Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.13
no.4
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pp.459-468
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1984
The currently accepted model of membrane structure proposes a dynamic, asymmetric lipid matrix of phospholipids and cholesterol with globular proteins embedded across the membrane to various degrees. Most phospholipids are in the bilayer arrangement and also closely associated with integral membrane proteins or loosely associated with peripheral proteins. Biological functions of membrane, such as membrane-bound enzyme functions and transport systems, are influenced by the membrane physical properties, which are determined by fatty acid composition of phospholipids, polar head group composition and membrane cholesterol content. Polar and non-polar region of the phospholipid molecule can interact, with changes in the conformation of a membrane-associated protein altering either its catalytic activity or the protein's interaction with other membrane proteins. Mammalian dietary studies attempted to change the lipid composition of a few cell membranes have shown comparisons, using essential fatty acid-deficient diets. In recent years, Clandinin and a few other workers have pioneered the study proving the influence of dietary fat fed in a nutritionally complete diet on composition of phospholipid classes of cell membrane. Modulation caused by diet fat was rapid and reversible in phospholipid fatty acyl composition of membranes of cardiac mitochondria, liver cell, brain synaptosome and lymphocytes. These changes were at the same time, accompanied by variety of membrane associated functions controlled by membrane-bound enzymes, tranporter and receptor proteins. The findings suggest the basic concept of the necessity of dietary fatty acid balance if consistency of optimal membrane structural lipid composition is to be maintained, as well as the overall inadequacy of describing the nutritional-biochemical quality of a dietary fat solely by its content of linoleic acid. Furthermore, they give light on the possible application to clinical and preventive medicine.
Overexpression of phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase (PHGPx) genes has been reported to play an important role in protecting host cells from oxidative injury in several model systems. A radish phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase (RsPHGPx) known to have high catalytic activity was applied to mouse 3T3 fibroblasts to determine the protective effects of PHGPx against oxidative injury triggered by hydroperoxides such as hydrogen peroxide ($H_2O_2$), tert-butyl hydroperoxide (t-BHP) and phosphatidylcholine hydroperoxide (PCOOH). We observed that preincubation of cells with RsPHGPx significantly increased cell viability, reduced levels of malondialdehyde (MDA), inhibited generation of reactive oxygen species (ROS), and maintained natural cell shapes after treatment with $H_2O_2$, t-BHP or PCOOH, indicating that the exogenous RsPHGPx can act as an effective hydroperoxide-scavenger and may also protect target cells from oxidative damage. These results suggest the possibility for use of RsPHGPx as a therapeutic protectant.
We investigated the effects of n-alkanols on the range and rate of the lateral diffusion of 1, 3-di(1-pyrenyl)propane in the model membranes of total phospholipid fraction extracted from synaptosomal plasma membrane vesicles. n-Akanols increased the range and rate of the lateral diffusion of 1, 3-di(1-pyrenyl)propane in the bulk model membrane structures (inner + outer monolayers) and the potencies of n-alknols up to 1-nonanol increased by 1 order of magnitude as the carbon chain length increases by two carbon atoms. The cut-off phenomenon was reached at 1-decanol, where further icnrease in hydrocarbon length resulted in a decrease in the lateral diffusion. However, significant changes in the 1'/1 value were not observed by methanol (from 100 to 2500 mM), ethanol (from 25 to 800 mM), and 1-propanol (from 10 to 250 mM) over entire concentration.
The cell membrane, also known as the biological membrane, surrounds every living cell. The main components of cell membranes are lipids and therefore called as lipid membranes. These membranes are mainly made up of a two-dimensional lipid bilayer along with integral and peripheral proteins. The complex nature of lipid membranes makes it difficult to study and hence artificial lipid membranes are prepared which mimic the original lipid membranes. These artificial lipid membranes are prepared from phospholipid vesicles (liposomes). The liposomes are formed when self-forming phospholipid bilayer comes in contact with water. Liposomes can be unilamellar or multilamellar vesicles which comprises of phospholipids that can be produced naturally or synthetically. The phospholipids are non-toxic, biodegradable and are readily produced on a large scale. These liposomes are mostly used in the drug delivery systems. This paper offers comprehensive literature with insights on developing basic understanding of lipid membranes from its structure, organization, and phase behavior to its potential use in biomedical applications. The progress in the field of artificial membrane models considering methods of preparation of liposomes for mimicking lipid membranes, interactions between the lipid membranes, and characterizing techniques such as UV-visible, FTIR, Calorimetry and X-ray diffraction are explained in a concise manner.
