To study the effects of ibaraki virus on preimplantation mouse embryos collected from prepubertal ICR and BALB/cByJ mice (30~40days old) by superovulation, zona pellucidaintact(ZPI) or free(ZPF) embryos(n=774) of 4- to 8-cell and morulae were exposed to $10^{5.8}$$TCID_{50}$ of the virus up to 96 hours. The embryos were examined morphologically by observing the degeneration and hatching rates, and virologically and immunologically by determining the presence of infection with the virus, in addition, the effect of washing the embryos to remove virus possibly attached to was also investigated. The ZPI 4- to 8-cell embryos and morulae exposed to the virus showed considerably higher degeneration rate than those not exposed, for 96, and for 72 to 96 hours, respectively(p<0.01). The ZPF 4- to 8-cell embryos and morulae exposed to the virus showed considerably higher degeneration rates than those not exposed, throughout the whole culture hours in vitro (p<0.01). The ZPI 4- to 8-cell embryos and morulae not exposed to the virus showed considerably higher rates of hatched blastocyst than those exposed (p<0.01). The virus infection rates of the ZPF 4- to 8-cell embryos and morulae were significantly higher than those of the ZPI embryos according to cell culture system. The viral antigen was detected exclusively on the zona pellucida of ZPI embryos, while the antigen was evenly distributed in the blastomeres of ZPF embryos by the immunofluorescent assay. In the ZPI embryos exposed to ibaraki virus, the virus was detected in the two times-washing groups, but not in the ten times-washing groups. The results indicated that zona pellucida of murine embryos would provide an effective protection and that ten times-washing of the ZPI embryos previously exposed to the virus was effective to remove virus from the embryos.
Pluripotent embryonic stem cells can differentiate into beating cardiomyocytes with proper culture conditions and stimulants via embryo-like aggregates. We describe here the use of mouse embryonic stem (mES03) cells as a reproducible differentiation system for cardiomyocyte. mES03 cells growing in colonies were dissociated and allowed to re-aggregated in suspension [embryoid body (EB) formation〕. To induce cardiomyocytic differentiation, cells were exposed to 0.75% dimethyl sulfoxide (DMSO) during EB formation for 4 days and then another 4 days without DMSO (4+/4-). Thus treated EB was plated onto gelatin-coated dishes for differentiation. Spontaneously contracting colonies which appeared in approximately 4~5 days upon differentiation were mechanically dissected, enzymatically dispersed, plated onto coverslips, and then incubated for another 48~72 hrs. By RT-PCR, robust expression of cardiac myosin heavy chain $\alpha$, cardiac muscle heavy polypeptide 7 $\beta$($\beta$-MHC), cardiac transcription factor GATA4, and skeletal muscle-specific $\alpha$$_1$-subunit of the L-type calcium channel ($\alpha$$_1$CaC $h_{sm}$ ) were detected as early as 8 days after EB formation, but message of cardiac muscle-specific $\alpha$$_1$-subunit of the L-type calcium channel ($\alpha$$_1$CaCh) were reveled at a low level. In contrast, expression of myosin light chain (MLC-2V) and atrial natriuretic factor (ANF) were not detected during EB formation for 8 days. However, a strong expression of the atrial-specific ANF gene was expressed from day 8 onward, which were remained constant in EB. (cardiac specialization and terminal differentiation stage). Electrophysiological examination of spontaneously contracting cells showed ventricle-like action potential 17 days after the EB formation. This study indicates that mES03 cell-derived cardiomyocytes via 4+/4- protocol displayed biochemical and electrophysiological properties of subpopulation of cardiomyocytes.
Nek2 (NIMA-related protein) is a mammalian cell cycle-regulated kinase that involves in chromosome condensation and centrosome regulation and NuMA (nuclear mitotic apparatus protein) is involved in spindle assembly during a cell cycle. The cellular distribution and organization of the centrosomal components is completely unknown during fertilization and embryonic development. We examined distribution of two well-known centrosomal proteins, Nek2 and NuMA in mouse gametes and embryos to get an insight in the reorganization of centrosomal proteins during germ cell development and early fertilization. Spermatogenic cells, gametes, and embryos were analyzed with anti-Nek2 or -NuMA antibodies by immunological assay, RT-PCR, and overexpression through gene transfection. Mitotically or meiotically active spermatogenic cells were intensively stained with these antibodies in both centrosomes and cytoplasm, whereas the oocytes showed different staining patterns depending on the meiotic stages. During maturation, GV, GVBD, and MI stage were clearly stained with NuMA antibody in the nucleus or cytoplasm at MII. Also, Nek2 was detectable in cytoplasm as scattered spots or chromosome associated at MII. In early developmental embryo, NuMA was detected in nucleus of each blastomere, while Nek2 was detected in cytoplasm. In contrast to previously reported results, Nek2 and NuMA were detected in both decondensing head, and the centriole of demembranated and decondensed sperm or whole body of trypsin-treated sperm for Nek2. During meiotic progress in oocytes, transcripts levels were the highest in MI stage and then downregulated in MII. Also, it shows dramatically change in early developmental embryos, firstly, it was increased until 4 cell stage and reduced in 8 cell stage, and finally, transcript levels were upregulated until blastoscyst. This finding suggests that cnetrosomal component may play an important role in reorganizing of functional centrosome during fertilization process and subsequent development.
