Pfu DNA polymerase from Pyrococcus furiosus was expressed in the E. coli periplasm, and the fully active polymerase was partially purified by applying osmotic shock, ammonium sulfate precipitation, and heat treatment. This method represents a new way of expressing and purifying functional Pfu DNA polymerase without the use of chromatography.
세제에 의하여 대장균의 periplasm에서 penicillin G amidase (PGA)를 방출하는 방법을 연구하였다. 결과적으로 세제와 lysozyme의 혼합 작용이 효과적인 것으로 나타났다. 세포 투과성의 최적 조건을 알아보기 위하여 세제의 종류, 농도, pH, 반응 시간, 온도 등의 영향을 살펴보았다. 그리하여 대장균에서 재조합 PGA를 periplasm에서 방출하는 모델을 만들 수 있었고 방출된 PGA를 농축할 수 있었다. 실리카 구슬을 이용한 고정화 시스템으로 PGA 용액을 농축할 수 있었으며, 더 이상의 정제 과정 없이 순수하게 추출 할 수 있었다. 고정화된 PGA는 penicillin G 생성의 원료인 6-APA를 생산하는데 사용할 수 있었다. 이 방법은 대장균으로부터 재조합 단백질을 추출하는 간단한 방법이며 고정화 PGA를 이용하여 ${\beta}-lactam$ 항생물질의 산업적 생산 이용될 수 있을 것으로 사료된다.
Photobacterium leiognathi CuZuSOD(PSOD)의 부세포성 분포에 따른 방어효과가 paraquat, 열 쇼크, 과산화수소 그리고 $CuSO_4$의 처리시 각각 조사되었다. 서로 달리 periplasm내에 분포하는 PSOD와 세포질에 분포하는 PSOD 사이의 생리적 특성은 본 연구에서는 조건에 따란 차이를 보였다. Paraquat나 $H_2O_2$ 처리시에는 periplasm에 SOD를 발현하는 세포에서 세포질내에 SOD를 분포하는 경우보다 약간 방호효과가 나았으며 SOD 발현 정도는 이와 일관되게 아주 중요한 변화를 보였다. 그러나 열 쇼크와 $CuSO_4$의 처리시는 각각 이런 현상이 역으로 나타났다.
Five fusion proteins between Z domains derived from Staphylococcal Protein A and Green Fluorescent Protein or Human Proinsulin were produced on the periplasm of Escherichia coli. The effects of the molecular weight and amino acid composition of the translocated peptide, culture medium composition, and growth phase of the bacterial culture were analyzed regarding the expression and periplasmic secretion of the recombinant proteins. It was found that secretion was not affected by the size of the translocated peptide (17-42 kDa) and that the highest periplasmic production values were obtained on the exponential phase of growth. Moreover, the highest periplasmic values were obtained in minimal medium, showing the relevance of the culture medium composition on secretion. In silico prediction analysis suggested that with respect to the five proteins used in this study, those that are prone to form ${\alpha}$-helix structures are more translocated to the periplasm.
Expression in the periplasm of Escherichia coli of cloned heavy and light chain cDNAs for Fab fragment of a murine monoclonal antibody MabB9 (${\gamma}2b$, K), specific for human plasma apolipoprotein B-100 of LDL, was studied. For the purpose, a vector for two-cistronic expression of the heavy chain cDNA, at the 5' terminus, and light chain cDNA, at the 3' terminus, was constructed using the signal sequences, pelB (for heavy chain) and ompA (for light chain) in a pET vector system. The constructed vector was transformed into E. coli BL21(DE3). The expressed heavy chain (25 kDa) and light chain (23 kDa) of the antibody molecule were detected in total cell extracts as well as in the periplasmic extracts of E. coli.
The synthesis and secretion of human angiogenin in E. coli by the natural leader sequence has been studied. We constructed a recombinant plasmid containing human angiogenin cDNA which encompassed all the coding region including leader sequence required for secretion. The recombinant plasmid was introduced into a suitable E. coli host. The angiogenin was detected in the culture medium and periplasm upon the induction of gene expression. The molecular weight of the secreted angiogenin was identical to that of authentic angiogenin purfied from human plasma when estimated by SDS-PAGE and immunoblotting. showing that the natural leader sequence was recognized and processed by the secretion machinery of E. coli. The angiogenin concentration in the culture medium reached a maximum within 2 h when expressed at $37^{\circ}C$ with 0.02~2 mM IPTG. In contrast, the expression level increased gradually over time up to 11 h at $23^{\circ}C$ with 0.002~2 mM IPTG and at $37^{\circ}C$ with 0.002 mM IPTG.
