The gene for glycoprotein B (gB2) of HSV-2-strain G was subcloned, sequenced, recombinated into the lacZ-HcNPV, expressed in insect cells, and compared with the homologous gene of other HSV-2 strains. The ORF of the gB2 gene was 2,715 bp. The overall nucleotide sequence homology of te gB2 gene compared ith that of the two previously reported HSV-2 strains appeared to be over 98%. A recombinant virus named Baculo-gB2 protein in insect cells. The recombination was confirmed by a PCR and the expression was demonstrated by radio immunoprecipitation. Insect cells infected with the Baculo-gB2 virus synthesized and processed gB2 with approximately 120 kDa in the cells, and then secreted it into the culture media, where it reacted with a nomoclonal antibody to gB2. The gB2 polypeptide contained two main hydrophobic regions (a signal sequence from 1 to 23 amino acid residues, and a membrane anchor sequence from aa 745 to 798), eight N-glycosylation sites evenly distributed, and was rich in alanine (11.2%). Antibodies to this recombinant protein that were raised in mice recognized the viral gB2 and neutralized the infectivity of the HSV-2 in vitro. There results show that the gB2 protein was successfully porduced in insect cells and could be used to raise a protective neutralizing antibody. Accordingly, this particular recombinant protein may be useful in the development of a subunit vaccine.
2-Hydroxy-6-oxo-6phenylhexa-2,4-dienoate (HOPDA) hydrolase catalyzes the hydrolytic cleavage of HOPDA to bemzpate and 2-hydroxypenta-2, 4-dienoate (HPD) during microbial catabolism of biphenyl and polychlorinated biphenyls. A HOPDA hydrolase gene (pcbD) was isolated from the genomic library of Pseudomonas sp. P20 and designated as pCNUO1201; a 7.5-kb XbaI DNA fragment from Pseudomonas sp. P20 was inserted into the pBluescript SK(+) XbaI site. E. coli HB101 harboring pCNU1201 exhibited HOPDA hydrolase activity. The open reading frame (ORF) corresponding to the pcbD gene consisted of 855 base pairs with an ATG initiation codon and a TGA termination codon. The ORF was preceded by a rebosome-binding sequence of 5'-TGGAGC-3' and its G+C content was 55 mol%. The pcbD gene of Pseudomonas sp. P20 was located immedeately downstream of the pcbC gene encoding 2,3- dihydroxybiphenyl 1,2-dioxygenase, and approximately 4-kb upstream of the pcbE gene encoding HPD hydratase. The pcbK gene was able to encode a polypeptide with a molecular weight of 31,732 containing 284 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of the HOPDA hydrolase of Pseudomonas sp. P20 exhibited high identity (62%) with those of the HOPDA hydrolases of P. putida KF715, P. pseudoalcaligenes KF707, and Burkholderia cepacia LB400, and also significant homology with those of other hydrolytic enzymes including esterase, transferase, and peptidase.
This report provides the complete nucleotide sequences of the full-length cDNA encoding squalene synthase (SQS) and its genomic DNA sequence from a triterpene-producing fungus, Ganoderma lucidum. The cDNA of the squalene synthase (SQS) (GenBank Accession Number: DQ494674) was found to contain an open reading frame (ORF) of 1,404 bp encoding a 468-amino-acid polypeptide, whereas the SQS genomic DNA sequence (GenBank Accession Number: DQ494675) consisted of 1,984 bp and contained four exons and three introns. Only one gene copy was present in the G. lucidum genome. The deduced amino acid sequence of Ganoderma lucidum squalene synthase (GI-SQS) exhibited a high homology with other fungal squalene synthase genes and contained six conserved domains. A phylogenetic analysis revealed that G. lucidum SQS belonged to the fungi SQS group, and was more closely related to the SQS of U. maydis than to those of other fungi. A gene expression analysis showed that the expression level was relatively low in mycelia incubated for 12 days, increased after 14 to 20 days of incubation, and reached a relatively high level in the mushroom primordia. Functional complementation of GI-SQS in a SQS-deficient strain of Saccharomyces cerevisiae confirmed that the cloned cDNA encoded a squalene synthase.
