The present study has been perromed to investigate the optimal conditions for protoplast formation and regeneration of oleandomycin-producing Streptomyces antibioticus (S. antibioticus) KCTC 1081. Mycelia were grown in YME medium containing 0.2% (w/v) glycine and converted into the protoplast by incubating at 35.deg.C for 60 minutes in protoplast buffer (P buffer) containing 4 mg/ml lysozyme. The reversion of protoplasts to the normal filamentous state was examined by the growth on various synthetic agar media. A high reversion rate was obtained by incubating the protoplasts on a hypertonic agar medium containing 20 mM $Mg^{++}$, 5 mM $Ca^{++}$ and 0.3 M sucrose at 28.deg.C for 5 days. From these experiments, we established the improved regeneration medium and a protocol which supports higher and more consistent levels of regeneration of S. antibioticus protoplasts. The regenerant showed an increased antimicrobial activity compared with that of the initial strain.n.n.
A system was established for induction of multi-shoots and plant regeneration from mesophyll protoplasts of alfalfa, Medicago sativa L. cv. Vernal. Different hormonal effects were tested at each step of protoplast culture, i.e. cell division in modified Kao's liquid medium (K566-7). calli formation on SH semi solid medium, and multi-shoot regeneration from calli on SHa and SHb solid media. Frequency of multi-shoots and plant regeneration was affected by various combinations of phytohormones in final step. The evaluation of multi-shoots induction systems via protoplast culture was discused.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1986.12a
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pp.527.3-527
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1986
Several factors predicted to affect the protoplast formation and regeneration were investigated. The optimum lysozyme, casamino acid and PVP concentration were 0.5 (mg/$m\ell$), 0.1 (%) and 1.5(%). In B. pumilus, Penicillin-G treatment concentration was 0.3 (U/$m\ell$) and optimum treatment period was transit log. phase. And in the case of Celm. fimi, 0.3 (U/$m\ell$) and initial log. phase. Osmotic stabilizer and di-cation for OSM medium of B.pumilus and Gelm .fimi were 25mM CaCl2, 0.5M sodium sucinate and 50mM MgCl$_2$, 100mM CaCl$_2$, 0.4M sodium succinate. The regeneration frequency of B.pumilus and Celm. fimi were 14.6(%) and 6.9(%).
In order to develope a protoplast fusion system for citric acid and SCP producing Candida lipolytica, the optimal conditions for the formation and regeneration of protoplast were examined and the protoplast fusion was performed. At the optimal conditions of growth phase and Zymolyase treatment, frequencies of protoplast formation were 98%. Approximately 20-30% of protoplasts were regenerated on the regeneration minimal medium containing 3% agar and 30mM $CaCl_2$ with the overlay of the same medium. The fusion frequencies, 4-5${\pm}$10$^{-4}$, were accomplished by the treatment of two nutritionally complementary auxotrophic protoplasts, L-14 ($lys^-$) and T-24 (X$30^-$), with 30% PEG 6000 containing 100mM $CaCl_2$ at $30^{\circ}C$ for 20 minutes.
This experiment was carried out to investigate proper conditions for protoplast isolation and regeneration from mycelia of Lyophyllum decastes. Novozym 234(10 mg/ml) with 0.6 M $MgSO_4$ in phosphate buffer(pH 4.0) was proper for protoplast isolation. The optimal reaction time of the mycelium with the lytic enzyme was four hours in shaking condition at 120 strokes per min. When the mycelium of L. decastes was cultured at $24^{\circ}C$ for 5 days, the formation of protoplasts was effective. The liquid medium was more effective for protoplast isolation than the solid medium. In the liquid medium, high yields of protoplasts were obtained from 0.6 M $MgSO_4$ osmotic stabilizer. Protoplasts of L. decastes were regenerated to normal hyphal growth and the regeneration frequency of the protoplasts in the complete agar medium containing Triton X-100(0.0025%) was $5.94{\sim}8.32%$. The regeneration medium stabilized with 0.6 M sucrose was the best for regeneration of the protoplasts. In contrast to protoplast formation, regeneration was inhibited by the inorganic salts used as osmotic stabilizer.
