목 적 : IL-4는 Th2 면역 반응의 중요한 매개체로 IL4 유전자의 promoter 일배체형(haplotype)은 한국인 소아에서 RSV에 의한 심한 모세기관지염과 연관된다고 알려져 있다. 본 연구는 IL4 유전자의 promoter 다형성에 따른 IL-4 단백의 기능적인 변화를 분석하여 심한 RSV 하기도 감염증에 기여하는 IL4 유전자의 발병 기전의 연관성을 연구하고자 시행하였다. 방 법 : 면역 기능이 정상인 소아 20명을 대상으로 전혈을 채취한 후 genomic DNA를 추출하여 IL4 유전자 promoter 약 1.2 kb 부위를 증폭시켰다. 염기서열 분석을 통하여 IL4 유전자 promoter의 유전형을 결정하고, PHASE 분석으로 일배체형을 결정하였다. 각 일배체형별로 $5{\mu}g$의 DNA를 Jurkat T 세포에 핵형질변환 시켜서 정상 Jurkat T 세포와 PMA(50 ng/mL)로 자극한 세포에서의 luciferase 활성도를 분석하여 IL4 유전자 promoter의 전사능을 결정하였다. 결 과 : 한국인 소아의 일배체형은 3가지 유형 GCC(7%), TCC(17%), 및 TTT(76%)로 분포하였다. Jurkat T 세포의 절대 luciferase 활성도는 GCC형이 가장 낮았고 TTT형이 가장 높았다. GCC 일배체형을 기준으로 하여 나타낸 Jurkat T 세포의 상대 luciferase 활성도는 TCC형이 4.2배, TTT형이 5.3배로 증가되었다. PMA로 자극한 후에 측정한 각 일배체형의 luciferase 활성도 역시 GCC형에 비하여 TCC형이 3.0배, TTT형이 4.1배로 증가되어 자극하지 않은 세포에서와 유사한 활성도의 차이를 보였다. 결 론 : 소아의 심한 RSV 하기도 감염증과 연관된 IL4 유전자의 promoter 일배체형 TTT는 IL4 유전자의 promoter의 전사능을 증가시킴으로써 영아 및 소아의 RSV 하기도 감염증의 병인에 중요한 역할을 할 것으로 생각된다.
A rabidopsis thaliana의 trpl 변이 식물체는 uv 하에서 푸른 형광 빛을 발하며, phosphoribosyl anthranilate transferase를 encoding하는 유전자가 결여되어 있다. 이 유전자를 PATl이라고 하며, 많 은 미 생물에서 phospho ribosyl anthranilate trans ferase와 homologous하다. 트럽토판 생합성에서 이 효소가 결여되면 anthranilate가 축적되며 형광 빛 을 발하게 된다. PATl 의 유전자 조절을 알아보기 위하여, PATl 유전자의 promoter를 단계 별로 삭제하여 트립토판 변이 식물체의 형질전환과 재분화를 시도하였다. 이 러한 유전자 조작을 통하여 이 유전자의 발현 양상을 조절하는 promoter 요소와 작용을 확인할 수 있으리라고 생각된다. 또한 PAT의 항체를 사용한 Immunoassay를 통하여 형질전환체 의 단백질 양의 변화를 분석한 결과 PATl의 완전 한 promoter를 가진 pHSI07의 형질전환체는 대조구보다 2배의 단백질 양을 나타냄으로서 2쌍의 PAT 유전자가 발현되었음을 알 수 있었다. PATl 은 selection marker와 reporter 유전자로서 분자유 전학연구에 공헌할 수 였으리라고 생각된다.
Chattopadhyay, Chandrani;Sau, Subrata;Mandal, Nitai C.
BMB Reports
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제36권6호
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pp.586-592
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2003
Four putative promoters of the temperate mycobacteriophage L1 were cloned by detecting the $\beta$-galactosidase reporter expression in E. coli transformants that carried L1 specific operon-fusion library. All of the four L1 promoters were also found to express differentially in the homologous environment of mycobacteria. Of the four promoters, two were suggested to be the putative early promoters of L1 since they express within 0 to 10 min of the initiation of the lytic growth of L1. One of the putative early promoters showed a relatively better and almost identical activity in both E. coli and M. smegmatis. By a sequence analysis, we suggest that the L1 insert that contained the stronger early promoter possibly carries two convergent E. coli $\sigma^{70}$-like L1 promoters, which are separated from each other by about 300 nucleotides. One of them is the early promoter of L1 as it showed a 100% similarity with the early $P_{left}$ promoter of the homoimmune phage L5. The second promoter, designated P4, was suggested for its appreciable level of reporter activity in the absence of the -10 element of the $P_{left}$ equivalent of L1. By analyzing most of the best characterized mycobacteriophages-specific promoters, including the L1 promoter P4, we suggest that both the -10 and -35 hexamers of the mycobacteriophage promoters are highly conserved and almost similar to the consensus -10 and -35 hexamers of the E. coli $\sigma^{70}$ promoters.