Proceedings of the Korean Institute of Electrical and Electronic Material Engineers Conference
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1998.06a
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pp.173-176
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1998
We experimentally investigated the dielectric relaxation phenomena of a liquid crystal monolayers by the Displacement current techique and displacement current flowing across monolayers is analyzed using rod-like molecular model. It is revealed that the dielectric reaxation time $\tau$ of monolaters in the isotropic polar orientational phase is determined using a linear relashionship between the monolayers compression speed $\alpha$ and the molecular area. The dielectric relaxation time of phospholipid monolayers was examined on the basis of the analysis developed here.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.26
no.4
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pp.743-750
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1997
Direct measurement of the kinetics of free fatty acid transfer between phospholipid model membrane is technically limited by the rapid nature of the transfer process. Separation of membrane-bound fatty acid by centrifugation has shown that although the equilibrium distribution of free fatty acid is determined by this method, fatty acid transfer occurs too rapidly for accurate kinetic measurements. Recently fluorescence resonance energy transfer(FRET) assay has been developed to examine transfer of fatty acids between membranes. Donor membranes which has fluorescent fatty acid, anthroyloxy fatty acid(AOFA), is mixed with acceptor membranes which has non-interchangeable fluorescent quencher, nitrobenzo-xadiazol(NBD), using stopped flow apparatus. As the fluorescent fatty acids transfer from donor membrane to acceptor membrane, fluorescence intensity would be decreased and the rate and degree of fatty acid transfer can be analyzed. Fatty acid transfer between micelles is more complicated because of bile salt. Therefore in experiments with micelles, fluorescence self quenching assay is used. At high concentrations, a fluorophore tends to quench its own fluorescence causing a reduction in fluorescence intensity. Donor micelles contained self quenching concentrations of fluorophore and acceptor micelles had no fluorophore. Upon mixing of donor and acceptor micelles, the rate of transfer of the fluorophore from the donor to the acceptor was measured by monitoring the release in self quenching when its concentration in donor decreased over time.
Knag, Jung-Sook;Chung, Young-Za;Cho, Goon-Jae;Byun, Won-Tan;Yun, Il
Archives of Pharmacal Research
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v.15
no.3
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pp.196-203
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1992
Intramolecular excimer formation of 1, 3-di(1-pyrenyl)propane (Py-3-Py) and fluorescence polarization of 1, 6-diphenyl-1, 3, 5-hexatriene (DPH) were used to investigate the effects of barbiturates on the fluidity of model membranes of phosphatidycholine (SPMVPC), phosphatidylserine (SPMVPS), and phosphatidylinositol (SPMVPI) fractions of synaptosomal plasma membrane vesicles (SPMV) isolated from bovine cerebral cortex. In a dose-dependent manner, barbiturates decreased the excimer to monomer fluorescence intensity ratio (I'/I) of Py-3-Py and increased the anisotropy(r), rotational relaxation time (P), limiting anisotropy $(r_infty)$, and order parameter (S) of DPH in SPMVPC, SPMVPS and SPMVPI. This indicates that barbiturates decreased both the lateral and rotational diffusion of the probes in SPMVPC, SPMVPS and SPMVPI. The relative potencies of barbiturates in ordering the membranes were in the order: pentobarbital > hexobarbital > amobarbital > phenobarbital. This order correlates well with the anesthetic potencies of barbiturates and the potencies for enhancement of $\gamma$-aminobutyric acid-stimulated chloride uptake. Thus, it is strongly suggested that a close relationship might exist between the membrane ordering effects of barbiturates and the chloride fluxes across SPMV.
