Purpose: The vascular smooth muscle cells (VSMCs) in mature animals have implicated to play a major role in the progression of cardiovascular diseases such as atherosclerosis. This study aimed at optimizing the protocol in culturing primary VSMCs (pVSMCs) from rat thoracic aorta and investigating the effect of cellular zinc (Zn) deficiency on cell proliferation of the isolated pVSMCs. Methods: The thoracic aorta from 7-month-old Sprague Dawley rats was isolated, minced and digested by the enzymatic process of collagenase I and elastase, and then inoculated with the culture Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM) at 37℃ in an incubator. The primary cell culture morphology was observed using phase-contrast microscopy and cellular Zn was depleted using Chelex-100 resin (extracellular zinc depletion only) or 3 µM N,N,N',N'-tetrakis(2-pyridinylmethyl)-1,2-ethanediamine (TPEN) (extracellular and intracellular zinc depletion). Western blot analysis was used for the detection of SM22α and calponin as smooth muscle cell marker proteins and von Willebrand factor as endothelial cell marker protein to detect the culture purity. Cell proliferation by Zn depletion (1 day) was measured by MTT assay. Results: A primary culture protocol for pVSMCs from rat thoracic aorta was developed and optimized. Isolated cultures exhibited hill and valley morphology as the major characteristics of pVSMCs and expressed the smooth muscle cell protein markers, SM22α and calponin, while the endothelial marker von Willebrand factor was hardly detected. Zn deprivation for 1 day culture decreased rat primary vascular smooth muscle cell proliferation and this pattern was more prominent under severe Zn depletion (3 µM TPEN), while less prominent under mild Zn depletion (Chelexing). Conclusion: Our results suggest that cellular Zn deprivation decreased pVSMC proliferation and this may be involved in phenotypic modulation of pVSMC in the aorta.
The calcification of vascular smooth muscle cells (VSMCs) is considered one of the major contributors for vascular disease. Phosphate is known as the inducer for VSMC calcification. In this study, we assessed whether phosphate affected cell viability and fetuin-A, a calcification inhibitor protein, both which are related to VSMC calcification. Also, VSMC viability by zinc level was assessed. The results showed that phosphate increased Ca and P deposition in VSMCs (A7r5 cell line, rat aorta origin). This phosphate-induced Ca and P deposition was consistent with the decreased A7r5 cell viability (P<0.05), which implies phosphate-induced calcification in A7r5 cells might be due to the decreased VSMC cell viability. As phosphate increased, the protein expression of fetuin-A protein was up-regulated. A7r5 cell viability decreased as the addition of cellular zinc level was decreased (P<0.05). The results suggested that zinc deficiency causes the decreased cell viability and it would be the future study to clarify how zinc does act for VSMC cell viability. The results suggest that the decreased VSMC viability by high P or low Zn in VSMCs may be the risk factor for vascular disease.
Purpose: Zinc, a biomineral present within and outside cells, manages various cellular mechanisms. In this study, we examined whether zinc was involved in vascular smooth muscle cell (VSMC) calcification via regulation of calcification inhibitor protein, osteopontin (OPN). Methods: Rat aorta cell line (A7r5 cells) and primary vascular smooth muscle cells (pVSMCs) from rat aorta were cultured with phosphate (1-5 mM) and zinc ($0-15{\mu}M$) as appropriate, along with osteoblasts (MC3T3-E1) as control. The cells were then stained for Ca and P deposition for calcification examination as well as osteopontin expression as calcification inhibitor protein was measured. Results: Both Ca and phosphate deposition increased as the addition of phosphate increased. In the same manner, the expression of osteopontin was upregulated as the addition of phosphate increased in both cell types. When zinc was added, Ca and P deposition decreased in VSMCs, while it increased in osteoblasts. Conclusion: The results imply that zinc may prevent VSMC calcification by stimulating calcification inhibitor protein OPN synthesis in VSMCs.
