In order to investigate physiological characteristics of fusants by interspecific protoplast fusion of the genus Cellulomonas, protoplasts of Cellulomonas flavigena NCIB 12901 and Cellulomonas bibula NCIB 8142 were fused and cell wall regenerated. To give gene maker, C. bibula was treated with 500 ug/ml NTG for 1 hr and arginine requiring auxotrophic mutants were isolated. Protoplasts of the genus Cellulomonas were obtained by treatment with $600{\mu}{\textrm{g}}$/ml lysozyme, and 0.5M sorbitol was optimal for osmotic stabilizer on protoplast fromation. Protoplast fusion was enhanced by 40% PEG)M.W.6,000) containing 25 mM $CaCl_{2}$ at $30^{\circ}C$ for 30 min and fusion frequency between C. bibula and C. flavigena was $5\times 10^{-4}$. Processes of protoplast formation, cell wall regeneration and protoplast fusion were obsdrved by scanning electron microscope. By comparing enzyme activities of cellulase, exocellobiohydrolase, .betha.-glucosidase of the parent strains of Cellulomonas with those of thier mutants and fusants, fusants with increased enzyme activity were obtained. By the studies on nutritional requirement, antibiotic resistance, cellulolytic enzyme activities, type of peptidoglycan and motility of two mutants and fusants, fusants were proved to be recombinant of both mutant strains.
Forniation ancl ~regcncration oi' conitlial pro1oplast of Pc, ti~i.rlli~in~~~ c~rr~~culo.hryupmel.- - czllulolytic Ihngus. were examined. By using Novozyme 134(1'!/0 w/c) as a cell wall lytic enzyme. the highest yield of protopl;~sts exceeding 501%, war obtained from the qwollen conidiosporcs preincubatrd in the minimal medium containing 2-tleoxy-D-glucose(2-UC;. 75 pglml) for 10-11 11. No protoplast were obtained horn dormant spores. The regeneration frequency of the protoplasts was 49.2'!11. which was higher than that of mycclium originated protoplast (4.6-17.X1X, . in 0.6 M MgS04. pH 5.6). 'l'lie best osmotic stahilizcr ror the isoaltion and regcueration of thc protoplast was 0.6 M iimmonium sulfatc and 0.6 M magnesiuni sulfhte. respectively. 'I'lie process of the protoplast isolaiton l'ro~n swollen cnnirliospore ancl regeneration ha\, ing two pattcrns from protoplast were obsen'etl through light microscope.
This research was conducted to get the basic materials necessary to obtain the somatic hybrid plant between Solanum sisymbriifolium and other Solanum species (S. integrifolium and S. toxicarium). Regarding the formation of colony from the protoplast in S. sisymbriifolium, S. integrifolium and the fused protoplast mixture; for the S. sisymbriifolium, a colony was observed in F medium(Kao medium containing $5.0mg{\cdot}L^{-1}\;NAA,\;1.0mg{\cdot}L^{-1}$ 2,4-D and $1.0mg{\cdot}L^{-1}$ BA); and for the S. integrifolium, in G medium (a half strength MS medium containing 0.03 M sucrose, 0.4 M mannitol, $1.0mg{\cdot}L^{-1}\;NAA,\;1.0mg{\cdot}L^{-1}$ kinetin) respectively. In mixed cultured protoplast after electriofusion treatment, the cell division and colony formation were observed in both media F and G. For the shoot and root formation rate, there was no difference between the parent of each breed and mixed protoplast regardless of the medium. In the fused protoplast mixture of S. sisymbriifolium and S. toxicarium, a colony formation was also observed in both media F and H(a half strength MS medium containing 0.03 M sucrose, 0.4 M mannitol, $1.0mg{\cdot}L^{-1}\;NAA,\;1.0mg{\cdot}L^{-1}$ kinetin); and there was no difference in the shoot and root formation rate between the parent and the mixed protoplast.
The conditions for the protoplast fusion of auxotrophic mutants of Penicillium verruculosum were determined. A preparation of commercial enzyme Novozym 234 was used to successfully isolate protoplast from the 20hr old mycelium of P. verruculosum. Under optimal condition, the protoplast yield ranged from 2.4$\times$10$^7$ to 3.0$\times$10$^7$ protoplasts from 400mg of damp mycelia of various auxotrophic mutant strains. The regeneration frequency ranged from 26.6 to 42.4% and the spontaneous reversion frequency of the protoplasts on the regeneration minimal medium was less than 10$^7$. The optimal concentration of PEG 6000 was 20%, and exposure of protoplasts to PEG for 10 min was found to be sufficient for protoplast fusion. Optimal pH of fusion mixture was deter-mined as 5.5 and l0mM of calcium chloride in fusion mixture effectively enhanced the protoplast fusion frequency. Under optimal condition, the fusion frequency between various auxotrophs ranged from 1.8$\times$10$^{-3}$ to 3.5$\times$0$^{-3}$.
In order to establish the process of interspecific protoplast fusion of the genus Cellulomonas capable of utilizing of cellulose, C. flavigena NCIB 12901 and Cellulomonas sp. CSI-1, the optimum conditions for the regeneration and fusion were examined. The condition of suitable osmotic stabilizer for the protoplast regeneration of C. flavigena was established by using 0.4M sorbitol. And then, by addition of 3% po]yvinyl pyrrolidone (PVP) to cell wall regeneration medium, regeneration frequency was increased 3 times higher than that without PVP addition. The optimum conditions for the interspecific protoplast fusion between auxotrophic and antibiotics resistant mutants were obtained with 40%(W/V) of PEG (polyethylene glycol) 6000 as the fusogenic agent and 25mM of CaCl$_2$on treating time for 15 min. The fusion frequency between mutants was from 2.0$\times$10$^{-4}$ to 4.0$\times$10$^{-4}$ under the optimum conditions. The fusants were confirmed to revert from protoplast to cells of rod type during regeneration process and the aggregation of protoplast by PEG was observed. Also the progress of fusion was observed by scanning electron microscopy, Many isolated fusants were shown to be complement clones of both parents which occured at a high frequency among the isolated clones.
