• 미생물학회지
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• 제23권2호
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• pp.138-146
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• 1985

포도당 이성화효소를 coding는 Bacillus licheniformis ATCC31667의 유전자를 Escherichia coli LE 392-6에 클로닝하였다. Bacillus lieheniformis 염색체 DNA를 분리하고 제한효소인 Pst I.HindIII, Sal 1, EcoR 1, BamH1으로 절단한 후 운반제 plasmid인 pBR332에 연결하고 포도당 이성화효소 negative인 E. coli LE 3926-6에 형질전환하였다. 이중 E채꺄 제한효소를 사용한 것만이 glucose isomerase positive로 전환되어 xylose를 유일 탄소원으로 하여 성장하였다. 이 제조합 plasmid를 제한효소로 처리하여 본 결과 4.1Kb의 Bacillus licheniformisdb전자가 옮겨 졌음을 확인했고 여기에 제한효소 HindII와 Puv II의 절단위치가 확인되어 제한요소 지도를 작정하였다. 이 재조합 plasmid pBGI6는 연속계대 10일 후에도 매우안정하게 유지되었다. 한편 포도당 이정화 효소의 안정을 측정하여 본 바 야생숙주에 비해 약 20배의 증가를 나타냈다.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제21권6호
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• pp.542-548
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• 1993

Bacillus stearothermophilus was shown to express multiple xylanolytic enzymes including acetyl xylan esterase. Genomic DNA of the strain partially digested with HindIII was ligated into the HindIII site of pBR322, and expressed in E. coli HB101 cells in order to clone the gene for acetyl xylan esterase. One transformant among 4000 screened formed a clear zone around its colony on the LB agar supplemented with 1.0% tributyrin. The functional clone harbored the recombinant plasmid pKMG5 with an insert of 5.1kb.

• 미생물학회지
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• 제26권1호
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• pp.1-5
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• 1988

The esolation and characterization of a new type II restriction endounclease, BamI, from Bacellus macerans ATCC 8244 were described. BmaI endonuclease was partially purified by procedures of ammonium sulfate fractionation, DEAE-cellulose and phosphocellulose chromatographies. This enzume recognized one site on pBR322 DNA, two sites on Bluescribe DNA, three sites on $\lambda$DNA and no site on SV 40 DNA. The same cleavage patterns for vareius DNAs as PvuI indicated that BamI is an isoschisomer of PvuI whose recognition sequence is 5'-CGATCG-3'. The optimal pH for the BmaI endonuclease activity was about 7.0 and optimal NaCl concentration was about 100mM. Manganese ion could partially replace magnesium as a cofactor, but calcium could not at all.

• 한국식품위생안전성학회지
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• 제6권3호
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• pp.147-155
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• 1991

내열성장독소(ST)를 생산하는 병원성대장균(KS-4, KM-7, KM-12)을 설사돈으로부터 분리하고 몇가지 배양상 특성과 ST생산유전자의 성질을 조사하였다. 분리균은 succinate salts 배지의 pH가 8.5~9.0일 때 ST 생산량이 가장 많았으며, ST정제용 배지로는 succinate salts 배지가 가장 유리한 것으로 생각되어 진다. ST 생산, 축적은 분리균 모두 14~16 시간에서 가장 높았고 균체량은 배양 시작 후 20시간에 가장 많았다. ST 생산 능력이 가장 우수한 KM-7균주로 부터 ST생산 유전을 함유하는 약 80Kbp의 plasmid를 분리하고 EcoRI 제한효소를 절단한 16Kbp의 DNA절편을 pBR 322 vector DNA에 접합시킨 pKD 37 plasmid를 E. coli K-12에 형질전화시켜서 KM-7 보다 ST 생산능력이 우수한 균주(eKT 53)를 얻었다.

• KSBB Journal
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• 제5권1호
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• pp.49-58
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• 1990

대장균으로부터 alpha interferon의 생산과 분비를 유도하기 위해 대장균의 lipoprotein promoter, lactose promoter 및 operator와 lipoprotein의 signal seqquence를 가지는 vector에 alpha-IFN유전자를 cloning하여 발현 vector pIF-III-B와 vector pIF-III-C를 제작하였다.

• 한국균학회지
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• 제17권1호
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• pp.35-38
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• 1989

팽나무버섯 균사체 DNA를 대장균 프라스미드인 PBR322를 이용하여 gene library를 작성 하였다. 팽나무버섯에서 ${\beta}-isopropyl$ malate dehydrogenase 유전자 클론을 얻었으며 이 클론은 대장균 Leucine 요구성 균주를 complementation 시켰다. 이 클론의 팽나무버섯 DNA 크기는 약 lKb였으며 BamH1과 Ava 1 제한효소 절단부위를 지니고 있었다.

