Lusta, Konstantin A.;Woo, Sahng-Young;Chung, Il-Kyung;Sul, Ill-Whan;Park, Hee-Sung;Shin, Dong-Ill
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.9
no.6
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pp.832-838
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1999
Two different types of lipases (lipase I and lipase II) secreted into culture medium by Rhizopus sp. L-I were purified using a hydrophobic chromatography and were partially characterized. Both enzymes were monomeric as revealed by SDS-PAGE and gel filtration. The molecular masses of the enzymes were identified as 45 kDa (lipase I) and 69 kDa (lipase II). The isoelectric points were estimated to be 3.6 and 5.2 for lipase I and lipase II, respectively. pH and temperature activity optima for lipase I were as 7.5 and $50^{\circ}C$, respectively, whereas the corresponding parameters for lipase II were 6.0 and $45^{\circ}C$. The amino terminal sequences of lipase I and lipase II, determined by Edman degradation, were found to be Leu-Val-Met-Ile-Gln-Arg and Leu-Val-Met-Lys-Gln-Arg, respectively. By western blotting analysis, the two lipases were found to have a common antigenic determinant. Immuno-electron cytochemistry conducted with polyclonal anti-lipase I antibody indicated the enzyme located in both the periplasm and the adjacent vesicles of fungal hyphae. Fortunately, the sites on the cell envelope where lipase was exported into the culture medium was also identified.
Overproduced proteins in many cases result in forming insoluble inclusion bodies, and their formation might be due to high concentration of protein. To investigate how proteins become insoluble, chloramphenicol acetyltransferase (CAT) and .betha.-lactamase were overproduced, and their solubilities and activities were determined. CAT was accumulated from 9 to 45% of total cellular protein in a fully soluble form without inclusion body formation. CAT specific activity was shown to be proportional to the amount of the protein produced. Moderately produced .betha.-lactamase by the phase T7 expression system at 30.deg.C comprised only mature forms in a soluble form. However, overproduced .betha.-lactamase at 37.deg.C became insoluble. Most precursor forms of .betha.-lactamase in the cytoplasm were insoluble, whereas majority of the mature forms in the periplasm space were soluble. Also, chaperone GroE proteins which assist proper protein folding and translocation did not increase .betha.-lactamase solubility significantly under the experimental condition. It seems that the formation of inclusion bodies in the cell is related to the nature of protein itself rather than just to high concentration of protein.
Jeong, Seon Mi;Lee, Hwa Jeong;Park, Yoon Mee;Kim, Jin Seok;Lee, Sang Dae;Bang, Iel Soo
Food Science of Animal Resources
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v.37
no.1
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pp.134-138
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2017
Salmonella enterica infects a broad range of host animals, and zoonostic infection threatens both public health and the livestock and meat processing industries. Many antimicrobials have been developed to target Salmonella envelope that performs essential bacterial functions; however, there are very few analytical methods that can be used to validate the efficacy of these antimicrobials. In this study, to develop a potential biosensor for Salmonella envelope stress, we examined the transcription of the S. enterica serovar typhimurium spy gene, the ortholog of which in Escherichia coli encodes Spy (${\underline{s}}pheroplast$${\underline{p}}rotein$${\underline{y}}$). Spy is a chaperone protein expressed and localized in the periplasm of E. coli during spheroplast formation, or by exposure to protein denaturing conditions. spy expression in S. typhimurium was examined by constructing a spy-gfp transcriptional fusion. S. typhimurium spy transcription was strongly induced during spheroplast formation, and also when exposed to membrane-disrupting agents, including ethanol and the antimicrobial peptide polymyxin B. Moreover, spy induction required the activity of regulator proteins BaeR and CpxR, which are part of the major envelope stress response systems BaeS/BaeR and CpxA/CpxR, respectively. Results suggest that monitoring spy transcription may be useful to determine whether a molecule particularly cause envelope stress in Salmonella.
Secretion efficiency is generally affected by promoter, signal sequence, characteristics of foreign protein and host. Secretion efficiencies of glucoamylase in recombinant plasmid-harboring yeast and chromosome-integrated yeast which had STA signal sequences were 74% and 65% at the 4th day of incubation, respectively. The high secretion efficiencies of the yeasts were obtained due to the fact that the expression levels were not reached at the secretory apparatus capacities of the host yeasts. In both yeasts, most of the intracellular glucoamylase were detected in cytoplasm and small portion (below 10%) of glucoamylase were located in periplasm. The characteristics of secreted heterologous glucoamylase from recombinant Saccharomyces cerevisiaes were investigated by using Western blot analysis. The secreted mature glucoamylase was heterogeneous and its molecular weight was about 200 to 300 kilodalton. The carbohydrate content of mature glucoamylase was higher than 80%, and several bands of about 55 to 65 kilodalton indicate the endoplasmic reticulum forms of intracellular glucoamylase.