본(本) 연구는 micromanipultor를 이용하여 생쥐의 8세포기배와 상실배 그리고 배반포기배를 양분(兩分)후 생존성을 검토하고, 또한 배반포기배를 양분후, 선별(選別)및 배양 과정없이 암컷 생쥐에 이식(移植)하는 경우 새끼쥐 생산의 가능성을 검토하고자 수행된 것이다. 그 경과를 요약해 보면 다음과 같다. 1. 생쥐의 8세포기배(細胞期胚)와 상실배(桑實胚)를 양분(兩分)하여 M2에 배양한결과 각각 64%, 81%가 배반포기배(胚盤胞期胚)까지 발생(發生)하였다. 2. M2 배양액에서 발생시킨 배반포기배를 Ham's F-10에서 배양한 결과 8세포기배에서는 86%, 상실배에서는 90%가 정상적으로 outgrowth 되었다. 3. 배반포기배를 배양 과정없이 바로 양분(兩分)하여 Ham's F-10에서 배양한 결과 97%가 정상적으로 outgrowth 되었으나 암컷생쥐에 이식한 결과 산차는 얻지 못하였다.
Cryopreservation is able to store the surplus pre-embryos for freezing and furthermore thawing and transfer in a subsequent cycle. Cryopreserving cells which are maintaining their viability are the very complex process. This study has been carried out in order to find the effects of cryopreservation steps, freezing media and embryonic stages on the rates of viability and development of cryopreserved mouse embryos. Female ICR mice ($6{\sim}8$ weeks old) were induced to superovulate by sequential intraperitoneal injection of 5 IU PMSG and 5 IU hCG 48h apart. Mouse embryos were collected according to its developmental stage after the injection of hCG. Embryos were cryopreserved not only by cryoprotectant step (1 step${\sim}$4 step) but also in a variety of media (HTF, IVF medium, D-PBS) and cell stage. The results were as follows: There is no clear advantage in these freezing media of rapid method, but 4 cell and 8 cell of slow method (2, 3, 4 step) have advantage in D-PBS. The development of embryos according to cell stage become greater in 8 cell stage. In the treatment steps of cryopreservation, the development of embryo to blastocyst was similar among rapid method, but the development of 4 cell and 8 cell embryos to blastocyst according to slow method was better than rapid method.
This experiment was carried out to develop a new technique of identifying XX of XY-bearing bisected embryos prior to implantation by immunological method. H-Y antiserum prepared in inbred Wastar female rats by repeated immunization with spleen cells from males of the same strain. The reactivity of H-Y antibody was confirmed by culturing mouse embryos in the medium containing H-Y antiserum and complement obtained from the guinea pig. The optimal condition for the activity of H-Y antibody was also investigated by culturing embryos under the concentraton or affected H-Y antibody was also investigated by culturing embryos under the concentration or affected H-Y antibody and culture rate. However, production of live young or sex rates of male and female from embryos transferred with psudopregnant. The biological test with the morula stage embryos showed that H-Y antibody was formed in all female rats immunized with spleen cell, but it was formed only in 80% female rats immunized with the antigen. When the bisected mouse embryos were cultured in vitro for 5~6 hours in morula stage, of 457 bisected embryos 81.4% of then were developed to the blastocyst stage. When the concentration rate of complement to H-Y antiserum varied from 1.0~5.0${mu}ell$, the lysis-rate of embryo was 19.5 to 67.3%. The concentration rate of complement did not influence the lysis-rate of embryos(P<0.05). The morphology embryos of bisected, zona-free and intact embryos showed the embryos lysis rate of 58.6, 42.7 and 48.5% respectively(P<0.05). Pregnancy rate were 50.0, 45.5 and 57.1% in psudopregnant recipient transferred with bisected, zona-free and intact blastocyst embryos. However, production of live youngs, sexual rate of male or female was 24(50.0:50.0), 22(45.5:55.5) and 36(58.3:41.7)mice, but affected and non affected half embryos with H-Y antiserum treatment was 23.1 and 26.7%. Also production of live youngs and sexual rate was 14(92.9:7.1) and 17(17.6:82.4)mice in affected and non affected half embryos in H-Y antiserum treatment(P<0.05).
