Kang Seung Yi;Oh Soo A;Lee Hak Sung;Han Sung Tai;Shin Cha-Gyun
YAKHAK HOEJI
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v.49
no.3
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pp.198-204
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2005
Human foamy virus (HFV) integrase mediates integration of viral c-DNA into cellular DNA. In this process, HFV integrase recognizes its own viral DNA specifically and catalyzes insertion of viral c-DNA. In order to study catalytic domains and residues, three deletion mutants and two point mutants of HFV integrase were constructed and analyzed with respect to enzymatic activities. The C-terminal deletion mutant showed decreased enzymatic activities while the N-terminal deletion mutant lost the activities completely, indicating that the N-terminal domain is more important than the C-terminal domain in enzymatic reaction. The point mutants, in which an aspartic acid at the 164th position or a glutamic acid at the 200th position of the HFV integrase protein was changed to an alanine, lost the enzymatic activities completely. However, they were well complemented with other defective deletion mutants to recover enzymatic activities partially. Therefore, these results suggest that the aspartic acid and glutamic acid at the respective 164th and 200th positions are catalytic residues for enzymatic reaction.
Simian virus 40 (SV40) small-t antigen (small-t) has been known to regulate the activity of a cellular enzyme, protein phosphatase 2A (PP2A), composed of A. B, and C subunits, via binding to the A subunit In the study presented here, the stoichiometry of the binding of small-t to PP2A was determined to be 1: 1. It was also shown that small-t binds to the AC form of PP2A with a higher apparent affinity than it binds to the free A subunit. We also characterized the interaction of PP2A with wild-type and various mutant small-ts. A single-point mutant (Val134Met) and a double-point mutant (Trp147Gly;Leu152 Pro) of small-t exhibited 3-fold and 5-fold lower potencies in inhibiting PP2A activity. respectively. This suggests that the region around amino acids between 134 and 152 of small-t might be important in regulating the enzyme activity of PP2A.
Dwamena, Amos K.;Phillips, Robert S.;Kim, Chang Sup
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.3
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pp.373-381
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2019
Site-directed mutagenesis was employed to generate five different triple point mutations in the double mutant (C295A/I86A) of Thermoanaerobacter ethanolicus alcohol dehydrogenase (TeSADH) by computer-aided modeling with the aim of widening the small alkyl-binding pocket. TeSADH engineering enables the enzyme to accept sterically hindered substrates that could not be accepted by the wild-type enzyme. The underline in the mutations highlights the additional point mutation on the double mutant TeSADH introduced in this work. The catalytic efficiency ($k_{cat}/K_M$) of the ${\underline{M151A}}$/C295A/I86A triple TeSADH mutant for acetophenone increased about 4.8-fold higher than that of the double mutant. A 2.4-fold increase in conversion of 3'-methylacetophenone to (R)-1-(3-methylphenyl)-ethanol with a yield of 87% was obtained by using ${\underline{V115A}}$/C295A/I86A mutant in asymmetric reduction. The ${\underline{A85G}}$/C295A/I86A mutant also produced (R)-1-(3-methylphenyl)-ethanol (1.7-fold) from 3'-methylacetophenone and (R)-1-(3-methoxyphenyl)-ethanol (1.2-fold) from 3'-methoxyacetophenone, with improved yield. In terms of thermal stability, the ${\underline{M151A}}$/C295A/I86A and ${\underline{V115A}}$/C295A/I86A mutants significantly increased ${\Delta}T_{1/2}$ by $+6.8^{\circ}C$ and $+2.4^{\circ}C$, respectively, with thermal deactivation constant ($k_d$) close to the wild-type enzyme. The ${\underline{M151A}}$/C295A/I86A mutant reacts optimally at $70^{\circ}C$ with almost 4 times more residual activity than the wild type. Considering broad substrate tolerance and thermal stability together, it would be promising to produce (R)-1-(3-methylphenyl)-ethanol from 3'-methylacetophenone by ${\underline{V115A}}$/C295A/I86A, and (R)-1-phenylethanol from acetophenone by ${\underline{M151A}}$/C295A/I86A mutant, in large-scale bioreduction processes.
From FGSC 159 strain of Aspergillus nidulans, temperature sensitive mutants that are defective in growth and differentiation have been isolated by N-methyl-N'-nitroN-nitrosoguanidine (NTG) treatment. The optimum concentration of NTG and incubation time to get the highest mutation frequency was $100{\mu}g$ per ml and 1 hour, respectively. The survival frequency was 1%. Among the isolated mutants, five strains that were affected in early steps of differentiation were selected for further studies and named smK, smY, smB, smF, and smZ. The execution point of each mutant was determined and the growing pattern of each mutant at the restrictive temperature was observed under the microscope. Growth of mutant was arrested near at the execution point. From genetic analysis, each temperature-sensitive mutants was thought to have a single recessive gene. The genes of smK, smY, smB, smF, and smZ are linked to the chromosome VII, IV, VIII, I, and VI, respectively. It can be concluded that the genes controlling the differentiation are widely dispersed in the genome. From the results of mutant, smK, it is considered that a single gene can affect a function (functions) which act(s) at two different steps during differentiation.