A cytoplasmic endoprotease, named protease Ci, has been partially purified by classical chromatographic procedures. This enzyme degrades insulin, glucagon and bovine growth hormone to trichloroacetic acid-soluble materials, but shows little or no hydrolysis of bovine serum albumin, casein or globin. It has a molecular weight of about 120,000 as determined by gel filtration on Sephadex G200, and it appears to be consisted of two identical subunits having molecular weight of 54,000 when estimated by polyacrylamide gel electrophoresis in the presence of sodium dodecyl sulfate. Protease Ci has an optimum pH of 7.5, and has an isoelectric point of 5.5. This enzyme is a metalloprotease, since it is inhibited by o-phenanthroline and can be activated by the addition of divalent metal cations, such as $Mn^++$ and $Co^++$. Protease ci is inhibited by p-hydroxymercuribenzoic acid, but not by either of leupeptin or Ep475 which are specific inhibitors of sulfhydryl protease. It is distinct from protease Pi, a perplasmic insulin degrading enzyme, since protease Ci is localized to the cytoplasm. The physiological function of protease Ci is presently unknown.
Copper-containing compounds are introduced into the environment through agricultural chemicals, mining, and metal industries and cause severe detrimental effects on ecosystems. Certain microorganisms exposed to these stressors exhibit molecular mechanisms to maintain intracellular copper homeostasis and avoid toxicity. We have previously reported that the soil bacterial isolate Achromobacter sp. AO22 is multi-heavy metal tolerant and exhibits a mer operon associated with a Tn21 type transposon. The present study reports that AO22 also hosts a unique cop locus encoding copper homeostasis determinants. The putative cop genes were amplified from the strain AO22 using degenerate primers based on reported cop and pco sequences, and a constructed 10,552 base pair contig (GenBank Accession No. GU929214). BLAST analyses of the sequence revealed a unique cop locus of 10 complete open reading frames, designated copSRABGOFCDK, with unusual separation of copCD from copAB. The promoter areas exhibit two putative cop boxes, and copRS appear to be transcribed divergently from other genes. The putative protein CopA may be a copper oxidase involved in export to the periplasm, CopB is likely extracytoplasmic, CopC may be periplasmic, CopD is cytoplasmic/inner membrane, CopF is a P-type ATPase, and CopG, CopO, and CopK are likely copper chaperones. CopA, B, C, and D exhibit several potential copper ligands and CopS and CopR exhibit features of two-component regulatory systems. Sequences flanking indicate the AO22 cop locus may be present within a genomic island. Achromobacter sp. strain AO22 is thus an ideal candidate for understanding copper homeostasis mechanisms and exploiting them for copper biosensor or biosorption systems.
Single-chain antibodies against epidermal growth factor receptor variant III (EGFRvIII) are potentially promising agents for developing antibody-based cancer treatment strategies. We described in our previous study the successful expression of an anti-EGFRvIII scFv antibody in Escherichia coli. However, we could also observe the formation of insoluble aggregates in the periplasmic space, limiting the production yield of the active product. In the present study, we investigated the mechanisms by which growth conditions could affect the expression of the soluble anti-EGFRvIII scFv antibody in small-scale E. coli NiCo21(DE3) cultures, attempting to maximize production. The secreted scFv molecules were purified using Ni-NTA magnetic beads and protein characterization was performed using SDS-PAGE and western blot analyses. We used the ImageJ software for protein quantification and determined the antigen-binding activity of the scFv antibody against the EGFRvIII protein. Our results showed that the highest percentage of soluble scFv expression could be achieved under culture conditions that combined low IPTG concentration (0.1 mM), low growth temperature (18℃), and large culture dish surface area. We found moderate-yield soluble scFv production in the culture medium after lactose-mediated induction, which was also beneficial for downstream protein processing. These findings were confirmed by conducting western blot analysis, indicating that the soluble, approximately 30-kDa scFv molecule was localized in the periplasm and the extracellular space. Moreover, the antigen-binding assay confirmed the scFv affinity against the EGFRvIII antigen. In conclusion, our study reveals that low-speed protein expression is preferable to obtain more soluble anti-EGFRvIII scFv protein in an E. coli expression system.