• Journal of Microbiology and Biotechnology
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• 제1권1호
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• pp.37-44
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• 1991

A shuttle promoter-probe vector, pEB203, was derived from pBR322, pPL703 and pUB110. Using the vector, a useful DNA fragment, 319 bp EcoRI fragment, having strong promoter activity has been cloned from Bacillus subtills chromosomal DNA. Selection was based on chloramphenicol resistance which is dependent upon the introduction of DNA fragments allowing expression of a chloramphenicol acetyl transferase gene. The nucleotide sequence of the 319 bp fragment has been determined and the putative -35 and -10 region, ribosome binding site, and ATG initiation codon were observed. This promoter was named EB promoter and the resultant plasmid which can be used as an expression vector was named pEBP313. The crystal protein gene from B. thuringiensis subsp. kurstaki HD-73 was cloned downstream from the EB promoter without its own promoter. When the resultant plasmid, pBT313, was introduced into Escherichia coli and B. subtilis, efficient synthesis of crystal protein was observed in both cells, and the cp gene expression in B. subtilis begins early in the vegetative phase. The cell extracts from both clones were toxic to Hyphantria cunea larvae.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제22권6호
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• pp.607-613
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• 1994

The Bacillus stearothermophilus arfI gene encoding a-arabinofuranosidase was isolated from the genomic library, cloned into pBR322, and subsequently transferred into the Escherichia coli HB101. The recombinant E. coli was selected from approximately 10,000 transformants screened by making use of its ability to produce a yellow pigment around the colony on the selective medium supplemented with p-nitrophenyl-$\alpha$-L-arabinofuranoside (pNPAf), a chromogenic substrate. The functional clone was found to harbor a recombinant plasmid, pKMG11 with an insertion of about 5 kb derived from the B. stearothermophilus chromosomal DNA. Identity of the arfI gene on the insert DNA was confirmed by a zymogram with 4-methylumbelliferyl-$\alpha$-L-arabinofuranoside as the enzyme substrate. The $\alpha$-arabinofuranosidase from the recombinant E. coli strain showed very high substrate specificity; the enzyme displayed high activity only with pNPAf among many other p- or $o$-nitrophenyl derivatives of several sugars, and acted only on arabinoxylan among various natural arabinose containing polysaccharides tested.

• KSBB Journal
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• 제11권4호
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• pp.431-437
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• 1996

본 연구에서는 질산염(nitrate) 존재하에서 혐기 조건이 되면 최대로 발현되는 변형된 naT 프로모터 를 대장균내에서 단백질을 대량 생산하기 위한 발현 운반체로 쓰일 수 있는지를 조사하였다. 이를 위해 용존산소농도에 따라 naT 프로모터의 유도에 영향을 미치는 염색체 fnT 유전자가 발현되지 못하는 대장 균(ES200l)에 pBR322 플라스미드에 프로모터상 의 10 지역에서 특정부위돌연변이화에 의해 con­s sensus sequence로 바핀 변형된(modified) naT 프 로모터(pMW616)가 도입되어 있는 계(pMW616/ E ES2001 )가 이용되었다. 이 변형된 naT 프로모터의 하류에는 구조유전자(structural gene) 인 질산염 환 원효소대 신에 ${\beta}$-galactosidase를 발현하는 lacZ 유 전자가 클로닝되어 있다. 이 변형된 naT 프로모터의 유도에 대한 최적조건을 찾기 위해 변형된 naT 프로 모터를 유도시키는 방법, 변형된 naT 프로모터가 최 대로 유도되는 질산엽의 농도, 말현된 $\beta$galactosid a ase의 양 빛 변형된 naT 프로모터가 유도되는 특성 들이 조사되었다. 이에 대한 실험으로부터 다음과 같은 결론들이 얻어졌다; 이 변형된 naT 프로모터로 부터 ${\beta}$-galactosidase의 말현은 질산염의 농도에 의 해서는 크게 영향을 받지 않았다. 한편, 변형된 naT 프로모터로부터 ${\beta}$-galactosidase의 말현은 성장단계 에서 대장균을 호기상태에서 OD600이 약 2.27~ 될 때까지 키우다가 유도시 혐기상태로 만드는 것이 가 장 유리하였으며, 이 때 발현된 ${\beta}$-galactosidase의 비활성도는 약 13,000 Miller unit였다. 하지만, 이 변형된 naT 프로모터는 이켓을 유도시키기 전에도 발현된 ${\beta}$-galactosidase의 비활성도가 약 6,000 M Miller unit로 매우 높음으로 인하여 이 변형된 naT 프로모터는 원하는 단백질을 유도성보다는 구성적으 로 발현시키는데 더 적합한 프로모터였다.

• 한국미생물생명공학회:학술대회논문집
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• 한국미생물생명공학회 1986년도 추계학술대회
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• pp.516.2-516
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• 1986

DNA subfragments, sopA, sopB, and sopC supporting stable maintenance of an oriC plasmid, were derived from mini-F plasmid DNA (EcoRI restriction fragment, f5) after digestion with restriction endonucleases, and cloned in vector plasmid pBR322. The recombinant plasmid obtained were introduced into E. coli KY7231 and E. coli CSR603, and proteins specified by the mini-F fragments were analysed by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. Two proteins encoded by the F fragments were detected, having molecular weights of 41,000 and 37.000. The sopA protein (41K) encoded by a plasmid pXX288 was observed in the cytoplasm, whereas the sopB protein (37K) encoded by a plasmid pXX157 was in the membrane fraction. There was no novel protein band detected in the cell with a plasmid pXX300, which contained sopC fragment. Gene products of a plasmid pXX167, which is comprised of sopA, sopB, and sopC, were not detectable. Fluorography after one and two dimensional gel electrophoresis of the lysates showed that these two proteins were overproduced in the cells which were allowed to incorporate radioactive amino acid after plasmid amplification by chloramphenicol treatment. The isoelectric points of the sopA and sepB proteins were 6.6 and 7.0, respectively.