General pharmacological properties of LB-00014, an erythropoietin which was produced by recombinant DNA technique in Biotech Research Institute, LG Chemical Ltd. were examined. The administration of LB-00014 (60, 600, 6000 IU/kg, iv) in mice had no effect in general behavior and central nervous system, and no influences on normal body temperature, writhing syndromes induced by 0.7% acetic acid solution and chemoshock produced by strychnine and pentetrazole solution. LB-00014 (60, 600, 6000 IU/kg, iv) given to anesthetized rabbits showed no effect on blood pressure of carotid artery and respiration rates, and it did not influence the responses produced by injection of acetylcholine or epinephme. The administration of LB-00014 (601, 600, 6000 IU/kg, iv) in rats had no effect on the plasma prothrombin time, activated partial thromboplastin time and hemolytic action. The platelet aggregation induced by collagen in human plasma was not influenced by LB-00014 (10, 100, 1000 lU/kg, iv). It showed no direct effect at 100 and 1000IU/m1 in isolated stomach fundus and uterus of rats and ileum of guinea-pig, and it also had no inhibition of contraction produced by acetylcholine, oxytocin, serotonin and histamine in the above-mentioned preparations. It did not influence gastric secretion, pH and acid output at 6000 IU/kg, iv in rats, but showed a significant increase in intestinal propulsion of mice at 6000 IU/kg, iv. Its administration (60, 600, 6000 lU/kg, iv) caused no effect on urine and electrolyte excretion in rats. These results indicate that LB-00014 does not exsert any of serious pharmacological effects.
To control coccidiosis without using prophylactic medications, a DNA vaccine targeting the gametophyte antigen Gam56 from Eimeria maxima in chickens was constructed, and the immunogenicity and protective effects were evaluated. The ORF of Gam56 gene was cloned into an eukaryotic expression vector pcDNA3.1(zeo)+. Expression of Gam56 protein in COS-7 cells transfected with recombinant plasmid pcDNA-Gam56 was confirmed by indirect immunofluorescence assay. The DNA vaccine was injected intramuscularly to yellow feathered broilers of 1-week old at 3 dosages (25, 50, and $100{\mu}g/chick$). Injection was repeated once 1 week later. One week after the second injection, birds were challenged orally with $5{\times}10^4$ sporulated oocysts of E. maxima, then weighed and killed at day 8 post challenge. Blood samples were collected and examined for specific peripheral blood lymphocyte proliferation activity and serum antibody levels. Compared with control groups, the administration of pcDNA-Gam56 vaccine markedly increased the lymphocyte proliferation activity (P<0.05) at day 7 and 14 after the first immunization. The level of lymphocyte proliferation started to decrease on day 21 after the first immunization. A similar trend was seen in specific antibody levels. Among the 3 pcDNA-Gam56 immunized groups, the median dosage group displayed the highest lymphocyte proliferation and antibody levels (P<0.05). The median dosage group had the greatest relative body weight gain (89.7%), and the greatest oocyst shedding reduction (53.7%). These results indicate that median dosage of DNA vaccine had good immunogenicity and immune protection effects, and may be used in field applications for coccidiosis control.
In order to study the secretion of the human urokinase-type plasminogen activator, u-PA, from the yeast yarrowia lipolytica, three kinds of integrative expression vector were constructed. These vectors differed only in their secretion control legions, pre-, pre-dip-(dipeptide Stretch) or pre-dip-pro sequences of the alkaline extracellular protease, which were joined inflame to the human u-PA cDNA. The recombinant Y. lipolytica Strains, transformed with the expression vectors, secreted the hyperglycosylated u-PA. A fibrin plate assay of the culture supernatants showed that the hyperglycosylated u-PA proteins could catalyze fibrinolysis, and that the pre-dip sequence was the most efficient secretory signal for the secretion of the u-PA from Y. lipolyica. This result suggests that Y. lipolytica can be developed as a potential host for the production of recombinant human u-PA.
A novel lactobacilli replicon from plasmids of Lactobacillus reuteri KCTC 3678 was isolated. Eight L. reuteri strains from Korean Collection for Type Cultures (KCTC) and Korea Food Research Institute (KFRI) were screened for cryptic plasmids and most strains harbored 1 or 2 plasm ids. Particularly, L. reuteri KCTC 3678 contained 6 plasm ids which all were used for screening of lactobacilli replicon. EcoRI digests of the plasmid DNA prep from L. reuteri KCTC 3678 were ligated with pUC19 and the recombinant DNAs were serially named from pLR1 to pLR7. A cat (chloramphenicol acetyltransferase; $Cm^r$) gene originated from pC194 was introduced into pLR1-7, resulting in pLR1cat-pLR7cat, respectively. The recombinant plasmids were introduced into L. reuteri KCTC 3679, and only transformants harboring pLR5cat were obtained, indicating that the insert in pLR5 functioned as a lactobacilli replicon.
