Cytochrome $b_{5}$($b_{5}$) can be found in a variety of tissues and plays a role in the electron transfer pathways. Several retropseudogenes (numbered as I, II, II, IV, V) have been identified and well investigated for their structures. However, retropseudogene I is not clear in terms of its location on the chromosome. In addition the structure and the exression of retropseudogene V have not been confirmed. To examine the structure of bs retropseudogenes V and to see whether it is expressed in human blood we applied recombinant DNA technologies including polymerase chain reaction (PCR) and DNA sequencing. Retropseudogene V turned out to contain open reading frame (ORF) within its structure, however, no evidence of its expression was detected. Retropseudogene I was also found on the chromosome V. This study should contribute to the understanding of the structure of bs gene family.
Psychrophilic bacteria have acquired cold-resistance in order to protect themselves against freezing temperatures, which would otherwise be lethal. DnaK/DnaJ/GrpE systems are molecular chaperones which facilitate proper folding of newly synthesized proteins. Efficient folding processes are of great importance especially in a cold environment, such as the Arctic. In order to understand the protection mechanisms of psychrophilic bacteria against cold temperatures, we have explored a genome of KOPRI22215, tentatively identified as Psychromonas arctica, whose genome sequence has not yet been discovered. With an aim of searching for a coding gene of DnaK from KOPRI22215, we have applied a series of polymerase chain reactions (PCR) with homologous primers designed from other Psychromonas species and LA PCR in vitro cloning. 1917 bp complete coding sequence of dnaK from KOPRI22215 was identified including upstream promoter sites. Recombinant plasmids to overexpress PaDnaK along with EcDnaK (DnaK of E. coli) were then constructed in pAED4 vector and the pET-based system to induce PaDnaK expression by IPTG. Characterization assays of expressed PaDnaK were carried out by measuring survival rates upon 4 day incubation at 4 $^{\circ}C$: a refolding assay as molecular chaperone, and ATPase assay for functional activity. Taking account of all the data together, we conclude that PaDnaK was identified, successfully expressed, and found to be more efficient in providing cold-resistance for bacterial cells.
Heterologous expression of glucose oxidase gene using recombinant yeast has been carried out. Polymerase chain reaction was conducted to obtain the gene encoding glucose oxidase from Aspergillus niger and sequence comparison indicated the cloned 1.9kb DNA fragment appeared to be the glucose oxidise structural gene containing a signal sequence for extracellular location. Transforming shuttle vector was constructed with YEp352 to express the cloned glucose oxidase gene under the control of either GAL1 or GAL10 promoter. Plate assay of recombinant yeasts has shown that GAL1 promoter was more effective in yielding glucose oxidise than GAL10 promoter. Among the five different concentrations of galactose tried, 1% galactose showed the highest induction of glucose oxidase. Cellular localization experiment of recombinant enzyme using spheroplast revealed that most of enzymes (80%) were secreted into culture media in contrast to A. niger. There is no difference in heat-stability of recombinant enzyme up to $50^{\circ}C$ compared to the glucose oxidase from A. niger However, a dramatic reduction of enzyme activity was observed in both enzymes at $60^{\circ}C$.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.24
no.1
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pp.23-27
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2012
Porcine circovirus type 2 (PCV2) is a single-stranded circular DNA virus associated with Postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS), which is considered to be an important infectious swine viral disease. PCV2 capsid protein encoded by ORF2 is a structural protein and expected as the high immunogenicity protein. In this study, we generated recombinant baculovirus containing ORF2 of PCV2 and analyzed the optimal conditions for the production of capsid protein in insect cell. Production and status of recombinant capsid protein in insect cell were confirmed by SDS-PAGE and Western blot analysis using His tag antibody and anti-PCV2 serum. The yield of recombinant capsid protein was high like as shown visible on SDS-PAGE. Optimal multiplicity of infection (MOI) and infection time of recombinant virus were determined as 5 MOI and 4 days, respectively. ORF2 is known to have N-linked glycosylation site, but we couldn't detect the glycosylation of recombinant protein in insect cells.
The alcohol dehydrogenase (ADH) gene from Bacillus stearothermopilus was amplified by the polymerase chain reaction. The amplified DNA was inserted into the expression vector pGEX-KG, and expressed it as a fusion protein with glutathione S-transferase (GST) in E. coli. The recombinant ADH was produced by induction with 1 mM isopropyl-${\beta}$-D-thiogalactopyranoside at $37^{\circ}C$ and purified by glutathione affinity chromatography. The recombinant ADH exhibited high substrate specificity for ethanol. The activity of the recombinant ADH proceeded optimally at pH 9.0 and $70^{\circ}C$. The recombinant ADH was highly stable against high temperature. This thermostable alcohol dehydrogenase can be used for the enzymatic determination of alcohol and for the industrial production of alcohol.