We constructed deletion mutants and seven point mutants by polymerase chain reaction to investigate the specificity of feline foamy virus integrase functional domains. Complementation reactions were performed for three enzymatic activities such as 3'-end processing, strand transfer, and disintegration. The complementation reactions with deletion mutants showed several activities for 3'-end processing and strand transfer. The conserved central domain and the combination of the N-terminal or C-terminal domains increased disintegration activity significantly. In the complementation reactions between deletion and point mutants, the combination between D107V and deletion mutants revealed 3'-end processing activities, but the combination with others did not have any activity, including strand transfer activities. Disintegration activity increased evenly, except the combination with glutamic acid 200. These results suggest that an intact central domain mediates enzymatic activities but fails to show these activities in the absence of the N-terminal or C-terminal domains.
To study the resistance mechanism of E. faecalis to LCB01-0371, several resistant mutants to LCB01-0371 or linezolid were isolated by step-wise selection. The frequency of spontaneous mutations resistant to LCB01-0371 was lower than that of linezolid in E. faecalis. The genetic variations in resistant mutants were analyzed by DNA sequencing of domain V of 23S rRNA in each mutant. The first-step mutant to LCB01-0371 had a G2576T point mutation in V domain of 23S rRNA. However, no resistant mutant to LCB01-0371 was isolated in second-step mutant selection.
Improving the light utilization efficiency of photosynthetic cells in photobioreactors (PBRs) is a major topic in algal biotechnology. Accordingly, in the current study we investigated the effect and suitability of photosynthetic pigment reduction for improving light utilization efficiency. The light-harvesting complex II (LH-II) genes of Rhodobacter sphaeroides were removed to construct a mutant strain with less pigment content. The mutant strain exhibited a slower growth rate than the wild-type under a low light intensity, while the mutant grew faster under a high light intensity. In addition, the specific absorption coefficient was lower in the mutant due to its reduced pigment content, thus it seemed that light penetrated deeper into its culture broth. However, the distance (light penetration depth) from the surface of the PBR to the compensation point did not increase, due to an increase in the compensation irradiance of the mutant strain. Experimental data showed that a reduced photosynthetic pigment content, which lessened the photoinhibition under high-intensity light, helped the volumetric productivity of photosynthetic microorganisms.
The epidermal growth factor receptor (EGFR), a member of the ErbB family (EGFR, ErbB2, ErbB3 and ErbB4), plays a crucial role in regulating various cellular responses such as proliferation, differentiation, and survival. As a result, aberrant activation of EGFR, mostly mediated through different classes of genomic alterations occurring within EGFR, is closely associated with the pathogenesis of numerous human cancers including lung adenocarcinoma, glioblastoma, and colorectal cancer. Thus, specific suppression of oncogenic activity of mutant EGFR with its targeted drugs has been routinely used in the clinic as a very effective anti-cancer strategy in treating a subset of tumors driven by such oncogenic EGFR mutants. However, the clinical efficacy of EGFR-targeted therapy does not last long due to several resistance mechanisms that emerge in the patients following the drug treatment. Thus, there is an urgent need for the development of novel therapeutic tactics specifically targeting mutant EGFR with the focus on the unique biological features of various mutant EGFR. Regarding this point, our review specifically emphasizes the recent findings about distinct requirements of receptor dimerization and autophosphorylation, which are critical steps for enzymatic activation of EGFR and signaling cascades, respectively, among wildtype and mutant EGFR and further discuss their clinical significance. In addition, the molecular mechanisms regulating EGFR dimerization and enzymatic activity by a key negative feedback inhibitor Mig6 as well as the clinical use for developing potential novel drugs targeting it are described in this review.
Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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2002.10a
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pp.135-139
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2002
Yeast cells respond to condition of amino acid starvation by synthesizing GCN4, a typical eukaryotic transcriptional activator, which regulates the expression of many amino acids biosynthetic genes. By introducing point mutations in the DNA binding domain of GCN4, mutants with normal DNA binding activity but defective in transcriptional activity were isolated to identify unknown proteins that could suppress the mutant phenotype under an amino acid depletion condition. As a result, SSB(Stress-Seventy B) subfamily proteins were identified as suppressors of mutant GCN4. SSB proteins were known as a member of yeast hsp70 family that probably aids passage of nascent chain through ribosomes. Among them, the mechanism of suppression by SSB2 on the defective GCN4 mutant strains is under investigation. Gcn4p directly interacts with Ssb2p through the basic DNA binding domain of GCN4. It suggests the possibility that physical interaction might induce the transcriptional activation of Gcn4p.
Two mutant enzymes of $\gamma$-glutamylcysteine synthetase ($\gamma$-GCS) which catalyzed the synthesis of $\gamma$-glutamylcysteine from L-glutamic acid and L-cysteine in the presence of ATP, were prepared bypoint mutation of $\gamma$-GCS gene with site-directed mutagensis in E. coli. Conformational structuresand catalytic reaction kinetics of mutant enzymes were compared with wild type $\gamma$-GCS afterpurification. The S495F mutant enzyme (serine at 495 residue was substituted with phenylalanine),which had no catalytic activity for $\gamma$-glutamylcysteine synthesis, rarely folded even in neutral pH.However, the mutant A494V (alanine of 494 residue was replaced by valnine) which showed 50 %increase of activity, had a high folding structure. The folding structure of A494V also more stable athigh temperature and extreme pH compared to wild type and S495F. Reaction kinetics of wild typeand A494V were also investigated, Km value of A494V was smaller than that of wild type, while itshowed a little difference at Vmax values. This result evolved that alanine at 494 may be involved inbinding site of substrate rather than catalytic site. In addition, change of catalytic activity by onepoint mutation was highly correlated with the folding structure of enzyme.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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