The aim of this study was to prepare a hydrogels composed of alginate blended with a carboxymethyl scleroglucan (CMSC) and evaluate the feasibility of the hydrogels as a drug delivery system for a protein. The main advantage of the alginate/CMSC hydrogels is to improve a restricted drug release from alginate hydrogels. The CMSC was chemically synthesized with chloroacetic acid and confirmed using a FT-IR. The alginate/CMSC hydrogels were prepared at distinct compositions by crosslinking with calcium ions. The swelling ratios of these hydrogels increased significantly with increasing the content of CMSC. At pH 7.4, the swelling ratios of the hydrogels increased remarkably as compared to those at pH 1.2. In ovalbumin (OVA) release test, the amount of OVA released from the hydrogels showed higher as compared to those released at pH 1.2. In addition, the release of OVA was improved with increasing the content of CMSC. Thus, the alginate/CMSC hydrogels may be used as a potential system for oral delivery of protein drugs.
A biocompatible polyelectrolyte complex multilayer (PECML) film consisting of poly-L-lysine (PLL) as a polycation and hyaluronic acid (HA) as a polyanion was developed to test its use for surface modification to prevent cell attachment and protein drug delivery. The formation of PECML through the electrostatic interaction of HA and PLL was confirmed by contact angle measurement, ESCA analysis, and HA content analysis. HA content increased rapidly up to 8 cycles for HA/PLL deposition and then slightly increased with an increasing number of deposition cycle. In vitro release of PLL in the PECML continued up to 4 days and ca. 25% of HA remained on the chitosan-coated cover glass after in vitro release test for 7 days. From the results, PECML of HA and PLL appeared to be stable for about 4 days. The surface modification of the chitosan-coated cover glass with PECML resulted in drastically reduced peripheral blood mononuclear cell (PBMC) attachment. Concerned with its use for protein drug delivery, we confirmed that bovine serum albumin (BSA) as a model protein could be incorporated into the PECML and its release might be triggered by the degradation of HA with hyaluronidase.
To demonstrate their possibilities as an enhanced vaccine delivery system, protein-loaded Poly lactide glycolide copolymer (PLGA) microspheres were prepared with different physical characteristics. Ethyl acetate (EA) solvent extraction process was employed to prepare microspheres and the effects of process parameters on drug release properties were evaluated. The biodeuadability of microspheres was also evaluated by the pH change and GPC (Gel permeation chromatography). Primary IgG antibody responses in BALB/c mice were compared with protein saline solutions as negative controls and adsorbed alum suspensions as positive controls after single subcutaneous injection for in vivo studies. The microspheres showed a erosion with a highly porous structure and did not keep their spherical shape at 45 days and this result could be confirmed by GPC. In vitro release of proteinous drug showed initial burst effect in all batches of microspheres, followed by gradual release over the next 4 weeks. PLGA microspheres were degraded until 45 days and the secondary structure of OVA was not affected by the preparation method. Enzyme-linked immunosorbent assays demonstrated that the single subcutaneous administrations of OVA-loaded PLGA microspheres induced enhanced serum IgG antibody response in comparison to negative and positive controls. These results demonstrated that microspheres providing the controlled release of antigens might be useful in advanced vaccine formulations for the parenteral carrier system.
Previously, we have reported that high mobility group box 1 (HMGB1), a proinflammatory mediator in sepsis, is released via the IFN-${\beta}$-mediated JAK/STAT pathway. However, detailed mechanisms are still unclear. In this study, we dissected upstream signaling pathways of HMGB1 release using various molecular biology methods. Here, we found that calcium/calmodulin-dependent protein kinase (CaM kinase, CaMK) is involved in HMGB1 release by regulating IFN-${\beta}$ production. CaMK inhibitor, STO609, treatment inhibits LPS-induced IFN-${\beta}$ production, which is correlated with the phosphorylation of interferon regulatory factor 3 (IRF3). Additionally, we show that CaMK-I plays a major role in IFN-${\beta}$ production although other CaMK members also seem to contribute to this event. Furthermore, the CaMK inhibitor treatment reduced IFN-${\beta}$ production in a murine endotoxemia. Our results suggest CaMKs contribute to HMGB1 release by enhancing IFN-${\beta}$ production in sepsis.
