Heterotrophic nanoflagellates (HNFs, 2-20 ㎛ in size) are substantially capable of controlling bacterial abundance in aquatic environments, and microbial taxonomists have studied ecologically important and abundant HNFs for a long time. However, the classifications of HNFs have rarely been reported in Korea on the basis of morphology and 18S rDNA sequencing. Here, previously reported five HNFs from non-Korean habitats were isolated from Korean coastal seawater or intertidal sediments for the first time. Light microscopic observations and 18S rDNA phylogenetic trees revealed that the five isolated species were Cafeteria burkhardae strain PH003, Cafeteria graefeae strain UL001, Aplanochytrium minuta (formerly Labyrinthuloides minuta) strain PH004, Neobodo curvifilus strain KM017 (formerly Procryptobia sorokini), and Ancyromonas micra (formerly Planomonas micra) strain IG005. Being morphologically and phylogenetically indistinct from its closest species, all isolates from Korea were therefore regarded as identical species detected in other countries. Thus, this result indicates an expansion of known habitats that range from those of the five isolates in natural ecosystems on Earth.
A 16S rDNA clone library was generated to investigate the bacterial diversity in tidal flat sediment in Ganghwa Island, Republic of Korea. A total of 103 clones were sequenced and analyzed by comprehensive phylogenetic analyses. No clones were identical to any of known 16S rRNA sequences in public databases. Sequenced clones fell into thirteen lineages of the domain Bacteria: the alpha, beta, gamma, delta, and epsilon Proteobacteria, Actinobacteria, CFB group, Chloroflexi, Acidobacteria, Planctomycetes, Verrucomicrobia, and known uncultured candidate divisions (OP11, BRC1, KSB1, and WS1). Two clones were not associated with any known bacterial divisions. The majority of clones belonged to the gamma and delta Proteobacteria (46.7%). Clones of Actinobacteria were distantly related to known taxa. It is evident from 16S rDNA-based community analysis that the bacterial community in tidal flat sediment is remarkably diverse and unique among other marine environments examined so far.
Cardenas, Erick;Cole, James R.;Tiedje, James M.;Park, Joon-Hong
Environmental Engineering Research
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v.14
no.1
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pp.3-9
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2009
Microorganisms play an important role in the geochemical cycles, industry, environmental cleanup, and biotechnology among other fields. Given the high microbial diversity, identification of the microorganism is essential in understanding and managing the processes. One of the most popular and powerful method for microbial identification is comparative 16S rRNA gene analysis. Due to the highly conserved nature of this essential gene, sequencing and later comparison of it against known rRNA databases can provide assignment of the bacteria into the taxonomy, and the identity of its closest relatives. Isolation and sequencing of 16S rRNA genes directly from natural environments (either from DNA or RNA) can also be used to study the structure of the whole microbial community. Nowadays, novel sequencing technologies with massive outputs are giving researchers worldwide the chance to study the microbial world with a depth that was previously too expensive to achieve. In this article we describe commonly used research approaches for the study of individual microorganisms and microbial communities using the tools provided by Ribosomal Database Project website.
Kim, Young-Tak;Park, Kyoung-Soo;Kim, Hye-Seong;Lee, Hyok-In;Cha, Jae-Soon
Research in Plant Disease
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v.21
no.2
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pp.74-81
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2015
The specific and sensitive nested-PCR method to detect Acidovorax citrulli, a causal agent of bacterial fruit blotch on cucurbitaceae, was developed. PCR primers were designed from the draft genome sequence which was obtained with the Next Generation Sequencing of A. citrulli KACC10651, and the nested-PCR primer set (Ac-ORF 21F/Ac-ORF 21R) were selected by checking of specificity to A. citrulli with PCR assays. The selected nested-PCR primer amplified the 140 bp DNA only from A. citrulli strains, and detection sensitivity of the nested PCR increased 10,000 times of $1^{st}$ PCR detection limit (10 ng genomic DNA/PCR). The nested PCR detected A. citrulli from the all samples of seed surface wash (external seed detection) of the artificially inoculated watermelon seeds with $10^1cfu/ml$ and above population of A. citrulli while the nested PCR could not detected A. citrulli from the mashed seed suspension (internal seed detection) of the all artificially inoculated watermelon seeds. When the naturally infested watermelon seeds (10% seed infested rate with grow-out test) used, the nested PCR detected A. citrulli from 2 seed samples out of 10 replication samples externally and 5 seed samples out of 10 replication samples internally. We believe that the nested-PCR developed in this study will be useful method to detect A. citrulli from the Cucurbitaceae seeds.
