Different factors may affect the sensitivity of porcine oocytes during cryopreservation. The effect of two methods (cooling and vitrification), four cryoprotectants [glycerol (GLY), 1, 2-propanediol (PROH), dimethyl sulfoxide (DMSO) or ethylene glycol (EG)] and two vitrification media (1 M sucrose (SUC)+8 M EG; 8 M EG) on the developmental capacity of porcine oocytes at the germinal vesicle (GV) stage or after IVM at the metaphase II (M II) stage were examined. Survival was assessed by FDA staining, maturation and cleavage following IVF and IVC. A toxicity test for different cryoprotectants (GLY, PROH, DMSO, EG) was conducted at room temperature before cooling. GV and M II-oocytes were equilibrated stepwise in 1.5 M cryoprotectant and diluted out in sucrose. The survival rate of GV-oocytes in the GLY group was significantly lower (82%, p<0.01) than that of the other group (92 to 95%). The EG group achieved a significantly higher maturation rate (84%, p<0.05) but a lower cleavage rate (34%, p<0.01) than the DMSO group and the controls. For M II-oocytes, the survival rates for all groups were 95 to 99% and the cleavage rate of the GLY group was lower than the PROH-group (21 vs 43%, p<0.01). After cooling to $10^{\circ}C$, the survival rates of GV-oocytes in the cryoprotectant groups were 34 to 51%, however, the maturation rates of these oocytes were low (1%) and none developed after IVF. For M II-oocytes, the EG group showed a significantly higher survival rate than those of the other cryoprotectant groups (40% vs 23-26%, p<0.05) and the cleavage rates of PROH, DMSO and EG group reached only 1 to 2%. For a toxicity test of different vitrification media, GV and M II-oocytes were equilibrated stepwise in 100% 8 M EG (group 1) and 1 M SUC + 8 M EG (group 2) or equilibrated in sucrose and then in 8 M EG (SUC+8 M EG, group 3). For GV-oocytes, the survival, maturation and cleavage rates of Group 1 were significantly lower than those in group 2, 3 and control group (p<0.05). For M II-oocytes, there were no differences in survival, maturation and cleavage rates between groups. After vitrification, the survival rates of GV and M II-oocytes in group 2 and 3 were similarly low (4-9%) and none of them matured nor cleaved after in vitro maturation, fertilization and culture. In conclusion, porcine GV and M II-oocytes do not seem to be damaged by a variety of cryoprotectants tested, but will succumb to a temperature decrease to $10^{\circ}C$ or to the process of vitrification, regardless of the cryoprotectant used.
In the present study, performances of several in vitro maturation (IVM) systems for porcine follicular oocytes were evaluated, and an efficient chemically defined IVM system for porcine oocytes was proposed. The proposed one-step culture system supplemented with polyvinylalcohol (PVA) gave competitive efficiencies in terms of oocyte maturation and blastocyst development after parthenogenetic activation and in vitro culture, compared with the conventional two-step culture system by a supplementation of porcine follicular fluid (pFF). Additionally, it is identified that the proposed chemically defined one-step culture system yielded the comparable level of blastocyst production to the conventional maturation system in porcine somatic cell nuclear transfer (SCNT). Therefore, one can eliminate un-expected effects accompanied by supplementation of pFF. No medium replacement during whole maturation period is an additional benefit by applying this new system. Thus, these data support that the developed PVA supplemented chemically defined one-step IVM system for porcine follicular oocyte might be used in porcine SCNT program.
The objective of this study was to develop an effective in vitro production system capable of obtaining more porcine embryos from immature oocytes. These experiments were thus conducted to examine the effect of oocytes type and maturation time on the in vitro maturation(IVM) and fertilization(IVF) of oocytes and the in vitro development (IVD)of IVF embryos. 1. The degree of oocyte maturation based on cumulus expansion index(GEI) did not differ for A- and B-typed oocytes but the index of oocyte type C was lower(P<0.05) than that of other oocyte types. 2. When the oocytes of type A and B were matured for 36, 42 and 48hrs, the GEl was not different between the 36- and 42-h maturation but the GEl after 48hrs was greatly lower(P<0.05) than that of other maturation times. 3. The highest cleavage rate(48.6%) of IVF oocytes was obtained from A typed oocytes and 42-h maturation but the developmental potential based on cleavage index was the highest when B-typed oocytes were matured for 42hrs.