library of the mutants was prepared by transposon mutagenesis of the Mycobacterium bovis BCG. We screened this library for the resistance to an anti-tuberculosis antibiotic, PA-824. Most of the mutants resistant to the PA-824 were not able to synthesize the coenzyme $F_{420}$ which is normally produced by the wild type M. bovis BCG strains. HPLC analysis of the cellular extract showed that one of those mutants which lost the ability to synthesize $F_{420}$ still produced F0. The insertion site of the transposon in this mutant was determined by an inverse PCR and the transposon was found to be inserted in the Rv2435c open reading frame (ORF). Rv2435c ORF is predicted to encode an 80.3 kDa protein. Rv2435c protein appears to be bound to the cytoplasmic membrane, its N-terminal present in the periplasm and C-terminal in the cytoplasm. The C-terminal portion of this protein is highly homologous with the adenylyl cyclases of both prokaryotes and eukaryotes. There are 15 ORFs which have homology with the class III AC proteins in the genome of the M. tuberculosis and M. bovis. Two of those, Rv1625c and Rv2435c, are highly homologous with the mammalian ACs. We cloned the cytoplasmic domain of the Rv2435c ORF and expressed it with six histidine residues attached on its C-terminal in Escherichia coli to find out if this protein is a genuine AC. Production of that protein in E. coli was proved by purifying the histidine-tagged protein by using the Ni-NTA resin. This protein, however, failed to complement the cya mutation in E. coli, indicating that this protein lacks the AC activity. All of the further attempts to convert this protein to a functional AC by a mutagenesis with UV or hydroxylamine, or construction of several different fusion proteins with Rv1625c failed. It is, therefore, possible that Rv2435c protein might affect the conversion of F0 to $F_{420}$ not by synthesizing cAMP but by some other way.
Human granulocyte colony-stimulating factor (hG-CSF) is a hematopoiesis agent that principally affects the differentiation of neutrophils in the bone marrow. At present, recombinant hG-CSF is used successfully in the treatment of chemotheraphy-induced neutropenia and its indication has been expanded to bone marrow transplantation and aplastic anemia. In this study, we have constructed rhG-CSF secretion plasmid pYRC1 in which OmpA signal sequence/hG-CSF gene was expressed under the control of the T7 promoter. rhG-CSF produced in E. coli BL21 (pYRC1) grown at $37{\circ}C$ was found in aggregates. However, 15% of the periplasmic protein was soluble rhG-CSF when the E. coli BL21 (pYRC1) was cultured at $25^{\circ}C$ for 7 h in the modified MBL medium containing 10 g/$\ell$ glucose with 10 $\mu$M IPTG induction. The production of soluble rhG-CSF in E. coli BL21 (pYRC1) using fed batch culture was also studied. In the fed batch culture system, the final yield of rhG-CSF produced from E. coli BL21 (pYRC1) was increased from 4.4 mg/$\ell$to 24 mg/$\ell$by controlling the specific growth rate from $0.43 h^{-1}$ to $0.14 h^{-1}$, and optimizing the time of induction.
Purpose: Recombinant ScFv lym-1 was produced, using pET vector system for large scale production. Methods: ScFv lym-1 gene inserted pET-22b (+) vector, was expressed in E.coli BL-21 strain. ScFv lym-1 antibody extracted from periplasm, was purified with His-Taq column. To evaluated immunoreactivity with Raji cell, ScFv lym-1 was labeled with I-125 and I-125 ScFv lym-1 was purified with desalting column. Raji cell was injected into the C57BR/cdJ SCID mice. Gamma camera imaging were taken time point at 1, 8, 24, and 48 hr with 8 mm pinhole collimator. Results: An active scFv lym-1 could be produced in E. coli with soluble iron using PET vector system. Immuuoreaetivity and affinity constant of IgG lym-1 were 54% and $1.83{\times}10^9M^{-1}$, respectively, and those of scFv lym-1 were 53.7% and $1.46{\times}10^9M^{-1}$, respectively. Biodistribution of I-125 scFv lym-1 antibody showed faster clearance in blood, spleen, kidney and than I-125 IgG lym-1 antibody. Gamma camera image of I-125 scFv lym-1 antibody showed faster clearance and tumor targeting liver than I-125 IgG lym-1 antibody. Conclusions: In vitro properties of scFv lym-1 were similar to those of IgG lym-1. ScFv lym-1 showed faster blood clearance than IgG lym-1 There results suggest that scFv lym-1 antibody can be useful for tumor imaging agent.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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