Park, C. S.;Y. J. Yi;Kim, M. Y.;Y. J. Chang;Lee, S. H.;D. I. Jin
한국가축번식학회지
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제27권3호
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pp.215-223
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2003
본 연구는 체외성숙된 돼지난포란을 액상정액으로 수정시 수정시간과 배양배지가 난포란의 발달에 미치는 영향을 조사하기 위하여 실시하였다. 정자농후정액 (30∼60 ml)을 채취하여 실온에서 2시간 정도 서서히 냉각시킨 후, 정액을 15 ml 튜브에 담아 800${\times}$g로 10분간 원심분리하였다. 상층액은 버리고 하부의 정자는 5 ml LEN 희석액으로 1${\times}$$10^{9}$ 전자/ml가 되도록 재희석하였다. 희석된 정액은 4$^{\circ}C$ 냉장고에 보존하였다. 미성숙 난모세포의 성숙에 사용된 배지는 26.19 mM sodium bicarbonate, 0.9 mM sodium pyruvate, 10 $\mu\textrm{g}$/ml insulin, 2 $\mu\textrm{g}$/ml vitamin B$_{12}$ , 25 mM HEPES, 10 $\mu\textrm{g}$/ml bovine apotransferrin, 150 $\mu$M cysteamine, 10 IU/ml PMSG, 10 IU/ml PMSG, 10 IU/ml EGF, 0.4% BSA, 75 $\mu\textrm{g}$/ml sodium penicillin G, 50 $\mu\textrm{g}$/ml streptomycin sulfate그리고 10% pFF를 첨가한 TCM-199 배지였다. 22시간 성숙 배양한 후 난모세포는 cysteamine과 hormone들을 배제한 후 38.5$^{\circ}C$, 5% $CO_2$ incubator에서 22시간 더 성숙시켰다. 성숙된 난모세포는 채취 후 2일간 4$^{\circ}C$에 보존된 액상정액으로 수정되었다. 난모세포는 500 $\mu$l mTBM 수정 배지에서 1${\times}$$10^{6}$ 정자/ml의 농도로 1, 3, 6 그리고 9시간 동안 수정시켰다. 그 후 난모세포는 500 $\mu$l NCSU-23, Hopes buffered NCSU-23, PZM-3 그리고 PZM-4 배양배지에 옮겨서 6, 48 그리고 144시간을 더 배양하였다. 정자침투율, 웅성전핵형성율 그리고 난모세포의 난할율은 6 및 9시간 수정시간에서 1 및 3시간 수정시간 보다 높았다. 6시간 수정시 배반포형성율 (33.6%)은 1, 3 그리고 9시간 수정시 배반포형성율 (11.4, 23.0 그리고 29.6%) 보다 높았다. 배반포의 평균세포수는 6, 9, 3 그리고 1시간 수정시 각각 32.9, 27.6, 26.3 그리고 24.4개 였다. 분할된 난모세포의 배반포형성율 그리고 배반포의 평균세포수는 NCSU-23, PZM-3 그리고 PZM-4 배양배지보다 HEPES buffered NCSU-23 배양배지가 우수하였다. 결론적으로 4$^{\circ}C$ 보존 돼지액상정액은 체외성숙된 돼지 난모세포의 체외수정에 사용될 수 있음이 입증되었다. 또한 체외성숙된 돼지 난모세포는 500 $\mu$l mTBM 수정배지에서 1${\times}$$10^{6}$ 정자/ml로 6시간 공배양시키는 것이 바람직하며, HEPES buffered NCSU-23 배양배지에서 배양하는 것이 좋다는 결과를 얻었다.
Objective of this study was to investigate the effect of nicotinic acid (NA) on the characteristics in fresh semen of miniature pig. We evaluated viability, acrosome reaction and mitochondrial integrity of sperm on 0, 3, 7 and 10 days during storage period with nicotinic acid. As results, the survival rate of sperm in 15 mM NA (day 3, $87.8{\pm}1.2%$; day 5, $84.0{\pm}2.7%$; day 7, $82.2{\pm}0.9%$) and 30 mM NA (day 3, $87.7{\pm}0.3%$; day 5, $84.4{\pm}2.5%$; day 7, $82.3{\pm}0.7%$) groups were higher than control and 5 mM NA groups in 3, 7 and 10 days of semen storage. The NA-treated sperm on 10 day was used day for observing acrosome integrity. The survival sperm with acrosome reaction was higher in 30 mM NA group (day 3, $2.7{\pm}0.2%$; day 5, $3.3{\pm}0.6%$; day 7, $11.4{\pm}0.3%$) than in the control, significantly (P<0.05). Moreover, the live sperm with mitochondrial integrity was higher in whole treatment groups of NA than control group, significantly (P<0.05). Specially, most mitochondrial integrity on 10 day of semen storage was significantly higher in 30 mM NA group ($90.2{\pm}1.6%$) than other treatment groups (control, $81.8{\pm}3.1%$; 5 mM NA, $83.4{\pm}3.0%$; 15 mM NA, $89.1{\pm}0.7%$, P<0.05). In conclusion, supplement of NA in liquid semen of miniature pig can improve and maintain semen quality, such as viability, acrosome reaction, and mitochondria integrity.
