The effect of carbon sources on nisin Z biosynthesis in Lactococcus lactis subsp. lactis A164 was studied in batch culture using M17 broth containing different carbon sources. Among the eleven carbon sources tested, glucose, sucrose, and lactose were suitable carbon sources for cell growth of L. lactis A164. In particular, cells grown on lactose produced at least 3-fold greater amount of nisin Z than those on other carbon sources. Galactose resulted in less amount of cell mass than did sucrose or glucose, but gave a higher level of nisin Z activity. Northern blot analysis revealed. that lactose increased the transcription of the nisZ pre-peptide gene. Although galactose was less efficient than lactose, it increased the transcription of nisZ along with a higher level of nisin Z than did sucrose and glucose. These results suggest that the increased nisin Z production is correlated with the induction of nisZ by lactose and galactose. Among all the carbon sources tested, no remarkable differences were observed in nisRK and nisFEG transcripts, indicating that the lactose- or galactose-mediated induction is unique to the nisZ promoter.
A novel bacteriocin produced by Streptococcus parauberis Z49 strain was characterized and efficiently extracted from fermented cultures by use of aqueous two-phase systems. The nisin-like bacteriocin, which was active even after a heat treatment at $121^{\circ}C$ for 15 min and in the broad pH range from 2 to 12, showed inhibition of bacterial growth of Micrococcus luteus, Lactobacillus spp., Lactobacillus fermentum, Enterococcus faecium, Listereia monocytogenes, and Pseudomonas fluorescens. Optimal conditions of PEG 600/$Na_2SO_4$ aqueous two-phase systems for the simple and rapid extraction of a novel bacteriocin were determined to be PEG 600 15%, $Na_2SO_4$ 30%, and NaCl 8%, where the bacteriocin was concentrated in PEG layer.
Lactobacillus kefiranofaciens contains two types of β-galactosidase, LacLM and LacZ, belonging to different glycoside hydrolase families. The difference in function between them has been unclear so far for practical application. In this study, LacLM and LacZ from L. kefiranofaciens ATCC51647 were cloned into constitutive lactobacillal expression vector pMG36e, respectively. Furtherly, pMG36n-lacs was constructed from pMG36e-lacs by replacing erythromycin with nisin as selective marker for food-grade expressing systems in Lactobacillus plantarum WCFS1, designated recombinant LacLM and LacZ respectively. The results from hydrolysis of o-nitrophenyl-β-galactopyranoside (ONPG) showed that the β-galactosidases activity of the recombinant LacLM and LacZ was 1460% and 670% higher than that of the original L. kefiranofaciens. Moreover, the lactose hydrolytic activity of recombinant LacLM was higher than that of LacZ in milk. Nevertheless, compare to LacZ, in 25% lactose solution the galacto-oligosaccharides (GOS) production of recombinant LacLM was lower. Therefore, two β-galactopyranosides could play different roles in carbohydrate metabolism of L. kefiranofaciens. In addition, the maximal growth rate of two recombinant strains were evaluated with different temperature level and nisin concentration in fermentation assay for practical purpose. The results displayed that 37℃ and 20-40 U/ml nisin were the optimal fermentation conditions for the growth of recombinant β-galactosidase strains. Altogether the food-grade Expression system of recombinant β-galactosidase was feasible for applications in the food and dairy industry.
Bacteriocin-producing lactic acid bacteria were isolated from kimchi. One isolate producing the most efficient bacteriocin was identified and named Lactococcus lactis B2, based on the biochemical properties and 16S rDNA sequences. The B2 bacteriocin inhibited many different Gram positive bacteria including Lactococcus, Lactobacillus, Leuconostoc, Enterococcus, Streptococcus, and Staphylococcus, but did not inhibit Gram-negative bacteria. The bacteriocin was maximally produced at temperatures between $25^{\circ}C\;and\;30^{\circ}C$ and at the initial pH of 7.0. Ninety $\%$ of the activity remained after 10 min of heat treatment at $121^{\circ}C,\;and\;100\%$, after 1 h exposure to organic solvents. The bacteriocin was purified from culture supernatant by ammonium sulfate precipitation, CM Sepharose column chromatography, ultrafiltration, and finally, by reverse-phase HPLC. A 1.58-kb fragment was amplified from B2 chromosome by using a primer set designed from the published nisA sequence. Sequencing result showed that the fragment contained the whole nisZ and 5' portion of nisB, whose gene product was involved in postmodification of nisin. The upstream sequence, however, was completely different from those of reported nisin genes.
Lactococcus lactis A164 is a nisin Z-producing strain isolated from kimchi. Its antimicrobial spectrum has been found to be active against most Gram-positive bacteria tested, yet inactive against Gram-negative bacteria [3]. Accordingly, to overcome this drawback, the current study attempted to express human $\beta$-defensin-l (hBD-l), which kills both Gram-positive and Gram-negative bacteria in L. lactis AI64. When the hBD-l cDNA was introduced using a nisin Z-controlled expression cassette, the L. lactis A164 transformants grew very poorly, due to the bactericidal effect of the expressed hBD-l against the transformants. Therefore, a gene fusion system was designed to reduce the toxicity of the expressed heterologous protein against the host cells. As such, the hBD-l gene was fused to the DsbC- Tag of pET -40b(+), then introduced to L. lactis A 164. The transformants expressed an intracellular 35.6-kDa DsbC-hBD-l fusion protein that exhibited slight activity against the host cells, yet not enough to strongly inhibit the cell growth. To obtain the recombinant hBD-l, the DsbC-hBD-l fusion protein was purified by nickel-affinity column chromatography, and the DsbC-Tag removed by cleaving with enterokinase. The cleaved mature hBD-l exhibited strong bactericidal activity against E. coli JM109, indicating that the recombinant L. lactis A 164 produced a biologically active hBD-I. In addition, the recombinant L. lactis A 164 was also found to produce the same level of nisin Z as the wild-type.