The present study was done to examine the involvement of protein kinase C and protein tyrosine kinase in intracellular $Ca^{2+}$ mobilization in C5a-stimulated neutrophils. Although protein kinase C inhibitors, staurosporine and H-7 inhibited intracellular $Ca^{2+}$ release in C5a-stimulated neutrophils, they did not affect $Ca^{2+}$ influx across the plasma membrane and elevation of $[Ca^{2+}]_i$ C5a-induced intracellular $Ca^{2+}$ release and $Ca^{2+}$ influx were inhibited by protein tyrosine kinase inhibitors, genistein and methyl-2,5-dihydroxycinnamate. ADP-evoked elevation of $[Ca^{2+}]_i$ was inhibited by genistein and methyl-2,5-dihydroxycinnamate but was not affectd by staurosporine and H-7. Genistein and methyl-2,5-dihydroxycinnamate reduced the store-regulated $Ca^{2+}$ influx in thapsigargin-treated neutrophils, while the effect of staurosporine and H-7 was not detected. When neutrophils were preincubated wih phorbol 12-myristate 13-acetate, the stimulatory effect of C5a on the elevation of $[Ca^{2+}]_i$ was reduced. These results suggest that protein tyrosine kinase may be involved in control of intracellular $Ca^{2+}$ release and $Ca^{2+}$ influx across the plasma membrane in C5a-activated neutrophils.
CCK and cholinergic agonist stimulate enzyme release from the pancreatic acini via G-protein-mediated activation of phospholipase C, In contrast secretin and related peptides increase the level of cAMP and activate cAMP-dependent protein kinase. Camostat, a synthetic protease inhibitor, causes pancreatic hypertrophy and hyperplasia by increasing the CCK release. In this study, the secretagogue-induced changes of intracellular proteins were examined in the dispersed pancreatic acini of rats with or without camostat treatment. Camostat(FOY-305, 200 mg/kg, p.o.) was given for 4 days twice daily and the dispersed acini were prepared at 12 bouts after last treatment. The profiles of Intracellular phosphoproteins were analyzed by two-dimensional gel electrophoresis after incubating the acini with $^{32}P$. The amylase release from the dispersed acini was measured. The pancreatic weight was increased to 126% of control, while amylase activity per mg acinar protein decreased to 41% of control, The maximum response of amylase release from dispersed acini to CCK-8 or carbachol was markedly decreased(65% or 46% of control, respectively). The group of intracellular proteins(24 kD, pI $4.5{\sim}8.5$) was increased in quantity by camostat. CCK-8 or secretin increased phosphorylation of a protein(34 kD, pI 4.7) in camostat-treated as well as control rats. CCK-8 increased tyrosine phosphoryiation in the acini of control rats. However, in camostat-treated rats, the basal level of tyrosine phosphorylation was increased and it was rather decreased by CCK-8. Secretin had no effect on the level of tyrosine phosphorylation in acini. These results indicate that both phospholipase C and adenylate cyclase induce phosphorylation of an intracellular acinar protein(34 kD, pI 4.7) and camostat treatment increases the basal level of tyrosine phosphorylation in acinar cells. And these results suggest that not only serine/threonine protein kinase but also protein tyrosine kinase/phosphatase are involved in the process of CCK receptor mediated stimulation-secrelion coupling.
This study was conducted to compare the anti-allergic effects of a whey protein concentrate (WPC) and WPC hydrolysate. WPC hydrolysate was prepared using enzymatic digestion for 8 h with trypsin and ${\alpha}$-chymotrypsin, after which it was freeze-dried. The allergic parameters assessed in rat basophilic leukemia (RBL)-2H3 cells were degranulation and release of ${\beta}$-hexosaminidase, release of tumor necrosis factor $(TNF)-{\alpha}$, and changes in the expression of $IL-1{\beta}$, IL-4, and IL-10 by real time polymerase chain reaction (PCR). During preparation of the WPC hydrolysate, hydrolysis increased rapidly from 0 to 10 min and then gradually increased slowly from 1 h onwards, achieving a final degree of hydrolysis of 78.50%. The SDS-PAGE analysis revealed a reduction in the intensity of several protein bands in the WPC hydrolysate compared to the WPC. IgE-induced ${\beta}$-hexosaminidase release from RBL-2H3 cells was decreased to a higher degree following treatment with the hydrolysate compared to WPC treatment. W500 ($500{\mu}g/mL$ WPC) showed the least inhibition of ${\beta}$-hexosaminidase release, but there was no significant difference between W500 and W1000 ($1,000{\mu}g/mL$) (p<0.05). H1000 ($1,000{\mu}g/mL$ WPC hydrolysate) inhibited ${\beta}$-hexosaminidase release by 39%. Compared to the control, treatment with H1000 decreased $TNF-{\alpha}$ secretion to 11.87 pg/mL. The gene expression levels of IL-1${\beta}$, IL-4, and IL-13 were all significantly decreased in hydrolysate (p<0.05). In the case of $IL-1{\beta}$ and IL-4, the expression levels in W1000 treated cells were decreased by 73.67% and 65%, respectively, and that of IL-13 was decreased by 66.43% compared to the control.
