A brown leaf and stem spot disease of bayonet-grass (Scirpus maritimus) was epidemic in reclaimed paddy fields of Chunbuk province, Korea. A fungal pathogen was repeatedly isolated from the necrotic lesions of the bayonet-grass and identified as Nimbya scirpicola. The pathogen induced disease symptoms only in bayonet-grass but not in 8 other plants tested; Brassica pathogen induced disease symptoms only in bayonet-grass but not in 8 other plants tested; Brassica compestris subsp. napus var. pekinensis, Cucumis sativus, Glycine max, Hordeum vulgare, Lycopersicon esculentum, Oryza sativa, Sesamum indicum and Triticum aestivum. The fungus has potential to be developed as a mycoherbicide.
The study on the cultural characteristics of Bipolaris spicifera was conducted to provide with information for the identification, and inoculation studies, etc. B. spicifera grew well at $30{\sim}35^{\circ}C$ and wide range of pH $5.0{\sim}9.0$. However, the fungal growth was retarded at pH 4.0 and 10.0, respectively. Conidia were germinated with 70% at $30^{\circ}C$ but maintained 50% germination even at $40^{\circ}C$, indicating that this pathogen could infect plants at relatively high temperature. The pathogen could not produce conidia under 24 hr fluorescent light condition for 7 days. In contrast, it produced many more conidia at 24 hr dark condition.
Disease is the major problem in ginseng cultivation from seed stratification, soil preparation prior to planting, right through to drying of the roots. There are many soil-borne disease pathogen in rhizosphere soil environment, furthermore occurrence of diseases by a diverse group of fungi and related organisms are closely related to various soil condition. Observable symptoms for soil-borne diseases include wilting, leaf death and leaf fall, death of branches and limbs and in severe cases death of the whole plant. The fungus Cylindrocarpon destructans is the cause of root rot characterized by a decay of the true root system in many ginseng production areas in Korea. Some pathogens are generally confined to the juvenile roots whilst others are capable of attacking older parts of the root system. However, the relation between the soil environmental characteristics and ginseng root rot by soil-borne disease pathogen is not clearly identified in ginseng field. In this paper, we reviewed soil-borne plant pathogen causing root rot disease of ginseng with respect to soil environment.
Accurate and rapid detection of bacterial plant pathogen is the first step toward disease management and prevention of pathogen spread. Bacterial plant pathogens Clavibacter michiganensis subsp. nebraskensis (Cmn), Pantoea stewartii subsp. stewartii (Pss), and Rathayibacter tritici (Rt) cause Goss's bacterial wilt and blight of maize, Stewart's wilt of maize and spike blight of wheat and barley, respectively. The bacterial diseases are not globally distributed and not present in Korea. This study adopted comparative genomics approach and aimed to develop specific primer pairs to detect these three bacterial pathogens. Genome comparison among target pathogens and their closely related bacterial species generated 15-20 candidate primer pairs per bacterial pathogen. The primer pairs were assessed by a conventional PCR for specificity against 33 species of Clavibacter, Pantoea, Rathayibacter, Pectobacterium, Curtobacterium. The investigation for specificity and sensitivity of the primer pairs allowed final selection of one or two primer pairs per bacterial pathogens. In our assay condition, a detection limit of Pss and Cmn was $2pg/{\mu}l$ of genomic DNA per PCR reaction, while the detection limit for Rt primers was higher. The selected primers could also detect bacterial cells up to $8.8{\times}10^3cfu$ to $7.84{\times}10^4cfu$ per gram of grain seeds artificially infected with corresponding bacterial pathogens. The primer pairs and PCR assay developed in this study provide an accurate and rapid detection method for three bacterial pathogens of grains, which can be used to investigate bacteria contamination in grain seeds and to ultimately prevent pathogen dissemination over countries.
White root rot disease, caused by the pathogen Rosellinia necatrix, is one of the world's most devastating plant fungal diseases and affects several commercially important species of fruit trees and crops. Recent global outbreaks of R. necatrix and advances in molecular techniques have both increased interest in this pathogen. However, the lack of information regarding the genomic structure and transcriptome of R. necatrix has been a barrier to the progress of functional genomic research and the control of this harmful pathogen. Here, we identified 10,616 novel full-length transcripts from the filamentous hyphal tissue of R. necatrix (KACC 40445 strain) using PacBio single-molecule sequencing technology. After annotation of the unigene sets, we selected 14 cell cycle-related genes, which are likely either positively or negatively involved in hyphal growth by cell cycle control. The expression of the selected genes was further compared between two strains that displayed different growth rates on nutritional media. Furthermore, we predicted pathogen-related effector genes and cell wall-degrading enzymes from the annotated gene sets. These results provide the most comprehensive transcriptomal resources for R. necatrix, and could facilitate functional genomics and further analyses of this important phytopathogen.
