The gene ADH encoding NAD-dependent alcohol dehydrogenase from Bacillus stearothennophilus was cloned and overexpressed as a GST fusion protein at a high level in Escherichia coli. The expressed fusion protein was purified simply by glutathione affinity chromatography. GST fusion protein was then cleaved by thrombin, while soluble enzyme was further purified by glutathione affinity chromatography. The recombinant enzyme had the same elctrophoretic mobility as the native enzyme from Bacillus stearothennophilus. The recombinant enzyme catalyzed the oxidation of a number of alcohols and exhibited high activities towards secondary alcohols. The $K_m\;and\;V_{max}$ values of the recombinant enzyme for ethanol were 5.11 mM and 61.35 U/mg, respectively. Pyridine and imidazole notably inhibited the enzymatic activity. The activity of the recombinant enzyme optimally proceeded at pH 9.0 and $70^{\circ}C$. The midpoint of the temperature-stability curve for the recombinant enzyme was approximately $68^{\circ}C$, and the enzyme was not completely inactivated even at $85^{\circ}C$. The recombinant enzyme showed a high resistance towards denaturing agents (0.05% SDS, 0.1 M urea). Therefore, due to its stability and relatively broad substrate specificity, the recombinant enzyme could be utilized in bio-industrial processes and biosensors.
Photosynthesis uses light energy to drive the oxidation of water at an oxygen-evolving catalytic site within photosystem II (PSII). Chlorophyll binding by the photosystem II subunit S protein, PsbS, was found to be necessary for energy-dependent quenching (qE), the major energy-dependent component of non-photochemical quenching (NPQ) in Arabidopsis thaliana. It is proposed that PsbS acts as a trigger of the conformational change that leads to the establishment of nonphotochemical quenching. However, the exact structure and function of PsbS in PSII are still unknown. Here, we clone and express the recombinant PsbS gene from Arabidopsis thaliana in E. coli and purify the resulting homogeneous protein. We used various biochemical and biophysical techniques to elucidate PsbS structure and function, including circular dichroism (CD), fluorescence, and DSC. The protein shows optimal stability at $4^{\circ}C$ and pH 7.5. The CD spectra of PsbS show that the conformational changes of the protein were strongly dependent on pH conditions. The CD curve for PsbS at pH 10.5 curve had the deepest negative peak and the peak of PsbS at pH 4.5 was the least negative. The fluorescence emission spectrum of the purified PsbS protein was also measured, and the ${\lambda}_{max}$ was found to be at 328 nm. PsbS revealed some structural changes under varying temperature and oxygen gas condition.
This study was to examine the effect of functional properties of soy protein isolate(SPI) and qualities of soybean curd upon proteolytic hydrolysis. SPI was hydrolyzed using proteolytic enzyme, bromelain. The protein content of SPI by microkjeldahl method was 84% and the degree of hydrolysis in modified soy protein isolate(MSPI) was 2.7%. The solubility of MSPI was higher than that of control at various pH tested and proteolytic hydrolysis was increased emulsion formation and foam expansion while decreased emulsion stability, foam stability and calcium precipitation. Modified soybean curdI, standard soybean milk: Modified soybean milk=3:1, was soft and springy soybean curd when the texture properties of soybean curd were tested by texture profile analysis using Instron and sensory evaluation. The rheological model of soybean curds was investigated by stress relaxation test. The analysis of relaxation curve revealed that the rheological behavior of soybean curds could be expressed by 7-element generalized Maxwell model. The equilibrium modulus and modulus of elasticity decreased as the ratio of modified soybean milk was increased.