Understanding the behavior of transgenes introduced into oocyte or embryos is essential for evaluating the methodologies for transgenic animal production. To date, many studies have reported the production of transgenic pig embryos with, however, low efficiency in environment of blastocyst production. The aim of present study was to determine the expression and duration of transgene transferred by intracytoplasmic sperm injection-mediated gene transfer (ICSI-MGT). Embryos obtained from the ICSI-MGT procedure were analysed for the expression of GFP and then for the transmission of the transgene. Briefly, fresh spermatozoa were bound to exogenous DNA after treatment by Triton X-100 and Lipofectin. When ICSI-MGT was performed using sperm heads with tails removed, the yield of blastocyst (25.3%), treated with Lipofectin (18.8%) and Triton X-100 (19.2%) were observed. Treatments of Lipofectin or Triton X-100 did not further improve the rates of blastocysts. Moreover, the apoptosis rates of embryos were obtained from the control and LIpofectin groups (8.7%, 9.7%, respectively), but were significantly higher in the Triton X-100 group (13.0%). Our results demonstrated that ICSI-MGT caused minimal damage to oocytes that could develop to full term. Moreover, the embryos derived by ICSI-MGT have shown prolonged exogenous DNA expression during preimplantation stage in vivo. However, more efforts will be required to improve the procedures of both sperm treatments cause of high frequency of mosaicisms.
Davallialactone (DAVA) is a hispidin analogue derived from the medicinal fungus Phellinus baumii. We examined the effect of DAVA on in vitro fertilization (IVF) of pigs. Boar spermatozoa were incubated in fertilization medium with varying concentrations of DAVA, then sperm motility and reactive oxygen species (ROS) level were evaluated. Higher sperm motility was found following the addition of 0.5 or $1{\mu}M$ DAVA after incubation than addition of other concentrations or controls. ROS level decreased significantly with the addition of DAVA. The rate of normal fertilization was higher in the presence of $1{\mu}M$ DAVA (65.1%) than were those of other concentrations or controls (45.4~59.4%), and the highest total fertilization rate (mono- and polyspermic oocytes) was observed at $1{\mu}M$ DAVA (83%). In conclusion, addition of DAVA to fertilization medium improved sperm motility, and reduced ROS level so as to potentially improve sperm-oocyte binding in IVF, suggesting the potential of a compound isolated from mushrooms in assisted reproductive technology for humans and animals.
This study was conducted to compare the reproduction ability of the wild type boar and recombinant human erythropoietin (hEPO) transgenic boar semen. Ejaculated boar semen was analyzed by flow cytometry, Elisa and IVF methods. In experiment 1, flow cytometric analysis showed that the live sperm ratio of transgenic boar sperm significantly lower (P<0.05) than that of wild type boar after incubation at 20, 22, 24 and 26 hr. In experiment 2, the presence and levels of various cytokines (IL-6, IL-10 and $TNF-{\alpha}$) to related animal reproduction in the seminal and blood plasma were examined using specific enzyme immunoassay. There was no significant difference between both groups. In experiment 3, the fertilizing capacity and developmental ability of both boar sperm were compared. The transgenic boar sperm had a significantly low capacity of penetration, sperm-zona binding, embryo development, and blastocyst formation compared to wild type sperm (P<0.05). These results suggest that transgenic boar sperm harboring hEPO gene has low sperm viability than wild type boar, and it is a reason to decrease of fertility and litter size.
Tight junctions are constituents of the blood-epididymis barrier that play roles in regulating the unidirectional transcellular transport of ions, water, and solutes to maintain optimal conditions for sperm maturation and storage. Claudin 1 (Cldn1) and 4 (Cldn4) are known as tight junction proteins and are expressed in the basolateral membranes as well as tight junctions in the epididymis of rodents. Here, we examined the expression and localization of Cldn1 and 4 to determine the function of these proteins in the pig epididymis. Cldn1 was highly expressed in the basolateral membrane of epithelial cells in the caput and corpus regions of the epididymis. In the cauda region, however, Cldn1 labeling was significantly decreased in the basolateral membrane of epithelial cells. In contrast, labeling indicated that Cldn4 was expressed in the basolateral membrane in the cauda region of the epididymis and was present at punctate reactive sites in the caput and corpus regions. However, in no region of the epididymis did we detect colocalization of Cldn1 and 4 with labeled ZO-1, the distribution of which is restricted to the tight junctions. Our results indicate that Cldn1 and 4 were region-specifically expressed in the pig epididymis but not present in the tight junctions of epididymal epithelium. In addition, reciprocal regulation in specific regions of the epididymis between Cldn1 and 4 may play an important role in generating an optimal luminal environment for sperm maturation and storage in the pig epididymis.