streptomyces coelicolor A3(2)의 acetyl xylan esterase 유전자를 Escherichia coli께 클로닝하여 그 발현양상을 조사하였다. 이를 위하여 유전자 전체 DNA를 PCR증폭을 통하여 제조하였다. PCR산물의 염기서열을 분석한 결과 1,008개의 nucleotide로 구성된 하나의 open reading frame이 존재함을 확인하였고, 이것은 335개의 아미노산으로 이루어진 약 38 kDa의 단백질을 생성할 것으로 예측할 수 있었다. 이 유전자의 염기 서열은 streptomyces lividans의 acetyl xylan esterase와 98%의 상동성을 가졌다. 그런데 Escherichia coli (pLacl)에서 IPTG유도에 의해 두가지의 acetyl xylan esterase가 발현되었으며 각각의 분자량은 38 kDa과 34 kDa이었다. 이중에서 38 kDa의 단백질은 N-말단의 signal peptide를 포함한 전체 단백질이고,34 kDa의 단백질은 41번과 42번의 두 알라닌 잔기사이의 펩티드 결합이 끊어져 생산된 것으로 추정되었다.
Potato virus Y (PVY) is one of the most important viruses in many field crops in Korea. In this study, 31 PVY isolates were isolated from infected potato (Solanum tuberosum), tobacco (Nicotiana tabacum), pea (Pisum sativum), and weeds (Veronica persica, Lamium amplexicause and Capsella bursa-pastoris) showing different mosaic symptoms in Jeonbuk, Chungnam, Gangwon, and Gyeongbuk areas in Korea. The 640 nucleotide region containing the C-terminal portion of coat protein (CP) gene and 3'non-translated region (NTR) was amplified by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) using PVY-specific oligonucleotide primers. Sequence analyses of the amplified DNA fragments showed that the C-terminal portion of CP gene was not significantly different from that of previously reported PVY strains from potato (PVY-OK and -T) and tobacco (PVY-VN) in Korea. Homologies of the deduced CP amino acid sequences were 93.3-99.0% to corresponding regions of the other PVY strains including PV $Y^{N}$, PV $Y^{o}$ , PV $Y^{OK}$ , PV $Y^{T}$ , and PV $Y^{VN}$ . In contrast the sequences located at the 3'-NTR showed more diverse sequence homologies (76.4-99.7%). These results indicate that the C-terminal portion of the CP gene was relatively conserved while sequences at the 3'NTR were more diverse and variable over the host species and the regions where they were isolated.e isolated.
Weeds are widely grown in the field and are infected by many viruses. A survey was conducted to identify viruses infecting weeds in Korea. Virus-infected weed samples including Rorippa indica (L.) Hiern, R. islandica (Oed.) Bord, Crepidiastrum denticulatum (Houtt.) Pak & Kawanno, Achyranthes japonica (Miq.) Nakai, and Chrysanthemum boreale (Makino) Makino were collected in Kyonggi Province. These weeds were grown in the greenhouse and were isolated on 10 test plants. Several virus isolates were isolated fron infected tissues and were further studied by host range assay, serological test, electron microscopy (EM), reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and sequencing. Each isolated virus strain was mechanically transmitted to weeds and various hosts including Nicotiana spp., Brassica spp., Vigna unguiculata, Capsicum annuum, and Cucumis sativus and showed systemic mosaic, vein clearing, necrosis, mottle, malformation, chlorosis, and/or death of host plants in some cases. Each virus was then purified using infected leaves and observed by EM. From these results three viruses were isolated and identified as Turnip mosaic virus (TuMV), Broad bean wilt virus (BBWV), and Cucumber mosaic virus (CMV). RT-PCR using virus-specific oligonucleotide primers and the cloning were conducted to determine the nucleotide sequences of coat proteins of the three viruses their amino acid sequence were deduced. The amino acid sequence homologies were about 92.7 to 99.7%, 96.2 to 97.7%, and 93.9 to 98.6% to other reported TuMV, BBWV, and CMV strains, respectively. These results suggest that many weeds may serve as primary inoculum source of diseases caused by TuMV, BBWV, CMV and that the management of these viral diseases can be achieved through weed control.