A fluorometric detection technique for HDL (High Density Lipoprotein) and LDL (Low Density Lipoprotein) was developed for application in a fiber-optic immunosensor using a protein A Langmuir-Blodgget (LB) film. For the fluorescence immunoassay, antibodies specific to HDL or LDL were imobilied on the protein A LB film, and a fluorescence amplification method was developed to overcome their weak fluorescence. The deposition of protein A using the LB technique was monitored using a surface pressure-are $({\pi}-A)$ curve, and the antibody immobilization of the protein A LB film was experimentally verified. The immobilized antibody was used to separate only HDL and LDL from a sample, then the fluorescence of he separated HDL or LDL was amplified. The amount of LDL or HDL was measured using the developed fiber optic fluorescence detection system. The optical properties resulting from the reaction of HDL or LDL with o-phtaldialdehyde, detection range, response time, and stability of the immunoassay were all investigated. The respective detection ranges for HDL and LDL were sufficient to diagnose the risk of coronary heart disease. The amplification step increased the sensitivity, while selective separation using the immobilized antibody led to linearity in the sensor signal. The regeneration of the antibody-immobilized substrate could produce a stable and reproducible immunosensor.
Objective: Interleukin-6 (IL-6) is a T cell-derived B cell stimulating factor which plays an important role in inflammatory diseases. In this study, the pharmacokinetic properties of LMT-28 including physicochemical property, in vitro liver microsomal stability and an in vivo pharmacokinetic study using BALB/c mice were characterized. Methods: LMT-28 has been synthesized and is being developed as a novel therapeutic IL-6 inhibitor. The physicochemical properties and in vitro pharmacokinetic profiles such as liver microsomal stability and Madin-Darby canine kidney (MDCK) cell permeability assay were examined. For in vivo pharmacokinetic studies, pharmacokinetic parameters using BALB/c mice were calculated. Results: The logarithm of the partition coefficient value (LogP; 3.65) and the apparent permeability coefficient values (Papp; 9.7×10-6 cm/s) showed that LMT-28 possesses a moderate-high cell permeability property across MDCK cell monolayers. The plasma protein binding rate of LMT-28 was 92.4% and mostly bound to serum albumin. The metabolic half-life (t1/2) values of LMT-28 were 15.3 min for rat and 21.9 min for human at the concentration 1 μM. The area under the plasma drug concentration-time curve and Cmax after oral administration (5 mg/kg) of LMT-28 were 302±209 h·ng/mL and 137±100 ng/mL, respectively. Conclusion: These data suggest that LMT-28 may have good physicochemical and pharmacokinetic properties and may be a novel oral drug candidate as the first synthetic IL-6 inhibitor to ameliorate mammalian inflammation.
Riboflavin is a water-soluble vitamin, which serves as a precursor to flavin mononucleotide and flavin adenine dinucleotide. This study aimed to develop a simple and rapid liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) analysis for the quantification of riboflavin in the Beagle dog plasma. This method utilized simple protein precipitation with acetonitrile and 13C4, 15N2-riboflavin was used as an internal standard (IS). For chromatographic separation, a hydrophilic interaction liquid chromatography (HILIC) column was used with gradient elution. The mobile phase consisted of 0.1% (v/v) aqueous formic acid with 10 mM ammonium formate and acetonitrile with 0.1% (v/v) formic acid. Since riboflavin is an endogenous compound, 4% bovine serum albumin in phosphate buffered saline was used as a surrogate matrix to prepare the calibration curve. The quantification limit for riboflavin in the Beagle dog plasma was 5 ng/mL. The method was fully validated for its specificity, sensitivity, accuracy and precision, recovery, and stability according to the US FDA guidance. The developed LC-MS/MS method may be useful for the in vivo pharmacokinetic studies of riboflavin.