Serratia marcescens ATCC 27117에서 부터 클로닝한 58KD 키티나아제 유전자를 subcloning 하여 2.6Kb DNA 삽입단편을 가진 플라스미드 pCHI26을 제조하고 대장균에서 발현과 분비를 살펴보았다. 키티니아제 유전자는 대장균에서 자신의 prmoter를 이용하여 매우 낮은 수준(<5mU/m$\ell$)으로 발현되었으며 lac promoter를 이용하는 경우 키티니아제 발현이 증가되어 약 80mU/m$\ell$가 되었다. 발현된 키티니아제는 거의 전적으로 대장균의 periplasm에 위치(약 87.8)하고 있었다. 배양시간에 따라서 세포내 키티니아제 활성을 측정해본 결과 초기정지기까지는 균체 성장과 비례해서 세포내 효소활성이 증가되었으나 정지기부터 세포내 효소활성이 급격히 줄어드는 양상을 보였다. 그러나 이 기간 동안 세포의 효소활성의 변화는 거의 없었다. 이러한 결과로 보아 periplasm에 위치한 키티나아제가 대장균의 단백분해효소에 의해서 분해되는 것으로 추정되었다.
본 연구의 목적은 위치특이적 펩타이드 및 단백질을 사용하여 재조합 대장균에서 활성형 인간 상피세포성장인자(hEGF)를 고효율로 발현할 수 있는 방법을 찾아내는 데 있다. 재조합 대장균내 cytoplasm 및 periplasm 영역에서 hEGF의 발현을 위해 각각 세개의 응합 펩타이드 및 단백질을 선정하여 상호 비교하였다. 재조합 대장균에서 hEGF의 발현유도시 대부분 불용성 단백질로 생산되는 현상을 극복하기 위해 cytoplasm영역에서는 ATS, thioredoxin, 리파제를 융합파트너로 사용하였으며 periplasm 영역에서는 foldase인 DsbA와 DsbC, 용융성 고발현 단백질인 maltose binding protein을 선택하여 사용하였다. Periplasm영역에서 발현유도를 시키는 융합단백질의 경우 cytoplasm영역에서의 발현양도 용융성 형태로 고발현 되는 것을 알 수 있었으며 전체적으로 약 2배가량의 용융성 형태로 발현되었다. hECF의 발현율을 가장 높일 수 있는 융합단백 질은 maltose binding protein이었으나 발현된 융합단백질의 24%가 불용성 단백질로 형성되어 활성형 형태로 얻는 데 한계가 있었으며, 활성형 형태로 hEGF의 발현을 위해서는 DsbA를 응합단백질로 사용한 경우에 18.1 mg/L로 가장 높은 발현농도를 보였다. Cytoplasm 영역에서 발현유도를 한 경우에는 ATS와 thioredoxin을 응합파트너로 hEGF를 발현한 경우 용융성 형태로 높은 발현율을 보였다. 특히 ATS와 같은 펩타이드를 N-말단에 융합시킨 경우 불용성을 방지하는 효과를 보여 이황화결합의 불완전성이나 소수성으로 인해 불용성 단백질로 발현되는 기존의 단백질을 활성형 형태로 발현하는데 될 수 있음을 확인할 수 있었다.
E. coli-Yeast shuttle vector YEp 13에 B. amyloliquefaciens의 $\alpha$-amylase gene을 cloning하여 얻은 hybrid plasnidlasmid를 E. coli를 숙주세포로 하여 형질을 발현시켰다. 형질전환주의 $\alpha$-amylase 활성 측정 결과, B. amyloliquefaciens에 대해 20-30%의 상대 활성도를 나타내었다. 형질전환주의 경우 생성된 $\alpha$-amylase의 60-65%가 periplasm에 축적되었으며 세포 외부로의 분비는 없었다. Hybrid DNA를 agarose-gel 전기영동으로 조사한 결과 그 크기가 다른 다수의 hybrid DNA가 확인되었으며 pHA28의 plasmid (a)(Fig.3)에서만 $\alpha$-amylase 활성을 나타내는 것으로 밝혀졌다 pHA28의 plasmid(a)의 크기가 YEp 13 plasmid DNA보다 작은 것은 YEp13 plasmid에서 yeast gene부분이 deletion된 결과로 추측되었다.
In order to secrete the Bacillus subtilis cytidine deaminase (CDase, cytidine/2'-deoxycytidine deaminase) encoded by the B. subtilis cdd gene in E. coli by the aid of signal sequences, the cdd gene was fused in-frame to either amyE or penP signal sequences and the gene expression and CDase localization were examined. For the penP signal sequence::cdd fusion, the cdd gene with 9 amino acids truncated from the 5'-terminus was fused in-frame to the signal sequence, then the $cdd^{+}$ colonies were not occurred from the minimal plate by cdd complementation. The result suggests that 9 amino acids on the $NH_2-terminal$ of CDase have an essential function in the enzyme activity. The hybrid protein obtained by fused gene amyE signal sequence::cdd structural gene gave $cdd^{+}$ phenotype and about half of the total CDase activity was found to be secreted in the periplasm of E. coli transformant JF611/pSO202. The periplasmic CDase activity of JF611 harboring pSO52 containing the intact cdd gene was considerablely lower than that of the cells harboring pSO202 carrying the hybrid cdd gene. This suggests that the CDase was secreted to the periplasm through the cytoplasmic membrane by the aid of the amyE signal sequence in the E. coli transformant.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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