Human T-cell leukemia virus Type-I (HTLV-I) is etiologically associated with rare adult T-cell leukemia, a malignant T-cell disorder. cDNAs encoding p24 (gag), gp21(env), and pXII of HTLV-I were amplified by polymerase chain reaction (PCR) using the genomic DNA extracted from HUT102 cell line as a template. The amplified cDNAs were cloned into the Escherichia coli expression vectors and over-expression of the recombinant proteins were achieved by adding IPTG into the culture media in order to induce the promoter. The molecular weights of the recombinant p24, gp21, and pXII, determined by SDS-PAGE, were found to be approximately 28 kDa, 23 kDa, and 15 kDa, respectively. Reactivity of the recombinant proteins with human sera was tested by the immunoblot assay. The gp21 and p24 reacted against the sera obtained from HTLV-I-infected individuals but not against the sera obtained from normal persons. These results suggest that the recombinant proteins expressed in E. coli were recognized by antibodies in sera from HTLV-I infected patients. These recombinant proteins would be applicable for detecting the presence of antibodies against HTLV-I in human blood samples.
Cloning of the gene encoding extracellular .betha.-lactamase from Streptomyces sp. SMF13 in a plasmid pIJ702 and expression of the gene in Streptomyces invidans were carried out. Optimal conditions for the formation of protoplasts of S.lividans and the regeneration of the protoplasts were evaluated. Streptomyces sp. SMF-13 was selected as a donor strain of .betha.-lactamase gene and totla DNA of the strain was partially digested with Sau3A I. DNA fragments ranged from 4kb to 10 kb were ligated to pIJ702 AT Bgl II site and then the ligated DNAs were transformed to the protoplasts of S, livivans. The transformation efficiency was $2 *10^{3}$ .$\mu$g DNA for the ligated DNA mixture. One colony among a thousand colonies regenerated showed extracellular .betha.-lactamase and the size of the inserted DNA fragment was estimated to be 3.94 kb. The .betha.-lactamase activity in the culture broth of the recombinant strain was maximum at 3 days culture to be 1.0 unit/ml.
In normal cells tau protein is associated with axonal microtubules, whereas in Alxheimer's disease it is immobilized in the somatodendritic compartment of certain nerve cells as a major component of the paired helical filament. As a part of the study to analyze the nature of the paired helical filament (PHF) deposits and some related factors in brain, we have cloned and expressed a human tau gene cDNA in Escherichia coli to obtain the recombinant human tau protein in abundance.
A defect in uvsC of Aspergillus nidulans caused high methyl methansulfonate (MMS)-sensitivity, hyporecombination, and a lack of UV induced mutation. The uvsC gene of Aspergillus nidulans shares a sequence similarity with the RAD51 gene of Saccharomyces cerevisiae. In this study, in vitro and in vivo tests were conducted in order to determine whether or not the UVSC protein had functional similarities to RAD51, the recombination enzyme in yeast. The purified recombinant UVSC protein, following expression in Escherichia coli, showed binding activity to single-stranded DNA (ssDNA), when both ATP and magnesium are present. In addition, ATPase activity was also demonstrated and its activity was stimulated in the presence of ssDNA. The UVSC protein that was expressed under the ADH promoter in S. cerevisiae suppressed in part the sensitivity to MMS of the rad51 null mutant. Similarly, when the uvsC cDNA was expressed from the nmt promoter, the MMS sensitivity of the rhp51 null mutant of Schizosaccharomyces pombe was partially complemented. These results indicate that the A. nidulans UVSC protein is a functional homologue of the RAD51 protein.
Kim, Hyo Jung;Lee, Ki-Young;Kim, Yena;Kwon, Ae-Ran;Lee, Bong-Jin
Journal of the Korean Magnetic Resonance Society
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v.20
no.2
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pp.36-40
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2016
MRA1997 is a highly conserved protein from mycobacterial strains. However, no structural and functional information is associated with it. Thus, to obtain details about structure and function of this protein, we have utilized NMR spectroscopy. The recombinant MRA1997 was highly purified and its DNA binding mode was characterized. The tertiary structure of MRA1997 was modeled on the basis of our NMR chemical shift data combined with the webserver CS23D. The binding of MRA1997 with DNA was first monitored by electrophoresis mobility shift assays. The residues involved in DNA binding are identified using NMR chemical shift perturbation experiments. Based on our study, we suggest that MRA1997 interacts with DNA and may play an important role in Mycobacterium tuberculosis physiology.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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