A gene coding for a pyruvyl transferase enzyme involved in exopolysaccharide biosynthesis of Zoogloea ramigera 115SLR was isolated and sequenced. A 4.5 kb of BamHI DNA fragment was isolated from chromosomal DNA using a probe derived from ketal pyruvyl transferase gene of Xanthomonas campestris. The nucleotide sequence of 2.66 kb Pst1/HindIII DNA fragment which was homology with a probe revealed the existence of two complete open reading frames (ORF2 and ORF3) and two partial open reading frames (ORFI and ORF4). The deduced amino acid sequence of ORF3 was homologous to the ketalase (GumL product) of X campestris with 49.5% of similarity and 21.6% of identity. ORF2 on the other hand showed the higher identity with the ketalase (ExoV product) of Rhizobium meliloti (36%) as well as the ketalase of X campestris (23%) than that of ORF3. A gene product of ORF2 was determined with a bacteriophage T7 RNA polymerase/promoter system in E. coli. The molecular weight of protein was 33,500 dalton.
A gene encoding the mannanase of Bacillus subtilis WL-3, which had been isolated from Korean soybean paste, was cloned into Escherichia coli and the nucleotide sequence of a 2.7-kb DNA fragment containing the mannanase gene was subsequently determined. The mannanase gene, designated manA, consisted of 1,080 nucleotides encoding a polypeptide of 360 amino acid residues. The deduced amino acid sequence was highly homologous to those of mannanases belonging to glycosyl hydrolase family 26. The manA gene was strongly expressed in B. subtilis 168 by cloning the gene downstream of a strong B. subtilis promoter of plasmid $pJ27{\Delta}88U$. In flask cultures, the production of mannanase by recombinant B. subtilis 168 reached maximum levels of 300 units/ml and 450 units/ml in LB medium and LB medium containing 0.3% locust bean gum, respectively. Based on the zymogram ofthe mannanase, it was found that the mannanase produced by recombinant B. subtilis could be maintained stably without proteolytic degradation during the culture time.
In order to broaden the spectrum of substrate utilization of a Gram negative bacterium Zymomonas mobilis which has a great potential as an industrial ethanol producing microorganism, cloning of $\alpha$-amylase gene into Z. mobilis ZM4 was tried. The $\alpha$-amylase gene was isolated from Bacillus stearothermophilus. By Southern blot analysis, it was proven that the $\alpha$-amylase gene fragment was originated from a naturally occuring plasmid of B. stearothermophilus ATCC 31195. To place $\alpha$-amylase gene under the control of Z. mobilis promoter, two different Z. mobilis expression vectors, pZA26 and pLOI204, were used. The truncated $\alpha$-amylase gene was then introduced into these vectors. Both qualitative and quantitative activities of $\alpha$-amylase were observed in Z. mobilis cells harboring these plasmids with the $\alpha$-amylase gene inserted. Gas chromatographic analysis of ethanol showed that one of the Z. mobilis transconjugants was capable of producing 67 mM ethanol from rich medium(RM) containing 5% soluble starch as a sole carbon source.
Transformed, hybrid strains of the yeast Saccharomyces capable of simultaneous secretion of both glucoamylase and ${\alpha}-amylase$ have been produced. These strains can carry out direct, one-step assimilation of starch with conversion efficiency greater than 93% during a 5 day growth period. One of the transformants converts 92.8% of available starch into reducing sugars in only 2 days. Glucoamylase secretion by these strains results from expression of one or more chromosomal STA genes derived from Saccharomyces diastaticus. The strains were transformed by a plasmid(pMS12) containing mouse salivary ${\alpha}-amylase$ cDNA in an expression vector containing yeast alcohol dehydrogenase promoter and a segment of yeast $2{\mu}$ plasmid. The major starch hydrolysis product produced by crude amylases found in culture broths is glucose, indicating that ${\alpha}-amylase$ and glucoamylase act cooperatively.
Coprinellus congregatus secreted a laccase isozyme when the culture was transferred to an acidic liquid medium (pH 4.1). The laccase cDNA gene (clac2) was used as a probe for cloning of the genomic laccase gene (lac2) including the promoter (Plac2). The open reading frame (ORF) of lac2 had 526 deduced amino acids and four conserved copper binding domains as other fungal laccases. Recombinant plasmid (pRSlac2p-cDNA) of lac2 cDNA with its own promoter was transformed in Saccharomyces cerevisiae. Expression of the transformed lac2 gene was induced by oxidative stress ($H_2O_2$) in yeast and the survival rate of the transformed yeast strain was greatly increased when compared with that of the control strain transformed with pRS316 yeast vector.
Functional protein of MB78 bacteriophage having apparent molecular weight of 22 kDa is expressed from 1.7 kb HindIII G fragment. The nucleotide sequence of this fragment showed two open reading frames of 222 and 196 codons in tail-to-tail orientation separated by a 62-nucleotide intercistronic region. The ORF of 22 kDa protein is present in opposite orientation, i.e. in the complementary strand, preceded by a strong ribosomal binding site and a promoter sequence. Another ORF started from the beginning of the fragment whose promoter region and translational start site lies in the 0.45 kb HincII U fragment which is located next to the HindIII G fragment, that has the sequence for DNA bending. 3' end of the fragment has high sequence homology to the EaA and EaI proteins of bacteriophage P22, a close relative of MB78 phage.
대장균의 lipoprotein promoter, lac UV5 promoter 및 operator와 lipoprotein의 signal sequence를 가지는 vector에 alpha-IFN유전자를 cloning함으로써 제작된 plasmid plF-III-B와 plF-III-C를 여러종류의 대장균 숙주 세포에 형질 전환하여 IFN의 생산성을 조사해 본 결과 $lpp^-$형질을 가지는 JE5505가 가장 우수했으며, 기존 plasmid, Hif-2h에 비해 130배 높은 생산성을 보였다. 또한 생산된 IFN의 약 50%가 세포 외부로 분비됨을 확인하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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