Lee, Sun Keun;Lee, Jong Kyu;Kim, Kyung Hee;Lee, Seung Kyu;Lee, Sang Yong
Journal of Korean Society of Forest Science
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v.96
no.4
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pp.425-431
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2007
To investigate genetic diversity and PCR detection of Rhizina undulata, PCR detection and sequence analysis of rDNA ITS region of R. undulata in soil were analyzed and developed. The length of partial 18S rDNA from four R. undulata isolates were 1,375 nt. The sequence similarity of R. undulata isolates was 100%. The rDNA ITS regions of R. undulata isolates were 585 nt long. Nucleotide sequencing of the ITS regions showed that PDK-1, PTT-1 and PDJ-9 isolates had 100% sequence identity. But, PDS-5 isolate differed from the three isolates by two nucleotide substitution. R. undulata-specific primers designed by the sequence of ITS region were used in PCR detection of R. undulata. PCR products about 525 bp size, which is specific to R. undulata, were amplified from total DNAs of R. undulata isolates. To assay the sensitivity of PCR detection by R. undulata ITS-specific primer, purely cultured mycelial suspension of R. undulata was serially diluted and mixed with 100g of sterile sandy loam soil, respectively. And then, PCR products of total DNAs extracted from each mycelium-soil mixtures were analysed. The PCR protocol could detected up to 1ng mycelium of R. undulata within 100g of soil.
Kim, Sang-Hwan;Hong, Yeon-Sik;Lee, Ho-Joun;Yoon, Jong-Taek
Development and Reproduction
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v.15
no.4
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pp.315-324
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2011
This study was conducted to detect the specific expressing genes by using RAPD-PCR and RFLP method in the Korea Native Brindled Cattle, Korean Native cow and Holstein cattle. And then, the specific marker gene was investigated by the analysis of the genes for detection significance according to the expressing pattern. We found the specific expression gene by the RAPD-PCR analysis in Korea Native Brindled Cattle. It was detected the differences of the species in the colour and external section. The Korea Native Brindled Cattle were vary low compare to the Korean Native cow and Holstein cattle by analysis result of polymorphism and distribution. And there were a found the specific marker gene by sequencing in the R9B gene fragment of Korea Native Brindled Cattle. And the sequencing result of the R9B was different between Korean Native cow and Holstein cattle. Thus, this gene can be apply as the specific marker gene in the Korea Native Brindled Cattle.
To investigate the genetic relationship among 12 species belonging to the Fusarium section Martiella, Dlaminia, Gibbosum, Arthrosporiella, Liseola and Elegans, the internal transcribed spacer(ITS) regions of ribosomal DNA (rDNA) were amplified with primer pITS1 and pITS4 using the polymerase chain reaction(PCR). After the amplified products were digested with 7 restriction enzymes, restriction fragment length polymorphism (RFLP) patterns were analyzed. The partial nucleotide sequences of the ITS region were determined and compared. Little variation was observed in the size of the amplified product having sizes of 550bp or 570bp. Based on the RFLP analysis, the 12 species studied were divided into 5 RFLP types. In particular, strains belonging to the section Martiella were separated into three RFLP types. Interestingly, the RFLP type of F. solani f. sp. piperis was identical with that of isolates belonging to the section Elegans. In the dendrogram derived from RFLP analysis of the ITS region, the Fusarium spp. examined were divided into two major groups. In general, section Martiella excluding F. solani f. sp. piperis showed relatively low similarity with the other section. The dendrogram based on the sequencing analysis of the ITS2 region also gave the same results as that of the RFLP analysis. As expected, 5.8S, a coding region, was highly conserved, whereas the ITS2 region was more variable and informative. The difference in the ITS2 region between the length of F. solani and its formae speciales excluding F. solani f. sp. piperis and that of other species was caused by the insertion/deletion of nucleotides in positions 143-148 and 179-192.
