, specifically in the flg22-triggered activation of MPK3 and MPK6. cim6, sid2, and npr1 mutants exhibited wild-type-like flg22-triggered MAPKs activation, suggesting that impairment of SA signaling has no effect on the flg22-triggered MAPKs activation. Pretreatment with low concentrations of SA enhanced flg22-induced MPK3 and MPK6 activation in all seedlings except npr1, indicating that NPR1 is involved in SA-mediated priming that enhanced flg22-induced MAPKs activation.
Lee, Young Hee;Kim, Sang Hee;Yun, Byung-Wook;Hong, Jeum Kyu
The Plant Pathology Journal
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제30권3호
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pp.323-329
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2014
Two cultivars Buram-3-ho (susceptible) and CR-Hagwang (moderate resistant) of kimchi cabbage seedlings showed differential defense responses to anthracnose (Colletotrichum higginsianum), black spot (Alternaria brassicicola) and black rot (Xanthomonas campestris pv. campestris, Xcc) diseases in our previous study. Defense-related hormones salicylic acid (SA), jasmonic acid (JA) and ethylene led to different transcriptional regulation of pathogenesis-related (PR) gene expression in both cultivars. In this study, exogenous application of SA suppressed basal defenses to C. higginsianum in the 1st leaves of the susceptible cultivar and cultivar resistance of the 2nd leaves of the resistant cultivar. SA also enhanced susceptibility of the susceptible cultivar to A. brassicicola. By contrast, SA elevated disease resistance to Xcc in the resistant cultivar, but not in the susceptible cultivar. Methyl jasmonate (MJ) treatment did not affect the disease resistance to C. higginsianum and Xcc in either cultivar, but it compromised the disease resistance to A. brassicicola in the resistant cultivar. Treatment with 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid (ACC) ethylene precursor did not change resistance of the either cultivar to C. higginsianum and Xcc. Effect of ACC pretreatment on the resistance to A. brassicicola was not distinguished between susceptible and resistant cultivars, because cultivar resistance of the resistant cultivar was lost by prolonged moist dark conditions. Taken together, exogenously applied SA, JA and ethylene altered defense signaling crosstalk to three diseases of anthracnose, black spot and black rot in a cultivar-dependent manner.
Systemic acquired resistance is a form of inducible resistance that is triggered in systemic healthy tissues of local-infected plants. Several candidate signaling molecules emerged in the past two years, including the methylated derivatives of well-known defense hormones salicylic acid (SA) and jasmonic acid (JA). In our present study, the symptom on Cucumber mosaic virus (CMV) infected Arabidopsis leaves in 0.1 mM SA or 0.06 mM JA pre-treated plants was lighter (less reactive oxygen species accumulation and less oxidative damages) than that of the control group. JA followed by SA (JA${\rightarrow}$SA) had the highest inhibitory efficiency to CMV replication, higher than JA and SA simultaneous co-pretreatment (JA+SA), and higher than a JA or a SA single pretreatment. The crosstalk between the two hormones was further investigated at the transcriptional levels of pathogenesis-related genes. The time-course measurement showed JA might play a more important role in the interaction between JA and SA.
Ryu Choong-Min;Murphy John F.;Reddy M.S.;Kloepper Joseph W.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제17권2호
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pp.280-286
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2007
We evaluated a commercial biopreparation of plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR) strains Bacillus subtilis GB03 and B. amyloliquefaciens IN937a formulated with the carrier chitosan (Bio Yield) for its capacity to elicit growth promotion and induced systemic resistance against infection by Cucumber Mosaic Virus (CMV) and Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 in Arabidopsis thaliana. The biopreparation promoted plant growth of Arabidopsis hormonal mutants, which included auxin, gibberellic acid, ethylene, jasmonate, salicylic acid, and brassinosteroid insensitive lines as well as each wild-type. The biopreparation protected plants against CMV based on disease severity in wild-type plants. However, virus titre was not lower in control plants and those treated with biopreparation, suggesting that the biopreparation induced tolerance rather than resistance against CMV. Interestingly, the biopreparation induced resistance against CMV in NahG plants, as evidenced by both reduced disease severity and virus titer. The biopreparation also elicited induced resistance against P. syringae pv. tomato in the wild-type but not in NahG transgenic plants, which degrade endogenous salicylic acid, indicating the involvement of salicylic acid signaling. Our results indicate that some PGPR strains can elicit plant growth promotion by mechanisms that are different from known hormonal signaling pathways. In addition, the mechanism for elicitation of induced resistance by PGPR may be pathogen-dependent. Collectively, the two-Bacilli strain mixture can be utilized as a biological inoculant for both protection of plant against bacterial and viral pathogens and enhancement of plant growth.
Kim, Su Jun;Kim, Eun Su;Kim, Seung Heui;Yun, Hae Keun
농업과학연구
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제45권3호
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pp.365-378
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2018
Anthracnose caused by Colletotrichum gloeosporioides, which is one of the major diseases of red dates, causes severe damages in jujube (Zizyphus jujuba Miller) production in Korea. This study was done to evaluate the inhibition of anthracnose occurrence and pathogen growth by the treatment of environment-friendly materials such as a Bordeaux mixture and loess-sulfur mixture and by defense-response signaling in jujube. The in vitro test of the environment-friendly materials and signaling molecules that were routinely applied did not exhibit any antifungal activities against the pathogen for jujube anthracnose. The Bordeaux mixture and loess-sulfur mixture at a two-fold concentration showed inhibition zones that were 16.0 and 20.3 mm in diameter, respectively. In the pathogen inoculation test with detached jujube tree leaves, while treatment with the environment-friendly materials diluted by half showed no inhibition of lesion development, they did show inhibition of lesion development when they were routinely applied to the leaves. In detached jujube fruits inoculated with the pathogen, better suppressive effects by the treatment of the environment-friendly materials were seen in the fruits at a young stage rather than in the ripening stage. The in vivo test with jujube trees in pots showed that the treatment of salicylic acid (1 mM) resulted in the best suppressive effects against lesion development. The results suggest that it is possible to manage the incidence of anthracnose by the treatment of environment-friendly materials such as the Bordeaux and loess-sulfur mixtures and signaling chemicals such as ethephon, hydrogen peroxide, methyl jasmonate, and salicylic acid in jujube trees and fruits. Consequently, these findings suggest that environment-friendly materials and defense response signaling molecules could be used as suitable candidates for sustainable agrochemicals to manage anthracnose in jujube production.