In order to develope interspecific fusion of the genus Cellulomonas capable of assimilation cellulose, the optimun conditions for the protoplast formation was investigated to examine the susceptibility of cell wall, between different species of the same genus using scanning electron microscope. The variation in the susceptibilities of Cellulomonas sp. CS 1-1 and C. flavigena to lysozyme treatment were considerably remarkable, although they belong to the same genus. The rate of protoplast formation of CS1-1 was 99.9% being treated with lysozyme $(100{\mu}g/ml)$ for 30 minute and that of C. flavigena was about 80% being treated at the concentration of $600{\mu}g/ml$ of lysozyme for 6 hours. The susceptibility of cell wall to the lysozyme treatment on protoplast formation of the strain, CS1-1 seems not to be depend on the cultural periods of cells. On the contrary, that of C. flavigena was considerably depend on the periods. Cells of C. flavigena at mid exponential phase could be more efficiently converted to protoplast cells than those at late exponential phase be done. The rate of the protoplast formation was 95%, when cells of C. flavigena at mid exponential phase were treated with lysozyme $600{\mu}g/ml$ for 6 hours and observed by SEM. In the evalution of protoplast formation of the CS1-1 results of counting method in plate after osmotic shock treatment were similar to the results of the direct observation method by means of SEM. But in the case of C. flavigena the latter method was much more reliable than the former, because the differences between the number of spheroplasts and protoplasts were not able to figure out on conuting the number of protoplast after osmotic shock tretment.
This paper reports an improved protocol for isolation, culture and regeneration of Lotus corniculatus protoplasts. A range of parameters which influence the isolation of L. corniculatus protoplasts were investigated, i.e., enzyme combination, tissue type, incubation period and osmolarity level. Of three enzyme combinations tested, the highest yield of viable protoplasts was achieved with the combination of 2% Cellulase Onozuka RS, 1% Macerozyme R-10, 0.5% Driselase and 0.2% Pectolyase. The use of etiolated cotyledon tissue as a source for protoplast isolation proved vital in obtaining substantially higher protoplast yields than previously reported. Culture of the protoplasts on a nitrocellulose membrane with a Lolium perenne feeder-layer on the sequential series of PEL medium was highly successful in the formation of microcolonies with plating efficiencies 3-10 times greater than previous studies. Shoot regeneration and intact plants were achieved from 46% of protoplast-derived cell colonies.
In order to construct a yeast strain having high ethanol tolerance together with good lactose fermentation ability, the protoplast fusion using Saccharomyces cerevisiae STV 89 and Kluyveromyces fragilis CBS 397 was carried out. Auxotrophic mutants of K. fragilis were obtained as a selection marker by treatment of ethylmethane sulfonate. The best mutant for protoplast fusion was selected based on the capabilities of ${\beta}-galactosidase$ production and lactose fermentation. The protoplast fusion using polyethylene glycol and calcium chloride solution led to the fusion frequence of $3{\times}10^{-6}$ and a number of fusants were obtained. Among these fusants, a fusant F-3-19 showed the best results in terms of ethanol tolerance, ${\beta}-galactosidase$ activity and lactose fermentation. The performance of lactose fermentation and ethanol tolerance by this fusant were better than those of K. fragilis. Study on the ethanol tolerance having relation to fatty acid composition and intracellular ethanol concentration revealed that the fusant F-3-19 had a higher unsaturated fatty acids content and accumulated less amount of intracellular ethanol compared with a parent of K. fragilis.
The cyclic undecapeptide cyclosporin A (CyA), one of the most valuable immunosuppressive drugs, is produced nonribosomally by a multifunctional cyclosporin synthetase enzyme complex by the filamentous fungus Tolypocladium niveum. To increase CyA productivity by wild-type T. niveum (ATCC 34921), random mutagenesis was first performed using an antifungal agar-plug colony assay (APCA) selection approach. This generated a mutant strain producing more than 9-fold greater CyA than the wild-type strain. Additionally, a foreign bacterial gene, Vitreoscilla hemoglobin gene (VHb), was transformed via protoplast regeneration and its transcription was confirmed by RT-PCR in the UV-irradiated mutant cell. This led to an additional 33.5% increase of CyA production. Although most protoplast-regenerated T. niveum transformants tend to lose CyA productivity, the optimized combination of random mutagenesis and protoplast transformation described here should be an efficient strategy to generate a commercially valuable, yet metabolite low-producing, fungal species, such as CyA-producing T. niveum.
The experiment of protoplast regeneration and reversion were undertaken to provide a basic techniques for protoplast manipulation. Protoplasts of Pleurotus florida and Pleurotus ostreatus were reverted to normal hyphal growth and the reversion frequency of both fungal protoplasts were $0.24{\sim}3.19%$. Reversion medium stabilized with 0.6 M potassium chloride and sucrose was better than the other stabilized one. The protoplast reversion frequency was increased when various amino acid and vitamin compounds were added to the hypertonic mushroom complete agar medium.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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