Ani Widiastuti;Indah Khofifah Aruan;Alvina Clara Giovanni;Barokati Tsaniyah;Tri Joko;Achmadi Priyatmojo
Research in Plant Disease
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v.30
no.1
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pp.82-87
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2024
Leatherleaf fern (Rumohra adiantiformis) is an important ornamental plant in Indonesia and global. Green fern leaves with bold dark green color with long shelf-life, attract florists as decoration. Indonesia is one important leatherleaf fern exporters, however currently an outbreak of leaf blight decreased production significantly. Initial symptom was reddish brown spots from edge of leaf, which was gradually followed by dark-brown necrotic lesions causing leaf blight and dried. This is a study to do Koch-Postulate approach and molecular identification, to identify the pathogen of the "new emerging disease" reported. Based on multigene analysis using primers from ITS, β-tub and tef1-α gene markers, the pathogen was identified as Neopestalotiopsis sp. All sequences have been deposited in GenBank with accession number of OR905551 (ITS), OR899817 (ßtubulin) and OR899816 (TEF). This Neopestalotiopsis leaf blight causes an emerging concern in leatherleaf fern in Indonesia and global biosecurity because it infected an export commodity.
Yahaya, Nazariyah;Malinowski, Robert;Burrell, Mike;Walker, Heather;Petriacq, Pierre;Rolfe, Stephen
한국균학회소식:학술대회논문집
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2015.05a
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pp.27-27
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2015
Clubroot (Plasmodiophora brassicae) is a serious agricultural problem affecting Brassica crop production worldwide. It also infects the model plant Arabidopsis thaliana. During infection, this biotrophic pathogen manipulates the development and metabolism of its host leading to the development of galls in the root and hypocotyl. In turn, its own development is strongly influenced by the host. The aim of this study is to investigate the metabolism of clubroot-infected plants using a combination of transcriptomic and metabolomic approaches. We have used direct injection mass spectrometry to obtain a metabolic fingerprint of when changes in the metabolome occur and linked this with changes in host and pathogen gene expression. We have identified alterations in carbohydrate metabolism that occur during P. brassicae infection of A. thaliana plants. Transcriptomic analysis showed that host genes associated with sugar transport and metabolism were induced during gall formation and that the pathogen also expresses genes associated with these processes. We have examined the impact of inactivating host sucrose synthase, cytosolic invertase and sugar permeases on gall formation, identifying host genes that are required for gall formation. We have also explored how sugar status is changed in root tissue, developing and mature leaf during infection of wild type and mutant plants.
Pre-treatment with DL-3-aminobutyric acid (BABA) in the cucumber plants caused the decrease of disease severity after inoculation with anthracnose pathogen Colletotrichum orbiculare. In this study, ultrastructures of the vascular bundle and the infection structures in the leaves of BABA-treated as well as untreated cucumber plants were observed after inoculation with the anthracnose pathogen by electron microscopy. The ultrastructures of vascular bundle in the leaves of BABA-treated plants were similar to those of the untreated plants except plasmodesmata. In the BABA-treated plants, the plasmodesmata were more numerous than in the untreated plants, suggesting that the BABA treatment may cause the active transfer of metabolites through the vascular bundle. In the leaves of untreated plants, the fungal hyphae were spread widely in the plant tissues at 5 days after pathogen inoculation. Most cellular organelles in the hyphae were intact, indicating a compatible interaction between the plant and the parasite. In contrast, in the leaves of BABA pre-treated plants the growth of most hyphae was restricted to the epidermal cell layer at 5 days after inoculation. Most hyphae cytoplasm and nucleoplasm was electron dense or the intracellular organelles were degenerated. The cell walls of some plant cells became thick at the site adjacent to the intercellular hyphae, indicating a mechanical defense reaction of the plant cells against the fungal attack. Furthermore, hypersensitive reaction (HR) of the epidermal cells was often observed, in which the intracellular hyphae were degenerated. Based on these results it is suggested that BABA causes the enhancement of defense mechanisms in the cucumber plants such as cell wall apposition or HR against the invasion of C. orbiculare.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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