The penicillin G acylase(pga) gene was cloned in the vector plasmid pKM $300(Ar^r,\;Tc^r,\;6.33kb)$ for the study of the structure and expression of the pga gene. This recombinant plasmid pPAKS-1 DNA(24.5 Kb) was cleaved into 2 fragments by restriction enzyme Eco R1.1fragment by BamH1, 4fragments by Hind III, and 2 fragments by Pst I. The pga gene was located on the Eco R1.Hind III-C fragement of pPAKS-1. The recombinant plasmids pPAKS-1 and pPAKS-2, in which the Hind III-B and Hind III-D fragments pPAKS-1 are deleted, are characterized. The results are summarized as follows : 1. Doubling times of bacterial strain bearing pPAKS-1 and pPAKS-2 are 90 and 60 minutes, respectively. 2. pPAKS-1 and pPAKS-2 are present at about 16-32 and 70 copies per cell, respectively, are 0.66 and 5.5 units, respectively, which represent 2-fold and 20-fold higher enzyme 4. pPAKS-1 is very unstable, but pPAKS-2 is stable.
CJ-50001 is a recombinant granulocyte-colony stimulating factor (rG-CSF) synthesized by recombi-nant DNA technology using E. coli as an expression system. The general pharmacological properties of CJ-50001 were evaluated in mice, rats, dogs and isolated guinea pig ileum. The doses are 100, 300 and 1, 0007g/kg, i.v. for mice and rats, 1, 10 and 100$\mu$g/kg, 1.v. for dogs and 1 and 10$\mu$g/ml for isolated guinea pig ileum. Intravenous administration of CJ-50001 at this dose range did not affect general behavior, central nervous system, smooth muscles, gastrointestinal system, cardiovascular and respiratory system and water and electro-lytes excretion. In summary, CJ-50001 had no harmful pharmacological erect in these studies even up to the 200-fold expected clinical dose, 2507g/man.
The synthesis and secretion of human angiogenin in E. coli by the natural leader sequence has been studied. We constructed a recombinant plasmid containing human angiogenin cDNA which encompassed all the coding region including leader sequence required for secretion. The recombinant plasmid was introduced into a suitable E. coli host. The angiogenin was detected in the culture medium and periplasm upon the induction of gene expression. The molecular weight of the secreted angiogenin was identical to that of authentic angiogenin purfied from human plasma when estimated by SDS-PAGE and immunoblotting. showing that the natural leader sequence was recognized and processed by the secretion machinery of E. coli. The angiogenin concentration in the culture medium reached a maximum within 2 h when expressed at $37^{\circ}C$ with 0.02~2 mM IPTG. In contrast, the expression level increased gradually over time up to 11 h at $23^{\circ}C$ with 0.002~2 mM IPTG and at $37^{\circ}C$ with 0.002 mM IPTG.
Recombinant human tissue plasminogen activator deletion mutein (Reteplase) is a clinically promising thrombolytic drug. Reteplase cDNA was subcloned into a bacteria expression system, and the resultant recombinant was biologically characterized. The Reteplase was expressed in Escherichia coli as an inclusion body, and the downstream processes of the Reteplase inclusion body included denaturation, renaturation, and purification. A protein disulfide isomerase (PDI) was used to assist the refolding of Reteplase, and it was found to increase the refolding rate from less than 2% to more than 20%. The refolded Reteplase was purified through two chromatography steps, including lysine-coupled agarose affinity chromatography and then CM-sepharose cation-exchange chomatography. The purity of r-PA was analyzed by Western bolt analysis, and N-terminal amino acid and amino acid composition analyses confirmed the end-product. Reteplase showed higher thrombolytic potency in an animal thrombus model.
The lambda Integrase (Int) carries out site-specific recombination between the two partner DNA sequences, attachment P (attP) and attachment B (attB). In order to study the recombination mechanism, a large quantity of pure integrase is required. Then, we constructed an int gene inserted recombinant plasmid (pNYL3) by using the pQE31 HIS-Tag vector, and produced the fusion protein, 6xHIS-Int from the E. coli TG1 strain carrying the pNYL3 plasmid. The recombinant protein produced was purified by phosphocellulose and Ni$^{++}$-NTA affinity column chromatographies. The result of the in vitro recombination assay using the standard reaction mixture containing 6xHIS-Int and partially purified integration host factor (IHF) showed that the 6xHIS-Int tagged recombination Integrase had the full recombination activity.
Kim, Su-Jin;Lee, Jeong-Ah;Kim, Yong-Hwan;Song, Bong-Keun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제19권9호
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pp.966-971
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2009
Peroxidase from Coprinus cinereus (CiP) has attracted attention for its high specific activity and broad substrate spectrum compared with other peroxidases. In this study, the functional expression of this peroxidase was successfully achieved in the methylotrophic yeast Pichia pastoris. The expression level of CiP was increased by varying the microbial hosts and the expression promoters. Since a signal sequence, such as the alpha mating factor of Saccharomyces cerevisiae, was placed preceding the cDNA of the CiP coding gene, expressed recombinant CiP (rCiP) was secreted into the culture broth. The Mut Pichia pastoris host showed a 3-fold higher peroxidase activity, as well as 2-fold higher growth rate, compared with the $Mut^s $ Pichia pastoris host. Furthermore, the AOX1 promoter facilitated a 5-fold higher expression of rCiP than did the GAP promoter.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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