In order to study the effects of enzyme modification on the physico-chemical and functional properties of myofibrillar protein prepared from the frozen sardine, Sardinops melanostica, the protein was hydrolyzed with pepsin under the enzyme-substrate ratio 1:100 at $37^{\circ}C$ and pH 1.65 for 1, 4, 8, 12, and 24 hr, respectively. The properties of pepsin-modified sardine myofibriliar protein were determined. The extents of proteolysis with pepsin as a fuction of time was showed a typical enzyme hydorlysis curve with an initial region of 4 hour period followed by plateau region. The SDS-acrylamide slab gel electrophoresis patterns of pepsin-modified proteins showed mainly disappearances of minor protein bands, but no changes of main protein bands. The gel filtration patterns through Sephadex G-75 of sardine myofibrillar protein showed two big peaks and three small peaks. All the small peaks were disappearanced by proteolysis with pepsin in one hour. and during the period of proteolysis the fast big peak became gradually smaller and the late big peak eluted more slowly. By proteolysis, the emulsifying activity and emulsifying capacity of sardine myofibrillar protein were all decreased. The effects of pepsin-modification on emulsifying capacity were greater than those on emulsifying activity of protein. The aeration capacity of the protein was increased about 1.9 folds and the foam stability decreased to 0.6 folds of control by pepsin-modification. The pepsin-modified sardine myofibrillar proteins showed about 0.6 folds of heat coagulation and 1.4 folds of viscosity of control. The pH dependence of solubilities of sardine myofibrillar protein showed two isoelectric areas of pH 5 and 9. The pepsin-modified protein showed more clear pH dependences at the early stage but not at the late stage of proteolysis.
Waxy barley flour was fermented by two kinds of starter cultures; L. plantarum and L. brevis, alone or in combination and the effect was evaluated on waxy barley and wheat composite bread quality. In all three barley sourdoughs, fermentation decreased the pH, total sugar and reducing sugar, and increased lactic acid bacteria cell numbers. However yeasts (S. cerevisiae) were reduced. There was significant difference in physicochemical characteristics between the reference(composite barley dough containing improvement agent) and the barley sourdoughs (p <0.05). Barley sourdough fermented by L. plantarum showed more desirable farinogram properties of peak time, stability and elasticity than that of the reference. The rheofermentometer data for L. brevis produced the most $CO_2$ release curve, whereas L. plantarum held maximum $CO_2$ retention differed significantly from that of the breads made with barley sourdoughs fermented with the respectives starter cultures (p < 0.05). Barley sourdough bread fermented with L. plantarum resulted in better bread quality than the reference bread. The positive effect of fermentation with L. plantarum on bread quality was evident when comparing the well developed protein-starch matrix structure of the bread baked with barley sourdough with the reference bread.
Thermodynamic properties of ubiquitin transient folding intermediate were studied by measuring folding kinetics in varying temperatures and denaturant concentrations. Through quantitative kinetic modeling, the equilibrium constant, hence folding free energy, between unfolded state and intermediate state in several different temperatures were calculated. Using these values, the thermodynamic parameters were estimated. The heat capacity change $({\Delta}C_p)$ upon formation of folding intermediate from unfolded state were estimated to be around 80% of the overall folding reaction, indicating that ubiquitin folding intermediate is highly compact. At room temperature, the changes of enthalpy and entropy upon formation of the intermediate state were observed to be positive. The positive enthalpy change suggests that the breaking up of the highly ordered solvent structure surrounding hydrophobic side-chain upon formation of intermediate state. This positive enthalpy was compensated for by the positive entropy change of whole system so that formation of transient intermediate has negative free energy.
This paper describes first development and validation of pentafluorophenylprophyl ligand-based liquid chromatography coupled to tandem mass spectrometry (PFPLC-MS/MS) method to determine metformin, a highly polar compound, in human plasma. Metformin and Phenformin (internal standard) were extracted from human plasma 50 ${\mu}L$ with a single-step protein precipitation. The chromatographic separation was performed using a linear gradient elution of mobile phase involving 5.0 mM ammonium formate solution with 0.1% formic acid (A) and acetonitrile (B) over 3.0 min of run time on a Phenomenex Luna PFP column. The detection was performed using a triple-quadrupole tandem mass spectrometer (Waters Quattro micro) with electrospray ionization in the mode of positive ionization and multiple-reaction monitoring (MRM). The developed method was validated with 5.0 ng/mL of lower limit of quantification (LLOQ). The calibration curve was linear over 5-3000 ng/mL of the concentration range ($R^2$ > 0.99). The specificity, selectivity, carry-over effect, precision, accuracy and stability of the method met the acceptance criteria. The method developed in this study had had rapidness, simplicity and ruggedness. The reliable method was successfully applied to high throughput analysis of real samples for a practical purpose of a pharmacokinetic study.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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