Jeong, Ji Yeon;Mo, Eun Jin;Hwang, Bang Yeon;Lee, Mi Kyeong
Korean Journal of Pharmacognosy
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v.46
no.1
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pp.1-5
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2015
In the course of screening tyrosinase inhibitory activity, EtOAc-soluble fraction of Nelumbinis Semen (Seeds of Nelumbo nucifera) showed significant inhibition. Further fractionation of the EtOAc-soluble fraction resulted in 12 compounds, which were identified as 4-(hydroxymethyl)phenol (1), tyrosol (2), 4-(hydroxymethyl)benzaldehyde (3), 4-hydroxybenzoic acid (4), 4-(2-methoxyvinyl)benzene-1,2-diol (5), 2,6-dihydroxybenzoic acid (6), (2R-trans)-2,3-dihydro-3,5,7,8-tetrahydroxy-2-(4-hydroxyphenyl)-4H-1-benzopyran-4-one (7), (+)-catechin (8), elephantorrhizol (9), (+)-dehydrovomifoliol (10), (-)-boscialin (11) and uridine (12). Compounds 5 and 7 were first reported from this plant. Among the isolated compounds, compound 7 showed strong inhibition on tyrosinase activity with mixed mechanism of competitive and noncompetitive inhibition.
In order to extend our understanding on the multiple inhibition enzyme kinetics, a general equation of an enzyme reaction in the presence of two different reversible inhibitors was derived by what we call "match-box mechanism" under the combined assumption of steady-state and quasi-equilibrium for inhibitor binding. Graphical methods were proposed to analyze the multiple inhibition of an enzyme by any given sets of different inhibitors, i.e., competitive, noncompetitive, and uncompetitive inhibitors. This method not only gives an interaction factor $({\alpha})$ between two inhibitors, but also discerns ${\alpha}_1$ and ${\alpha}_2$ with and without substrate binding, respectively. The factors involved in the dissociation constants of inhibitors can also be evaluated by the present plot. It is also shown that the present kinetic approach can be extended to other forms of activators or hydrogen ions with some modification.
Biodegradative threonine dehydratase was purified to homogeneity from Serratia marcescens ATCC 25419 by streptomycin sulfate treatment, Sephadex G-200 gel filtration chromatography followed by AMP-Sepharose 4B affinity chromatography. The molecular weight of the purified enzyme was 118,000 by fast protein liquid chromatography using superose 6-HR. The enzyme was determined to be a homotetrameric protein with subunit molecular weights of 30,000 by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. The enzyme was inhibited by ${\alpha}-Keto$ acids and their derivatives such as ${\alpha}-ketobutyrate$, pyruvate, glyoxlyate, and phosphoenol pyruvate, but not by ${\alpha}-aminobutyrate$ and ${\alpha}-hydroxybutyrate$. The inhibition of the enzyme by pyruvate and glyoxylate was observed in the presence of AMP. The inhibitory effect of glyoxylate was decreased at high enzyme concentration, whereas the inhibition by pyruvate was independent of the enzyme concentration. The kinetics of inhibition of the enzyme by pyruvate and glyoxylate revealed a noncompetitive and mixed-type inhibition by the two inhibitors with respect to L-threonine and AMP, respectively.
The dibucaine number (DN) was determined for serum cholinesterase (EC 3.1.1.8, SChE) in plasma samples. The ones with a DN of 79-82 were used, because they had the "usual" SChE variant. The enzyme was assayed colorimetrically by the reaction of 5,5'-dithiobis-[2-nitrobenzoic acid] (DTNB) with the free sulfhydryl groups of thiocholine that were produced by the enzyme reaction with butrylthiocholine (BuTch) or acetylthiocholine (AcTch) substrates, and measured at 412 nm. Dibucaine, a quaternary ammonium compound, inhibited SChE to a minimum within 2 min in a reversible manner. The inhibition was very potent. It had an $IC_{50}$ of $5.3\;{\mu}M$ with BuTch or $3.8\;{\mu}M$ with AcTch. The inhibition was competitive with respect to BuTch with a $K_i$ of $1.3\;{\mu}M$ and a linear-mixed type (competitive/noncompetitive) with respect to AcTch with inhibition constants, $K_i$ and $K_I$ of 0.66 and $2.5\;{\mu}M$, respectively. Dibucaine possesses a butoxy side chain that is similar to the butryl group of BuTch and longer by an ethylene group from AcTch. This may account for the difference in inhibition behavior. It may also suggest the existence of an additional binding site, other than the anionic binding site, and of a hydrophobic nature.