Kim, Eun-Ji;Kim, Dong-Kwan;Kim, Shin-Hye;Lee, Kyung-Moo;Park, Hyung-Seo;Kim, Se-Hoon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.15
no.6
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pp.431-436
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2011
Vascular smooth muscle cells can obtain a proliferative function in environments such as atherosclerosis in vivo or primary culture in vitro. Proliferation of vascular smooth muscle cells is accompanied by changes in ryanodine receptors (RyRs). In several studies, the cytosolic $Ca^{2+}$ response to caffeine is decreased during smooth muscle cell culture. Although caffeine is commonly used to investigate RyR function because it is difficult to measure $Ca^{2+}$ release from the sarcoplasmic reticulum (SR) directly, caffeine has additional off-target effects, including blocking inositol trisphosphate receptors and store-operated $Ca^{2+}$ entry. Using freshly dissociated rat aortic smooth muscle cells (RASMCs) and cultured RASMCs, we sought to provide direct evidence for the operation of RyRs through the $Ca^{2+}$- induced $Ca^{2+}$ -release pathway by directly measuring $Ca^{2+}$ release from SR in permeabilized cells. An additional goal was to elucidate alterations of RyRs that occurred during culture. Perfusion of permeabilized, freshly dissociated RASMCs with $Ca^{2+}$ stimulated $Ca^{2+}$ release from the SR. Caffeine and ryanodine also induced $Ca^{2+}$ release from the SR in dissociated RASMCs. In contrast, ryanodine, caffeine and $Ca^{2+}$ failed to trigger $Ca^{2+}$ release in cultured RASMCs. These results are consistent with results obtained by immunocytochemistry, which showed that RyRs were expressed in dissociated RASMCs, but not in cultured RASMCs. This study is the first to demonstrate $Ca^{2+}$ release from the SR by cytosolic $Ca^{2+}$ elevation in vascular smooth muscle cells, and also supports previous studies on the alterations of RyRs in vascular smooth muscle cells associated with culture.
Objective : Papaverine has been used in treating vasospasm following subarachnoid hemorrhage[SAH]. However, its action mechanism for cerebral vascular relaxation is not clear. Potassium channels are closely related to the contraction and relaxation of cerebral smooth muscle. Therefore, to identify the role of potassium and calcium channels in papaverine-induced vascular relaxation, we examine the effect of papaverine on potassium channels in freshly isolated smooth muscle cells from rat basilar artery. Methods : The isolation of rat basilar smooth muscle cells was performed by special techniques. The whole cell currents were recorded by whole cell patch clamp technique in freshly isolated smooth muscle cells from rat basilar artery. Papaverine was added to the bath solution. Results : Papaverine of $100{\mu}M$ into bath solution increased the amplitude of the outward $K^+$ current which was completely blocked by BKCa[large conductance calcium dependent potassium channels]blocker, IBX[iberiotoxin], and calcium chealator, BAPTA[l,2-bis[o-aminophenoxy]ethane-N,N,N',N'-tetraacetic acid], in whole cell mode. Conclusion : These results strongly suggest that potassium channels may play roles in papaverine-induced vascular relaxation in rat basilar artery.
Pyrrolidinedithiocarbamate (PDTC) and N-Acetylcysteine (NAC) are metal and nonmetal-chelating antioxidant which can induce rat and human smooth muscle cell death. When the smooth muscle cells from mouse aorta (MASMC) that we successfully cultured recently was exposed to PDTC and NAC in a normal serum state, the cells were induced to death by these compounds. However, PDTC did not induce the cell death in a serum depleted medium. This data suggests that certain factors in the serum may mediate the cytotoxic effect of PDTC. The metal chelator, Ca-EDTA blocked PDTC-induced cell death, but Cu-, Fe-, and Zn-EDTA did not block the PDTC-induced cell death. This data indicated that copper, iron, and zinc in the serum may lead to the cytotoxic effect of PDTC. Investigation of the intracellular zinc level in PDTC-induced smooth muscle cell death using the zinc probe dye N-(6-methoxy-8-quinolyl)-p-toluenesulfonamide shows that only the muscle-containing layers of the arteries have higher level of zinc. As expected, PDTC increased the intracellular fluorescence level of the zinc. In agreement with these results, the addition of an exogenous metal, zinc, induced the vascular aortic smooth muscle cell death which led to an increased intracellular zinc level. We concluded that PDTC induced mouse aortic smooth muscle cell death required not only zinc level but also intracellular copper and iron level. The mechanism of this antioxidant to induce vascular smooth muscle cell death may provide a new strategy to prevent their proliferation in arteriosclerotic lesions.
Caldesmon (CaD), one of microfilament-associated proteins, plays a key role in microfilament assembly in mitosis. We have investigated the effects of overexpression of the high molecular weight isoform of CaD (h-CaD) on the physiology of vascular smooth muscle cells (VSMCs). Rat aortic VSMCs were stably transfected with plasmids carrying a full length human h-CaD cDNA under control of cytomegalovirus promoter. The majority of the overexpressed h-CaD appears to be localized predominantly on cytoskeleton structures as determined by detergent lysis. The overexpression of h-CaD, however, does not decrease the level of endogenous low molecular weight isoform of CaD. h-CaD overexpressing VSMCs (h-CaD/VSMCs) show a decreased growth rate than that of vector-only transfected cells when determined by $[^3H]thymidine$ uptake and cell counting after fetal bovine serum (FBS) stimulation. h-CaD/VSMCs were smaller than vector-transfected cells by 18% in cell diameter. These data suggest that overexpression of h-CaD can inhibit the poliferation and the cell volume of VSMCs stimulated by growth factors and that the gene therapy with h-CaD may be helpful to prevent the conditions associated with hypertrophy and/or hyperplasia of VSMCs after arterial injuries.