Selective quenching of 1,6-diphenyl-1,3,5-hexatriene (DPH) by trinitrophenyl groups was utilized to examine the transbilayer fluidity domains of the model membranes of total lipids (SPMVTL) and phospholipids (SPMVPL) extracted from synaptosomal plasma membrane vesicles. At $37^{\circ}C$, all anisotropy (r), limiting anisotropy $(r_{\infty})$, and order parameter (S) values of DPH in the SPMVTL were larger than those in SPMVPL. The anisotropy, limiting anisotropy, and order parameter of DPH in the inner monolayer were 0.025, 0.033, and 0.070, respectively, greater than calculated for the outer monolayer of SPMVTL. In SPMVPL, the anisotropy, limiting anisotropy, and order parameter of DPH in the inner monolayer were 0.014, 0.018, and 0.047, respectively, greater than calculated for the outer monolayer. Selective quenching of DPH by trinitrophenyl groups was also utilized to examine the effects of barbiturates on the transbilayer fluidity domains of SPMVTL and SPMVPL. Barbiturates did not affect the anisotropy of DPH in the transbilayer domains of SPMVTL. In contrast, barbiturates increased the fluorescence anisotropy, limiting anisotropy, and order parameter of DPH in the SPMVPL in a dose-dependent manner. Barbiturates showed a greater ordering effect on the outer monolayer as compared to the inner monolayer of SPMVPL. Hence, it has been demonstrated for the first time that the Sheetz-Singer hypothesis (1974) may be valid for phospholipid model membranes.
A linear undecapeptide, Substance P (SP) is involved in a wide variety of physiological processes such as pain, inflammation, salivation, and hypertension. Tertiary structure of SP in dodecylphosphocholine (DPC) micelles has been investigated by CD, NMR spectroscopy, and DGII calculation. CD spectrum of SP in the presence of 7.5 mM DPC micelles does not show any favorable secondary structure. The tertiary structure determined by NMR spectroscopy and DGII calculation shows that the Phe7-Phr8-Gly9-Leu10 region adopts a turn structure, while the N-terminal region is quite flexible. Both prolines in SP exist preferentially as the trans isoforms and the aromatic ring of Phe7 protrudes outward. Conformation of SP may be restrained by the contact of the Phe7 aromatic ring with the hydrophobic side chains of the DPC micelles and this interaction induces a turn structure. Structure of SP in aqueous solution in the presence of DPC micelles can represent a good model to study the conformation recognized by the receptor near neutral membrane.
Selective quenching of 1, 6-diphenyl-1, 3, 5-hexatriene (DPH) by trinitrophenyl groups was utilized to examine the transbilayer fluidity asymmetry of model membranes of phospholipids (SPMVPL) extracted from synaptosomal plasma membrane vesicles (SPMV). The polarization (P), anisotropy (r), limiting anisotropy $(r_\infty$), and order parameter (S) of DPH in the inner monolayer were 0.019, 0.014, 0.018, and 0.047, respectively, greater than calculated for the outer monolayer of SPMVPL. Selective quenching of DPH by trinitrophenyl groups was also utilized to examine the effects of n-alkanols on the individual monolayer structure of SPMVPL. n-Alkanols fluidized the hydrocarbon region of bulk SPMVPL and the potencies of n-alkanols up to 1-nonanon increased with carbon chain length. It appears that the potencies in bilayer fluidization increase by 1 order of magnitude as the carbon chain length increases by two carbon atoms. The cut-off phenomenon was reached at 1-decanol, where further increase in hydrocarbon length resulted in a decrease in pharmacological activity. The n-alkanols had greater fluidizing effects on the outer monolayer as compared to the inner monolayer of SPMVPL, even though these selective effects tended to become weaker as the carbon chain length increased. Thus, it has been proven that n-alkanols exhibit selective rather than nonselective fludizing effects within transbilayer domains of SPMVPL.
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