Jo, Yang-Hyeok;Rhie, Duck-Joo;Chang, Young-Soon;Hahn, Sang-June;Sim, Sang-Soo;Kim, Myung-Suk;Kim, Chung-Chin
The Korean Journal of Physiology
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v.25
no.1
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pp.27-35
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1991
Generally, it has been known that cholecystokinin (CCK) release into the plasma is under cholinergic control, but secretin release is not. Thus in anesthetized dogs we studied the effect of atropine $(50\;{\mu}g/kg\;followed\;by\;50\;{\mu}g/kg/hr)$ on pancreatic secretion and plasma concentrations of bioactive CCK and immunoreactive secretin in response to intraduodenal perfusion of sodium oleate (1, 3 and 9 mmol/hr). The volume, protein output and bicarbonate output of the secretion were increased by sodium cleats and this oleate-induced secretion was decreased significantly by atropine administration. However the increased plasma CCK and secretin levels by sodium oleate were not changed by atropine. These results indicate that atropine suppressed sodium oleate-induced pancreatic secretion through inhibiting cholinergic mechanism directly rather than decreasing the release of pancreatic secretory hormones. In another set of experiments, bilateral cervical vagi were stimulated electrically to observe the changes of pancreatic secretion and the above two plasma hormone levels in the presence or absence of atropine. In the vagally stimulated dogs, the volume, protein output and bicarbonate output of the pancreatic secretion were increased significantly. Both plasma secretin and CCK were concomitantly released significantly by vagal stimulation. Atropine significantly depressed the pancreatic secretory response as well as the release of these two pancreatic secretory hormones. Therefore, we conclude that in the presence of atropine the depressed pancreatic response to vagal stimulation is at least, in part, due to decreased release of endogenous CCK and secretin. In the vagally stimulated animals, however, the involvement of direct cholinergic influence on pancreatic exocrine gland remains to be answered.
It has been previously reported that silica dose-dependently caused the increase of histamine release and arachidonic acid release in RBL 2H3 cells. In this study. to investigate role of arachidonic acid in inflammatory response including histamine release and reactive oxygen species (ROS) generation. we observed effects of mellitin on histamine release and ROSgeneration in RBL 2H3 cells. (omitted)
Agents that activate or inhibit the $Ca^{2+}$ release channel in cardiac sarcoplasmic reticulum (SR) were tested for their abilities to affect the activity of the SR $Ca^{2+}$-ATPase. Vesicles of junctional SR (heavy SR, HSR) from terminal cisternae were prepared from porcine cardiac muscle by density gradient centrifugation. The steady-state activity of $Ca^{2+}$-ATPases in intact HSR vesicles was/$347{\pm}5\;nmol/min{\cdot}mg$ protein (${\pm}$ SD). When the HSR vesicles were made leaky, the activity was increased to $415{\pm}5\;nmol/min{\cdot}mg$ protein. This increase is probably due to the uncoupling of HSR vesicles. Caffeine (10 mM), an agonist of the SR $Ca^{2+}$ release channel, increased $Ca^{2+}$-ATPase activity in the intact HSR vesicle preparation to $394{\pm}30\;nmol/min{\cdot}mg$ protein. However, caffeine had no significant effect in the leaky vesicle preparation and in the purified $Ca^{2+}$-ATPase preparation. The effect of caffeine on SR $Ca^{2+}$-ATPase was investigated at various concentrations of $Ca^{2+}$. Caffeine increased the pump activity over the whole range of $Ca^{2+}$ concentrations, from $1\;{\mu}M$ to $250\;{\mu}M$, in the intact HSR vesicles. When the SR $Ca^{2+}$-ATPase was inhibited by thapsigargin, no caffeine effect was observed. These results imply that the caffeine effect requires the intact vesicles and that the increase in $Ca^{2+}$-ATPase activity is not due to a direct interaction of caffeine with the enzyme. We propose that the activity of SR $Ca^{2+}$-ATPase is linked indirectly to the activity of the $Ca^{2+}$ release channel (ryanodine receptor) and may depend upon the amount of $Ca^{2+}$ released by the channels.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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