The effect of Sam Hwa San on the Na-K-ATPase activity was evaluated in microsomal fraction prepared from rabbit cerebral cortex to determine whether Sam Hwa San affects Na-K-ATPase activity of nervous system. Sam Hwa San markedly inhibited the Na-K-ATPase activity in a dose-dependent manner with an estimated $I_{50}$ of 0.12%. Optimal pH for the Na-K-ATPase activity was at 7.5 in the presence or absence of Sam Hwa San. The degree of inhibition by the drug more increased at acidic and alkalic pHs than neutral pH. Kinetic studies of substrate and cationic activation of the enzyme indicate classic noncompetitive inhibition fashion for ATP, Na and K, showing significant reduction in Vmax without a change in Km. Dithiothreitol, a sulfhydryl reducing reagent, partially protects the inhibition of Na-K-ATPase activity by Sam Hwa San. Combination of Sam Hwa San and ouabain showed higher inhibition than cumulative inhibition. These results suggest that Sam Hwa San inhibits Na-K-ATPase activity in central nervous system by reacting with, at least a part, sulfhydryl group and ouabain binding site of the enzyme protein, but with different binding site from those of ATP, Na and K.
Effect of hydroquinone (HQ) on rumen urease activity was studied. Hydroquinone at concentrations of 0.01 ppm, 0.1 ppm, 1 ppm, and 10 ppm inhibited urease activity of intact rumen microbes in vitro by 25%, 34%, 55% and 64% respectively. In the presence of low concentrations of $\beta$-mercaptoethanol, rumen urease could be solubilized and partially purified. The Km for the enzyme was $2{\times}10^{-3}$ M with Vmax of $319.4{\mu}moles/mg$ min. The kinetics of inhibition with partially purified rumen urease was investigated. The result showed that the inhibitory effect was not eliminated by increasing urea concentrations indicating a noncompetitive effect in nature with an inhibition constant $1.2{\times}10^{-5}$ M. Hydroquinone at the concentration of 10 ppm produced 64% urease inhibition, did not affect ruminal total dehydrogenase and proteolytic enzyme (p>0.05), but increased cellulase activity by 28% (p<0.05) in vitro. These results indicated that hydroquinone was a effective inhibitor of rumen urease and could effectively delay urea hydrolysis without a negative effect. The inhibitor appeared to offer a potential to improve nitrogen utilization by ruminants fed diets containing urea.