본 연구는 돼지 동결-융해 정자의 배양에 의한 체외수정능력과 glycosidase activity를 평가하기 위하여 chlortetracycfine fluorescence분석법을 이용하여, glycosidase가 체외수정능력과 정자침입에 미치는 영향에 대하여 검토하였다. 또한 돼지난자의 투명대내에서 발견된 당잔기에 대한 정자의 glyco-sidase 특이성을 확인하기 위하여 $\alpha$-L-fucosidase, $\alpha$-D-mannosidase, $\beta$-D-galactosidase 및 N-acetyl-$\beta$-D-glucosaminidase ($\beta$-GlcNAc'ase)의 activity를 분석하였다. 그 결과 glycosidase activity는 동결정자의 응해 후 배양하지 않았을 때보다 2시간 배양했을 때 더 높게 나타났다. $\beta$-GlcNAc'ase의 activity 는 정자 배양 유무에 관계없이 다른 glycosidase 처리시보다 최소한 2배 이상 높게 나타났다. 또한 첨체반응이 유기된 정자의 비율은 glycosidase ($\alpha$-D-mannosidase; P<0.05)에 의해 영향을 받았으며 자를 배양하지 않은 경우보다는 배양된 정자에서 높게 나타났다. 그러나 배양시간에 따른 정자의 존성에 대해 glycosidase의 종류에 따른 유의차는 인정되지 않았다. 한편 투명대내 정자의 접착과 입에 대한 또 다른 실험에서, 서로 다른 glyco-sidase가 첨가된 배양액내에서 수정된 정자가 배양시간이 길어짐에 따라 정자의 침입율은 낮아졌다 $\beta$-GlcNAc'ase; P<0.05). 투명대내의 정자접착정도는 glycosidase의 첨가시에 무첨가시보다 접착정도가 더 높았으며, 가장 높은 접착율은 $\beta$-GlcNAc'ase 첨가시 나타났다. 또한 모든 glycosidase 처리시 2시간 배양한 정자보다는 배양하지 않은 정자에서 투명대에 대한 접착정도가 높게 나타났으며, $\alpha$-D-mannosidase의 처리시 유의적인 차이를 보였다 (P<0.05). 본 연구의 결과, $\beta$-GlcNAc'ase가 주로 돼지정자의 원형질막내에 존재하는 것으로 추측되며, 배양된 정자에 의한 투명대 접착정도와 침입율이 낮았음에도 불구하고 glycosidase activity가 증가하는 것으로 나타났다.
This study was designed to develop a method of liquid storage of boar sperm at $4^{\circ}C$ by using the modified Beltsville F5 (BF5) diluent with bovine serum albumin (BSA) and N-acetyl-D-glucosamine. Boar sperm were stored in lactose-egg yolk and N-acetyl-D-glucosamine (LEN), BF5 and Golden-Pig liquid 4 (GPL4) diluents at $4^{\circ}C$ for 5 days and were examined for sperm viability, adenosine triphosphate (ATP) and in vitro fertilization (IVF). The percentage of sperm viability in GPL4 diluent was higher than in LEN and BF5 diluent from 1 to 5 days of storage at $4^{\circ}C$. The percentage of sperm viability steadily declined from 1 to 5 days of storage in the three different diluents. Sperm ATP in GPL4 diluent was higher than in LEN and BF5 diluents from 1 to 5 days of storage. Sperm ATP rapidly declined after 5 days of storage in the three different diluents. Porcine oocytes matured in vitro were inseminated with different sperm concentrations of liquid semen stored for 3 days in GPL4 diluent. The percentage of monospermic oocytes did not show any differences from 2.5 to $20{\times}10^5$ sperm/ml. However, the percentage of polyspermic oocytes in the sperm concentration of $2.5{\times}10^5$ sperm/ml was lower than in concentrations of 5, 10 and $20{\times}10^5$5 sperm/ml. The percentage of blastocysts from the cleaved oocytes at $2.5{\times}10^5/ml$ sperm concentration was significantly lower than at 5, 10 and $20{\times}10^5sperm/ml$ concentrations. In conclusion, GPL4 diluent can be stored at $4^{\circ}C$ for 5 days and showed higher sperm viability and sperm ATP concentration compared with LEN and BF5 diluents. Also, we found that GPL4 diluent can be used for IVF of porcine oocytes.
The objective of this study was to investigate the effect of storage time on fresh boar semen in Androhep and Beltsville Thawing Solution (BTS). Boar semen samples extended in each extender were stored at $17^{\circ}C$ up to 4 days. Sperm motility kinematics was evaluated by computer assisted sperm analyzer (CASA) and capacitation status by chlortetracycline (CTC)/Hoechst 33258 staining. Sperm motility (%) was not decreased during storage in BTS and Androhep. No significant difference between extenders was observed. Only significant differences in kinematic parameters on linearity during storage were found. The percentage of dead sperm significantly decreased during storage (p<0.05). Also the percentage of noncapacitated, capacitated, and acrosome-reacted sperm significantly modified during storage (p<0.05). However, there was no significant difference between extenders except proportion of capacitated sperm. This finding supported that modification in these parameters was not significantly different between extenders during this short-term storage. Our finding strongly indicated that both Androhep and BIS maintained favorable conditions for motility, motility kinematics, and capacitation status during short-term storage. Despite modifications in some parameters were apparent during sperm storage in extenders, these may not affect the fertilizing capacity of boar semen.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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