Kim, Yeong-Jin;Cho, Hyo-Jin;Yu, Sun-Nyoung;Kim, Kwang-Youn;Kim, Hyeung-Rak;Ahn, Soon-Cheol
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.40
no.6
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pp.356-361
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2007
Recently, the development of various culture-independent identification techniques for environmental microbes has greatly enhanced our knowledge of microbial diversity. In particular, denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) of 16S rDNA fragments, generated using the polymerase chain reaction (PCR) is frequently used to examine the diversity of environmental bacterial populations. This method consists of direct extraction of the environmental DNA, amplification of the 200-600 bp 16S rDNA fragments with universal primers, and separation of the fragments according to their melting point on a denaturing gradient gel. In this study, we investigated the seaside microbial community in coastal areas of Busan, Korea, using culture-independent techniques. First, marine genomic DNA was extracted from seawater samples collected at Songjeong, Gwangahn, and Songdo Beaches. Then, PCR was used to amplify the bacterial 16S rDNA using universal primers, and DGGE was used to separate the amplified 500 bp 16S rDNA fragments. Finally, the tested 16S rDNA genes were further analyzed by sequencing. Based on these experiments, we found that DGGE analysis clearly showed variation among the regional groups. It can be used to monitor rapid changes in the bacterial diversity of various environments. In addition, the sequence analysis indicated the existence of many unculturable bacteria, in addition to Arcobacter, Pseudoaltermonas, and Vibrio species.
Sequence analysis of the 16S rRNA gene has been widely used for the classification of microorganisms. However, we have been unable to clearly identify five Flavobacterium species isolated from a freshwater by using the gene as a single marker, because the evolutionary history is incomplete and the pace of DNA substitutions is relatively rapid in the bacteria. In this study, we tried to classify Flavobacterium species through multilocus sequence analysis (MLSA), which is a practical and reliable technique for the identification or classification of bacteria. The five Flavobacterium species isolated from freshwater and 37 other strains were classified based on six housekeeping genes: gyrB, dnaK, tuf, murG, atpA, and glyA. The genes were amplified by PCR and subjected to DNA sequencing. Based on the combined DNA sequence (4,412 bp) of the six housekeeping genes, we analyzed the phylogenetic relationship among the Flavobacterium species. The results indicated that MLSA, based on the six housekeeping genes, is a trustworthy method for the identification of closely related Flavobacterium species.
Jo, Kang-Ick;Lee, Bo-Hwa;Kim, Bo-Kyung;Jo, Hae-Young;Kim, Sung-Koo;Nam, Soo-Wan;Lee, Jin-Woo
한국생물공학회:학술대회논문집
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2005.10a
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pp.307-311
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2005
Marine microorganisms to produce functional biopolymers were isolated from the seashore of the Kyungsang province. Microorganisms to hydrolyze carboxy-methyl cellulose(CMC) were cultured in marin broth and the other liquid medium that contained 2.0% (w/v) glucose, 0.25% yeast extract, 0.5% $K_2HPO_4$, 1% NaCl, 0.02% $MgSO_4{\cdot}7H_2O$ and 0.06% $(NH_4)_2SO_4$ to investigate the ability to produce carboxymethyl cellululase (CMCase) under aerobic conditions. Twelve microorganisms among them showed higher activities of CMCase than B. amyloliquefaciens DL-3, which was known as a cellulase-producing strain. The microorganism showing highest activity of CMCase in this study was identified as Bacillus subtilis subsp. subtilis with 16S rDNA partial sequencing and gyrase A partial sequencing and named as B. subtilis subsp. subtilis A-53.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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