Lactococcus lactis NK34, isolated from jeotgal (Korean traditional fermented fish), produces bacteriocin against bovine mastitis pathogens such as Staphylococcus aureus 7, S. aureus 8, Staphylococcus chromogenes 10, S. chromogenes 19, Staphylococcus hominis 9, Streptococcus uberis E290, Enterococcus faecium E372, Streptococcus agalactiae ATCC 13813, Pseudonocardia autotrophia KCTC 9455, and Staphylococcus simulans 78. Lacticin NK34 was inactivated by protease XIV but not by protease IX, protease XIII, proteinase K, $\acute{a}$-chymotrypsin, trypsin, and pepsin. Also, lacticin NK34 was stable over a pH range of 2 to 9 for 4 hr and withstood exposure to temperatures of 30-$100^{\circ}C$ for 30 min. Lacticin NK34 showed bactericidal effects against S. simulans 78. This bacteriocin was purified using ammonium sulfate precipitation, ion exchange chromatography, ultrafiltration, and hydrophobic chromatography. Tricin-SDS-PAGE of purified bacteriocin gave the same molecular weight (3.5 kDa) as nisin. The gene encoding this bacteriocin was amplified by PCR using nisin gene-specific primers. It showed similar sequences to this nisin Z gene. These results indicate that lacticin NK34 is a nisin-like bacteriocin, and could be used as an antimicrobial alternative for livestock.
Although microorganisms are, in fact, the most diverse and abundant type of organism on Earth, the ecological functions of microbial populations remains poorly understood. A variety of bacteria including marine Vibrios encounter numerous ecological challenges, such as UV light, predation, competition, and seasonal variations in seawater including pH, salinity, nutrient levels, temperature and so forth. In order to survive and proliferate under variable conditions, they have to develop elaborate means of communication to meet the challenges to which they are exposed. In bacteria, a range of biological functions have recently been found to be regulated by a population density-dependent cell-cell signaling mechanism known as quorum-sensing (QS). In other words, bacterial cells sense population density by monitoring the presence of self-produced extracellular autoinducers (AI). N-acylhomoserine lactone (AHL)-dependent quorum-sensing was first discovered in two luminescent marine bacteria, Vibrio fischeri and Vibrio harveyi. The LuxI/R system of V. fischeriis the paradigm of Gram-negative quorum-sensing systems. At high population density, the accumulated signalstrigger the expression of target genes and thereby initiate a new set of biological activities. Several QS systems have been identified so far. Among them, an AHL-dependent QS system has been found to control biofilm formation in several bacterial species, including Pseudomonas aeruginosa, Aeromonas hydrophila, Burkholderia cepacia, and Serratia liquefaciens. Bacterial biofilm is a structured community of bacterial cells enclosed in a self-produced polymeric matrix that adheres to an inert or living surface. Extracellular signal molecules have been implicated in biofilm formation. Agrobacterium tumefaciens strain NT1(traR, tra::lacZ749) and Chromobacterium violaceum strain CV026 are used as biosensors to detect AHL signals. Quorum sensing in lactic acid bacteria involves peptides that are directly sensed by membrane-located histidine kinases, after which the signal is transmitted to an intracellular regulator. In the nisin autoregulation process in Lactococcus lactis, the NisK protein acts as the sensor for nisin, and NisR protein as the response regulator activatingthe transcription of target genes. For control over growth and survival in bacterial communities, various strategies need to be developed by which receptors of the signal molecules are interfered with or the synthesis and release of the molecules is controlled. However, much is still unknown about the metabolic processes involved in such signal transduction and whether or not various foods and food ingredients may affect communication between spoilage or pathogenic bacteria. In five to ten years, we will be able to discover new signal molecules, some of which may have applications in food preservation to inhibit the growth of pathogens on foods.
Reina, Asa;Tanaka, A.;Uehara, A.;Shinzato, I.;Toride, Y.;Usui, N.;Hirakawa, K.;Takahashi, J.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.23
no.6
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pp.700-707
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2010
Effects of protease-resistant antimicrobial substances (PRA) produced by Lactobacillus plantarum and Leuconostoc citreum on rumen methanogenesis were examined using the in vitro continuous methane quantification system. Four different strains of lactic acid bacteria, i) Lactococcus lactis ATCC19435 (Control, non-antibacterial substances), ii) Lactococcus lactis NCIMB702054 (Nisin-Z), iii) Lactobacillus plantarum TUA1490L (PRA-1), and iv) Leuconostoc citreum JCM9698 (PRA-2) were individually cultured in GYEKP medium. An 80 ml aliquot of each supernatant was inoculated into phosphate-buffered rumen fluid. PRA-1 remarkably decreased cumulative methane production, though propionate, butyrate and ammonia N decreased. For PRA-2, there were no effects on $CH_4$ and $CO_2$ production and fermentation characteristics in mixed rumen cultures. The results suggested that PRA-1 reduced the number of methanogens or inhibited utilization of hydrogen in rumen fermentation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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