Alpha lipoic acid (ALA) is a biological membranes compound. As the antioxidant, it decreases the oxidized forms of other antioxidant substances such as vitamin C, vitamin E, and glutathione (GSH). To examine the effect of ALA on the in vitro maturation (IVM) of porcine oocytes, we investigated intracellular GSH and reactive oxygen species (ROS) levels, and subsequent embryonic development after parthenogenetic activation (PA). Intracellular GSH levels in oocytes treated with 50uM ALA increased significantly (P < 0.05) and exhibited a significant (P < 0.05) decrease in intracellular ROS levels compared with the control group. Oocytes matured with 50 uM of ALA during IVM displayed significantly higher cleavage rates (67.8% vs. 83.4%, respectively), and higher blastocyst formation rates and total cell number of blastocysts after PA (31.6%, 58.49 vs. 46.8%, 68.58, respectively) than the control group. In conclusion, these results suggest that treatment with ALA during IVM improves the cytoplasmic maturation of porcine oocytes by increasing the intracellular GSH levels, thereby decreasing the intracellular ROS levels and subsequent embryonic developmental potential of PA.
Here, we evaluated the mode of programmed cell death during porcine oocyte maturation by comparing the two major pathways associated with programmed cell death, apoptosis (type I), and autophagy (type II). We investigated the expression and localization of major genes involved in autophagy and apoptosis at mRNA and protein levels. Furthermore, the effect of hormonal stimulation on autophagy and apoptosis was analyzed. We found that the activity of autophagy-associated genes was increased in the cumulus-oocyte complexes (COCs) following follicle-stimulating hormone (FSH) treatment, while the addition of luteinizing hormone (LH) reversed this effect. The expression of proteins associated with autophagy was the highest in FSH-treated COCs. On the other hand, caspase-3 protein level was maximum in COCs cultured with LH. The treatment with rapamycin resulted in the effect similar to that observed with FSH treatment and increased autophagy activity. Thus, hormonal stimulation of pig oocytes resulted in distinct patterns of maturation. The high-quality oocytes majorly relied on the type II pathway (autophagy), while the type I pathway (apoptosis) was more prominent among poor-quality oocytes. Further investigation of this distinction may allow the development of techniques to produce high-quality oocytes in porcine in vitro fertilization.
The objective of this study was to develop an effective in vitro production system capable of obtaining more porcine embryos from immature oocytes These experiments were conducted to examine the effect of sperm factor on the IVF and IVD, and the effect of coculture with somatic cells on the IVD of embryos. Although the concentration of epididymal sperm for IVF did not affect on cleavage rate, but 5 x 105 sperm/mi showed the highest cleavage rate(48.7%) and the developmental potential of IVF oocytes from this concentration was also greatly higher (P$^{\circ}C$-stored sperm for l2hrs and the cleavage rate from fresh sperm was significantly higher (P<0.05) than that from frozen sperm, but the developmental potential after IVF was slightly high from the frozen sperm. The cleavage rate of IVF oocytes cocultured with oviductal epithelial cells and cumulus cells was 76.3% and 72.9%, respectively. There was no difference between two coculture systems but this rate was significantly higher(P<0.05) than that of medium alone(42.0%).
This experiment was carried out to establish an effective technique of in vitro maturation of porcine follicular oocytes. Porcine ovaries were collected from an abbatoir and delivered to the laboratory in phosphate buffered saline in an hour. Immatured follicular oocytes were collected from the ovaries and divided into groups by the size of follicles and by the attachment of granulosa cells. The follicular oocytes were cultured in m-KRB solution supplemented with FCS(10%), follicular fluid(10%) or hormones of PMSG(10IU/ml), hCG(10IU/ml ) and $estradiol-17{\beta}(1{\mu}g/ml)$ for 48 hours at $39^{\circ}C$ under an atmosphere of 5% $CO_2$ in air. The results are as follows ; 1. The mean recoveration rate of follicular oocytes was 61.8%. 2. The maturation rate was significantly(p<0.05) higher when the oocytes were collected from large-sized follicles and under good state of granulosa cell attachment. 3. The maturation rate was significantly(p<0.01) promoted when the follicular oocytes were cultured in m-KRB solution supplemented with follicular fluid(74.8%) or hormones and fetal calf serum(70.6%).
Objective: The main goal of this study was to provide a morphological indicator that could be used to select high-quality oocytes of appropriate meiotic and developmental capabilities in pig. The higher quality of immature oocytes, the higher success rates of in vitro maturation (IVM) and in vitro fertilization (IVF). Thus, prior to the IVM culture, it is important to characterize oocytes morphologically and biochemically in order to assess their quality. Two of the largest indicators of oocyte quality are the presence of cumulus cells and status of chromatin. To investigate the effects of porcine oocyte chromatin configurations on the developmental capacity of blastocysts, we assessed oocyte chromatin status according to follicle size and measured the developmental potency of blastocysts. Methods: To sort by follicle size, we divided the oocytes into three groups (less than 1 mm, 1 to 3 mm, and more than 3 mm in diameter). To assess chromatin configuration, the oocytes were assessed for their stages (surrounded nucleolus [SN] germinal vesicle [GV], non-surrounded nucleolus [NSN] GV, GV breakdown, metaphase I [MI], pro-metaphase II [proMII], and metaphase II [MII]) at different maturation times (22, 44, and 66 h). To assess the development rate, oocytes of each follicle size were subjected to parthenogenetic activation for further development. Finally, GV oocytes were grouped by their chromatin configuration (SN, SN/NSN, and NSN) and their global transcriptional levels were measured. Results: SN GV oocytes were more suitable for IVF than NSN GV oocytes. Moreover, oocytes collected from the larger follicles had a greater distribution of SN GV oocytes and a higher developmental capacity during IVM, reaching MII more quickly and developing more often to blastocysts. Conclusion: Porcine oocytes with high-level meiotic and developmental capacity were identified by analyzing the relationship between follicle size and chromatin configuration. The porcine oocytes from large follicles had a significantly higher SN status in which the transcription level was low and could be better in the degree of meiotic progression and developmental capacity.