Kim, Young-Woo;Jang, Se-Hwan;Hong, Bum-Shik;Lim, Wang-Jin;Kim, Chan-Wha;Sung, Ha-Chin;Chang, Hyo-Ihl
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제9권4호
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pp.457-463
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1999
The physical map of bacteriophage $\PhiFC1$ DNA was constructed with the restriction endonucleases SalI, BamHI, EcoRI, XbaI, and AvaI. The 40.5-kb DNA restriction map is shown to be circularly permuted representing the headful packaging mechanism of the phage. The DNA restriction fragments containing the packaging initiation site(pac) was localized on the restriction map and the nucleotide sequences of the region were analyzed. Four open reading frames (ORFs), following one another with the same orientation, were found at the region. The 2nd ORF (ORF-ts) has significant amino acid sequence homologies to the previously known terminase small subunits of other bacteriophages. The putative terminase small subunit gene has a presumptive NTP-hydrolysis motif and a helix-turn-helix motif. The cleavage site for the first round of packaging was found to be located at the coding sequence of the putative terminase small subunit gene. The fourth ORF, even if partially sequenced, has a good amino acid sequence homology to the portal vertex proteins of other bacteriophages representing the evolutionarily conserved arrangements of genes near the pac site of this bacteriophage, $\PhiFC1$.
Kim, Kab-Sig;Park, Ui-Sun;Choi, Kwan-Sam;Choi, Kwang-Tae
Journal of Ginseng Research
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제19권2호
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pp.127-133
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1995
The complete open reading frame (ORF) of o-subunit of the $F_1$ ATP synthase (atPA) in Korean ginseng mitochondria was identified by the sequence similarity with atPA genes in other plant mitochondria. The sequence alignment showed that the common translation initiation codon, ATG, in plant genes was replaced with GTG valid codon in Korean ginseng. The atPA gene from GTG to TGA termination codon was 1524 nucleotides long, and the sequence homology of nucleotides and deduced amino acids revealed high values of 92~97%. A deletion event of 6 nucleotides was observed at the 1468th nucleotide from the GTG in Korean ginseng, in contrast to that at the 1450th in other plants such as pea, common bean, soybean, sugar beet, and radish. An unidentified open reading frame (on7) was observed upstream of atmA ORF. No other ATG as an initiation codon was detected in the region between off and atmA ORF in Korean ginseng, although a pyrimidine cluster "TTTTCTTTT" was located in this region as in Oenothera and maize genes. It could be supposed that GTG codon in atpA gene of Korean ginseng mitochondria would act as an initiation codon as in microbial genes.ial genes.
Co-infection with two virus species was previously reported in some cactus plants. Here, we showed that Notocactus leninghausii f. cristatus can be co-infected with six different viruses: cactus mild mottle virus (CMMoV)-Nl, cactus virus X (CVX)-Nl, pitaya virus X (PiVX)-Nl, rattail cactus necrosis-associated virus (RCNaV)-Nl, schlumbergera virus X (SchVX)-Nl, and zygocactus virus X (ZyVX)-Nl. The coat protein sequences of these viruses were compared with those of previously reported viruses. CMMoV-Nl, CVX-Nl, PiVX-Nl, RCNaV-Nl, SchVX-Nl, and ZyVX-Nl showed the greatest nucleotide sequence homology to CMMoV-Kr (99.8% identity, GenBank accession NC_011803), CVX-Jeju (77.5% identity, GenBank accession LC12841), PiVX-P37 (98.4% identity, GenBank accession NC_024458), RCNaV (99.4% identity, GenBank accession NC_016442), SchVX-K11 (95.7% identity, GenBank accession NC_011659), and ZyVX-B1 (97.9% identity, GenBank accession NC_006059), respectively. This study is the first report of co-infection with six virus species in N. leninghausii f. cristatus in South Korea.
한국인 환자의 혈청에서 분리한 HGV 5'-UTR영역의 염기서열을 결정하였다. 이들 염기서열을 이미 보고된 서열들과 비교한 결과, 한국 분리주들은 일본 분리주들과 더 높은 상동성을 나타내어 지리적 격리에 의해 HGV의 염기서열의 변이가 축적되었음을 알 수 있다. 흥미롭게도 동일 지역에서 분리된 HGV 분리주들 간에는 고도로 보존되어 있어 HGV의 분류에 이용가능한 세 개의 영역이 5'-UTR에서 발견되었다. 이들 그룹-특이적 영역에 기초하여, 24 HGV 분리주들을 5개의 그룹으로 분류할 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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