This study was carried out to evaluate the effect of Samhwasan on the Na-K-ATPase activity of heart muscle. The Na-K-ATPase activity was prepared from rabbit heart ventricles. Samhwasan markedly inhibited the Na- K - ATPase activity in a dose-dependent manner with an estimated $I_{50}$ of 0.56%. Hill coefficient was 1.70, indicating that the enzyme has more than one binding site for the Samhwasan. Inhibition of enzyme activity by Samhwasan increased as pretreatment time was prolonged. Inhibition by the drug was not affected by a change in enzyme protein concentration. Kinetic studies of substrate activation of the enzyme indicated classical noncompetitive inhibition, showing significant reduction in Vmax without a change in Km value. Inhibitory effect by Samhwasan was not altered by changes in concentration of $Mg^{2+}$, $Na^+$ or $K^+$, dithiothreitol. a sulfhydryl reducing reagent, did not protect the inhibition of Na-K-ATPase activity by Samhwasan combination of Samhwasan and ouabain showed a cumulative inhibition fashion. These results suggest that Samhwasan inhibits Na-K-ATPase activity of heart ventricles with an unique binding site different from that of ATP, $Mg^{2+}$, $Na^+$ or $K^+$ and ouabain.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.9
no.1
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pp.59-73
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1980
A detailed procedure was described for the isolation of cratine kinase (ATP-Creatine phosphotransferase, E. C. 2. 7. 3. 2.) from the muscle of the snake Bungarus fasciatus. The original isolation procedure of Kuby et al. for the rabbit muscle enzyme has been modified and extended to include a chromatographic step. The properties of the enzyme have been investigated and kinetic constants for the reverse reactions determined as the followings: 1) A molecular weight of the enzyme was determined by gel filteration on Sephadex G-100 and by electrophoresis on SDS-polyacrylamide was 86,000. 2) Two reactive sulphydryl groups were detected with dithiobis nitrobenzoic acid (DTNB). 3) The nucleotide substrate specificity in the reverse reaction was determined as ADP*2'-dADP>GDP>XDP>UDP with magnesium as the activating metal ion. 4) The order of the metal specificity in the reverse reaction Mg>Mn>$Ca{\sim}Co$ was determined with ADP as substrate. 5) A detailed kinetic analysis was carried out in the reverse direction with $MaADP^-$ as the nucleotide substrate. Initial velocity and product inhibition studies($MaADP^{2-}$ competitive with respect to MgADP- and noncompetitive with respect to $N-phosphorycreatine^{2-}$ ; Creatine competitive with respect to $N-phosphorycreatine^{2-}$ and noncompetitive with respect to Ma $ADP^-)$ indicated that the reaction obeyed a sequential mechanism of the rapid equilibrium random type.
Salicylate is involved in the induction of pathogen-related proteins and plant defense response. The effects of salicylate on the activity isoperoxidase $A_3$ from tobacco callus (Nicotiana tabacum L.) and the protection against the enzyme inactivation by salicylate in the presence of $Fe^{2+}$ were examined. About 20% and 85% activity losses of peroxidase occurred at 0.48 mM and 0.6 mM salicylate, respectively, showing that isoperoxidase $A_3$ was inactivated by salicylate. The inactivation occurred depending on pH and showed noncompetitive inhibition mode. Moreover, inactivation of the enzyme by salicylate was completely protected in the presence of $Fe^{2+}$. Apoperoxidase without heme moiety was constructed and the effects of various metal ions on the recovery of enzyme activities were investigated. More than 80% of the activity was reconstituted by the addition of $Fe^{2+}$ or hemin. However, the enzyme activity was not recovered by $Cu^{2+},\;Zn^{2+},\;Co^{2+},\;or\;Mn^{2+}$.
The effects of divalent cations, $Hg^{2+}, Cu^{2+}, Pb^{2+}, Cd^{2+}$, and $Mn^{2+}$ on the total ATPase activity of the fragmented sarcoplasmic reticulum isolated from rabbit skeletal muscle were investigated. The inhibitory effects of the cations on the enzyme activity increased as the concentrations of the ions increased with the order of efficiency of $Hg^{2+}$ > $Cu^{2+}$ > $Pb^{2+}$ > $Cd^{2+}$ > $Mn^{2+}$ in the concentration range between 10 and 500$\mu$M. The 50% inhibition for each ion was almost identical with the inhibition constant (Ki) value for each ion. The Ki's were 10, 30 130, and 350$\mu$M for $Hg^{2+}, Cu^{2+}, Pb^{2+}, and Cd^{2+}$, respectively. $Mn^{2+}$ seemed to be an activator at lower concentrations and an inhibitor at higher concentrations. The presence of the cations did not change the Km values, suggesting that the ions act as a reversible noncompetitive inhibitor on the FSR ATPase. The energy of activation of the enzyme was aproximately 19 Kcal/mole. The presence of the ions decreased the value slightly. A possible mechanism for the reversible noncompetitive inhibitory effect of the cations was discussed.
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