본 연구는 돼지난자의 체외성숙동안 insulin-like growth factor-I (IGF-I)과 난구세포의 영향을 검토하기 위하여 실시하였다. 미성숙난자를 0(60%), 1(61%), 5(62%) 및 l0ng/$m\ell$(72%)의 서로 다른 IGF-I의 농도로 첨가하여 배양했을 때 체외성숙율은 큰 차이를 나타내지 않았다. 또한 10ng/$m\ell$의 IGF-I이 첨가된 배양액내에서 난자를 배양한 경우, 난구세포부착시 (68%) 제거 (52%)된 난자에 비해 높은성숙율을 나타냈지만 유의적인 차이는 인정되지 않았다. 그러나 IGF-I이 첨가되지 않은 경우에는 난구세포 부착 (63%) 난자가 제거 (32%)된 난자에 비해 유의적 (P<0.05)으로 높은 성숙율을 나타냈으며, IGF-I를 성숙 배양기간중 전반기 24시간 또는 후반기 24시간 동안만 첨가했을 때의 난구세포 부착시 (61과 49%) 제거된 (45 와 49%) 난자에 비해 높은 성숙융올 나타냈다. 한편, IGF-I의 존재 여부에 관계없이 FCS와 돼지난포액 (PFF)이 무첨가된 배양액에서 48시간동안 또는 배양전반기 24시간동안 난구세포를 제거한 경우 (16과 18%)로 난구세포 부착시 (46과 63%)에 비해 유의적 (P<0.01)으로 낮은 성숙율을 나타냈다. 이와 같은 결과는 난구세포가 IGF-I의 존재 유무에 관계없이 난자의 체외성숙에 필수적이며, FCS와 PFF 첨가시 난구세포가 제거된 난자의 체외성숙을 촉진하는 것으로 밝혀졌다.
Park, Hyo-Jin;Park, Jae-Young;Kim, Jin-Woo;Yang, Seul-Gi;Jung, Jae-Min;Kim, Min-Ji;Park, Joung Jun;Koo, Deog-Bon
한국발생생물학회지:발생과생식
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제21권4호
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pp.407-415
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2017
In the present study, we investigated the role of binding immunoglobulin protein/glucose-regulated protein, 78-kDa (BIP/GRP78)-regulated endoplasmic reticulum (ER)-stress on meiotic maturation and cumulus cells expansion in porcine cumulus-oocyte complexes (COCs). Previously, it has been demonstrated that unfolded protein response (UPR)-related genes, such as molecules involved in ER-stress defense mechanisms, were expressed in matured oocytes and cumulus cells during in vitro maturation (IVM) of porcine oocytes. However, BIP/GRP78-mediated regulation of ER stress in porcine oocytes has not been reported. Firstly, we observed the effects of knockdown of BIP/GRP78 (an UPR initiation marker) using porcine-specific siRNAs (#909, #693, and #1570) on oocyte maturation. Among all siRNAs, siRNA #693 significantly reduced the protein levels of UPR marker proteins (BIP/GRP78, ATF4, and P90ATF6) in porcine COCs observed by Western blotting and immunofluorescence analysis. We also observed that the reduction of BIP/GRP78 levels by siRNA#693 significantly inhibited the meiotic maturation of oocytes (siRNA #693: $32.5{\pm}10.1%$ vs control: $77.8{\pm}5.3%$). In addition, we also checked the effect of ER-stress inhibitors, tauroursodeoxycholic acid (TUDCA, $200{\mu}M$) and melatonin ($0.1{\mu}M$), in BIP/GRP78-knockdown oocytes. TUDCA and melatonin treatment could restore the expression levels of ER-stress marker proteins (BIP/GRP78, $p-eIF2{\alpha}$, $eIF2{\alpha}$, ATF4, and P90ATF6) in siRNA #693-transfected matured COCs. In conclusion, these results demonstrated that BIP/GRP78-mediated regulation of UPR signaling and ER stress plays an important role in in vitro maturation of porcine oocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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