Park, Hyo-Jun;Kwon, Chang-Seob;Woo, Joo-Yong;Lee, Gil-Je;Kim, Young-Jin;Paek, Kyung-Hee
The Plant Pathology Journal
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제27권2호
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pp.170-182
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2011
Plants possess multiple resistance mechanisms that protect themselves against pathogen attack. To identify unknown components of the defense machinery in Arabidopsis, gene-expression changes were monitored in Arabidopsis thaliana under 18 different biotic or abiotic conditions using a DNA microarray representing approximately 25% of all Arabidopsis thaliana genes (www.genevestigator.com). Seventeen genes which are early responsive to salicylic acid (SA) treatment as well as pathogen infection were selected and their T-DNA insertion mutants were obtained from SALK institute. To elucidate the role of each gene in defense response, bacterial pathogen Pseudomonas syringae pv. tomato (Pst) DC3000 was inoculated onto individual T-DNA insertion mutants. Four mutants exhibited decreased resistance and five mutants displayed significantly enhanced resistance against Pst DC3000-infection as measured by change in symptom development as compared to wild-type plants. Among them, member of uridin diphosphate (UDP)-glycosyltransferase (UGT) was of particular interest, since a UGT mutant (At1g05680) showed enhanced resistance to Pst-infection in Arabidopsis. In systemic acquired resistance (SAR) assay, this mutant showed enhanced activation of SAR. Also, the enhanced SAR correlated with increased expression of defense-related gene, AtPR1. These results emphasize that the glycosylation of UGT74E2 is a part of the SA-mediated disease-resistance mechanism.
A cDNA clone for a salicylic acid-induced gene in Chinese cabbage (Brassica rapa subsp. pekinensis) was isolated and characterized. The cabbage gene, designated Br-sil1 (for $\underline{B}$rassica $\underline{r}$apa $\underline{s}$alicylate-$\underline{i}$nduced $\underline{l}$lipase-like 1 gene), encodes a putative lipase that has the family II lipase motif GDSxxDxG around the active site serine. A database search showed that plant genomes have a large number of genes that contain the family II lipase motif. The lipase-like proteins include a myrosinase-associated protein, an anther-specific proline-rich protein APG, a pollen coat protein EXL, and an early nodule-specific protein. The Br-sil1 gene is strongly induced by salicylic acid and a non-host pathogen, Pseudomonas syringae pv. tomato, that elicits a hypersensitive response in Chinese cabbage. Treatment of the cabbage leaves with BTH, methyl jasmonate, or ethephon showed that the Br-sil1 gene expression is induced by BTH, but not by methyl jasmonate or ethylene. This indicates that the cabbage gene is activated via a salicylic acid-dependent signaling pathway. An examination of the tissue-specific expression revealed that the induction of the Br-sil1 gene expression by BTH occurs in leaves and stems, but not in roots and flowers. Without the BTH treatment, however, the Br-sil1 gene is not expressed in any of the tissues that were examined.
Salas-Marina, Miguel Angel;Silva-Flores, Miguel Angel;Cervantes-Badillo, Mayte Guadalupe;Rosales-Saavedra, Maria Teresa;Islas-Osuna, Maria Auxiliadora;Casas-Flores, Sergio
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제21권7호
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pp.686-696
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2011
To deal with pathogens, plants have evolved sophisticated mechanisms including constitutive and induced defense mechanisms. Phytohormones play important roles in plant growth and development, as well as in the systemic response induced by beneficial and pathogen microorganisms. In this work, we identified an Aspergillus ustus isolate that promotes growth and induces developmental changes in Solanum tuberosum and Arabidopsis thaliana. A. ustus inoculation on A. thaliana and S. tuberosum roots induced an increase in shoot and root growth, and lateral root and root hair numbers. Assays performed on Arabidopsis lines to measure reporter gene expression of auxin-induced/ repressed or cell cycle controlled genes (DR5 and CycB1, respectively) showed enhanced GUS activity, when compared with mock-inoculated seedlings. To determine the contribution of phytohormone signaling pathways in the effect elicited by A. ustus, we evaluated the response of a collection of hormone mutants of Arabidopsis defective in auxin, ethylene, cytokinin, or abscisic acid signaling to the inoculation with this fungus. All mutant lines inoculated with A. ustus showed increased biomass production, suggesting that these genes are not required to respond to this fungus. Moreover, we demonstrated that A. ustus synthesizes auxins and gibberellins in liquid cultures. In addition, A. ustus induced systemic resistance against the necrotrophic fungus Botrytis cinerea and the hemibiotrophic bacterium Pseudomonas syringae DC3000, probably through the induction of the expression of salicylic acid, jasmonic acid/ethylene, and camalexin defense-related genes in Arabidopsis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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