Kim, Yeon;Park, Joo-Yeon;Park, Hyun-Joo;Kim, Mi-Kyoung;Kim, Yong-Il;Bae, Soo-Kyung;Kim, Hyung Joon;Bae, Moon-Kyoung
International Journal of Oral Biology
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v.44
no.1
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pp.20-26
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2019
Periodontal diseases have been associated with the development of cardiovascular diseases. Accumulating evidences have indicated that Porphyromonas gingivalis, a major periodontopathic pathogen, plays a critical role in the pathogenesis of atherosclerosis. In the present study, we demonstrated that P. gingivalis lipopolysaccharide (LPS) increases the mRNA and protein expression of matrix metalloproteinase-9 (MMP-9) in rat vascular smooth muscle cells. We showed that the MMP-9 expression induced by P. gingivalis LPS is mediated by the activation of signal transducer and activator of transcription 3 (STAT3) in vascular smooth muscle cells. Furthermore, the inhibition of STAT3 activity reduced P. gingivalis LPS-induced migration of vascular smooth muscle cells. Overall, our findings indicate that P. gingivalis LPS stimulates the migration of vascular smooth muscle cells via STAT3-mediated MMP-9 expression.
The Kv channel activity in vascular smooth muscle cell plays an important role in the regulation of membrane potential and blood vessel tone. It was postulated that increased blood vessel tone in hypertension was associated with alteration of Kv channel and membrane potential. Therefore, using whole cell mode of patch-clamp technique, the membrane potential and the 4-AP-sensitive Kv current in cerebral arterial smooth muscle cells were compared between normotensive rat and one-kidney, one-clip Goldblatt hypertensive rat (lK,lC-GBH rat). Cell capacitance of hypertensive rat was similar to that of normotensive rat. Cell capacitance of normotensive rat and 1K,lC-GBH rat were $20.8{\pm}2.3$ and $19.5{\pm}1.4$ pF, respectively. The resting membrane potentials measured in current clamp mode from normotensive rat and 1K,lC-GBH rat were $-45.9{\pm}1.7$ and $-38.5{\pm}1.6$ mV, respectively. 4-AP (5 mM) caused the resting membrane potential hypopolarize but charybdotoxin $(0.1\;{\mu}M)$ did not cause any change of membrane potential. Component of 4-AP-sensitive Kv current was smaller in 1K,lC-GBH rat than in normotensive rat. The voltage dependence of steady-state activation and inactivation of Kv channel determined by using double-pulse protocol showed no significant difference. These results suggest that 4-AP-sensitive Kv channels playa major role in the regulation of membrane potential in cerebral arterial smooth muscle cells and alterations of 4-AP-sensitive Kv channels would contribute to hypopolarization of membrane potential in 1K,lC-GBH rat.
Platelet derived growth factor (PDGF)-BB is one of the most potent vascular smooth muscle cell(VSMC) proliferative factors, and abnormal VSMC proliferation by PDGF-BB plays an important role in the development and progression of atherosclerosis. The aim of this study was to assess the effect of YP 12, a newly synthesized obovatol derivative, on the proliferation of PDGF-BB-stimulated rat aortic VSMCs. The anti-proliferative effects of YP 12 on rat aortic VSMCs were examined by direct cell counting and by using $[^3H]$ thymidine incorporation assays. It was found that YP 12 potently inhibited the growth of VSMCs. The pre-incubation of YP 12 (1-4 ${\mu}M$) significantly inhibited the proliferation and DNA synthesis of 25 ng/ml PDGF-BB-stimulated rat aortic VSMCs in a concentration-dependent manner. In accordance with these findings, YP 12 revealed blocking of the PDGF-BB-inducible progression through G0/G1 to S phase of the cell cycle in synchronized cells. Whereas, YP 12 did not show any cytotoxicity in rat aortic VSMCs in this experimental condition by WST-1 assay. These results also show that YP 12 may have potential as an anti-proliferative agent for the treatment of restenosis and atherosclerosis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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