Optimized conditions for protoplast preparation and regeneration from young hyphae of Monascus ruber were established. Heat shock treatment of spores gave rapid and synchronized germination. Spores collected from cultures grown for 7-8 days at $30^{\circ}C$ were germinated until over 70% germ tubes reached to 3-5 spore length. Enzymatic digestion of young hyphae was optimal with 50 mg/mL Glucanex in 0.1 M sodium citrate buffer containing 0.8 M mannitol as an osmotic stabilizer. Regeneration rate was around 10% when 0.8 M sorbitol was used as an osmotic stabilizer in regeneration medium. These conditions will be applied in genetic study of M. ruber that produces citrinin at high level and thus is good model strain for molecular genetic dissection of citrinin biosynthesis.
Conditions for the production and regeneration in Lactobacillus bulgaricus protoplasts were investigated. Protoplasts of L bulgaricus strains were obtained by treatment with mutanolysin and lysozyme together in a protoplast forming buffer containing 0.02 M N-2-hydroxyethylpiperazine-N'-2-ethanesulfonic acid (HEPES) (pH 7.0) and 0.5 M sucrose. High protoplast yield was obtained from cells cultured in the de Man, Rogosa and Sharpe(MRS) medium at the middle to late logarithmic growth phase. Regeneration was efficiently accomplished with a complex medium containing 1% sucrose, 20 mM $MgCl_2$, 5% gelatin, and 0.5% bovine serum albumin. The frequency of regeneration of protoplasts was 10~20% after 5 days of incubation at $30^{\circ}C$.
Auxotrophic mutant were isolated from wild types by the treatment with NTG as a mutagen, and the conditions of protoplast formation for them were established. The protoplasts of killer yeast Saccharomyces cerevisiae K52 were formed to the level of above 70% when cells grown for 20 hr in PM medium were treated with 200 unit/ml Lyticase 50,000 at $30^{\circ}C$ for 60 min after pretreatment of 50 mM 2-mercaptoethanol in 10mM potassium phosphate buffer (pH 7.5) containing EDTA and 0.6 M sorbitol for 15 min. Also, the protoplast of the recipient S. cerevisiae S 29 were formed to the level of above 85% as it was cultured to the log phase of 24 hr in PM medium under the same conditions. The fusion frequency between the protoplast of killer yeast S. cerevisiae K 52 and the protoplast of recipient S. cerevisiae S 29 was reached to $8.2\times 10^{-6}$ when the hypertonic regeneration medium embeded with the fused protoplasts after mixing the parental protoplasts to 10$^{8}$ cells/ml in SP buffer containing 20 mM $CaCl_{2}$ and 30% PEG 6,000 for 15 min at $30^{\circ}C$ were incubated.
This paper reports an improved protocol for isolation, culture and regeneration of Lotus corniculatus protoplasts. A range of parameters which influence the isolation of L. corniculatus protoplasts were investigated, i.e., enzyme combination, tissue type, incubation period and osmolarity level. Of three enzyme combinations tested, the highest yield of viable protoplasts was achieved with the combination of 2% Cellulase Onozuka RS, 1% Macerozyme R-10, 0.5% Driselase and 0.2% Pectolyase. The use of etiolated cotyledon tissue as a source for protoplast isolation proved vital in obtaining substantially higher protoplast yields than previously reported. Culture of the protoplasts on a nitrocellulose membrane with a Lolium perenne feeder-layer on the sequential series of PEL medium was highly successful in the formation of microcolonies with plating efficiencies 3-10 times greater than previous studies. Shoot regeneration and intact plants were achieved from 46% of protoplast-derived cell colonies.
In order to produce L-lysine from cellulosic substrates by the intergeneric protoplast fusion between cellulolytic bacteria, Cellulomonas flavigena KFCC31221 and amino acid producing bacteria, Brevibacterium flavum ATCC14067, Corynebacteriurn glutamicum ATCC13032, conditions for protoplast formation and regeneration of these strains were investigated. After the strains were mutated with 500$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ N-methyl-N'-nitro N-nitrosoguanidine for 30 min and the mutants were enriched by treating 300$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ penicillin-G for 2 hrs, B. flavum Hse- Str$^{r}$ , C. glutamicum Met$^{-}$Thr$^{-}$ Rif$^{r}$ and Cellulomonas flavigena Thr$^{-}$Val$^{-}$Kan$^{r}$ were isolated. The rate of protoplast formation ranged from 95 to 98% when strains were treated at the concentration of 500$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ of lysozyme, pH 6.5, 33$^{\circ}C$, for 6 hrs. in Tris- malate buffer supplemented with 0.4M sucrose as osmotic stabilizer. Approximately 30-33% protoplast was regenerated on the regeneration complete medium(RCM) containing 1.5% agar and 0.5M sodium succinate overlaid with the same medium except 0.7% agar.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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