인슐린 유사 성장 호르몬 1과 2 (IGF-1 & IGF-2)는 착상 전 초기배아 발생을 조절하는 중요한 요소이다. 생쥐 착상 전 초기배아에서 IGF-1의 역할에 관한 연구를 위해, IGF-1과 IGF-1 수용체의 전사물의 존재 여부를 난자와 착상 전 초기배아에서 조사하였다. 새로이 고안된 IGF-1 primer를 이용하여 난자에서 전사물을 검출하였다. 그리고, PCR 산물을 제한효소인 Msp I으로 절단하여 확인하였다. 이 실험에서 IGF-1과 IGF-1 수용체의 전사물이 난자와 착상 전 초기배아에서 모두 검출됨을 보였다. GV-난자에 다량 존재하는 mRNA는 4- 혹은 8-세포기까지 지속적으로 감소하다가 이후에 다시 증가하는 양상을 보였다. GV-난자에서 IGF-1과 IGF-lR 전사물이 존재한다는 것은 초기배아에 존재하는 전사물이 모계유래 산물임을 암시한다. 또한, 난자와 착상 전 초기배아에 IGF-1과 IGF-1 수용체 전사물이 존재하는 것으로 보아 착상 전 초기배아에서 IGF-1은 자가 분비되어 IGF-1 수용체의 신호전달 경로를 통하여 배아발생에 작용하는 것으로 사료된다.
dbcAMP에 의해 성숙이 억제된 생쥐난자의 수정능을 조사하기 위해 본 실험을 행하였다. dbcAMP로 일시 성숙이 억제되었던 난자를 배양액내에서 정자와 섞고 24시간 배양한 후 발생한 2세포기의 배아형성, 정자의 관입, 전액형성을 조사하여 2세포기로 배아발생이 진척된 것을 수정율의 기준으로 정하였다. dbcAMP를 처리하지 않은 난자는 약 53.3%의 수정율을 보였으며,dbcAMP가 함유되 배양액에서 배양한 후 기본 배양액에서 성숙시킨 난자들의 수정율은 dbcAMP의 처리시간에 비례하여 낮으나, 정자의 관입은 정상적으로 일어났다. 전자현미경적 관찰에 의하면 dbcAMP 처리는 난자의 미세구조에 어떠한 변화도 야기하지 않았다. 따라서 dbcAMP를 사전처리하여 성숙을 억제한 난자라할지라도 어느 정도의 수정능력을 보유하고 있다고 사료된다.
In the studies on the hatching mechanisms in mammals, many investigators focused on the embryonic intrinsic factor(s) in in vitro culture, but the uterine environment as the extrinsic factor(s) is thought to play an important role in hatching mechanism. Therefore, to evaluate the effect of uterine environment on the hatching event in vivo, the immature(GV) and ovulated(MII) oocytes, and the late 2-cell embryos of mouse were transferred to pseudopregnant foster mother's uterus during peri-implantation period. So it was verified whether there would happen hatching by only uterine environment independently on embryonic stage. The ultrastructural changes of the zona surface of transferred group were compared with those 01 in vivo and vitro group by SEM. 36 hrs after transfer, the immature and ovulated oocytes almost degenerated, and the late 2-cell embryos developed to various embryonic stages. However, the embryos which didn't develop to blastula stage did not hatch. The ultrastructural network of ZP in transferred group seemed to be smoothed uniformly, which was different from in vitro group. In conclusion, it is suggested that the uterine environment during peri-implantation period enhances the embryo hatching by provoking the structural change of ZP.
체외 배양 과정 중에 나타나는 생쥐 초기 2-세포 배의 "in vitro 2-cell block" 현상은 세포내 $Ca^{2+}$ 농도 변화와 밀접한 관련이 있다. 다양한 종류의 세포에서 acetylcholine은 세포막에 존재하는 muscarnic acetylcholine receptor를 통해 세포내 $Ca^{2+}$ 농도 증가를 유도한다. 본 실험에서는 생쥐 "in vitro 2-cell block" 현상에 있어서 ACh의 영향을 알아보기 위해 세포 내 $Ca^{2+}$ 농도 조절 물질을 처리한 후, 공초점 현미경을 이용하여 세포 내 $Ca^{2+}$ 농도 변화를 기록하였다. ACh은 세포 내에서 농도 의존적으로 $Ca^{2+}$ 농도 증가를 유도하며, "in Vitro 2-cell block" 현상을 극복하여 포배기로 발생을 유도하였다. ACh에 의한 $Ca^{2+}$ 농도 증가가 세포막에 존재하는 ACh receptor를 경유하여 나타나는 반응인지를 알아보기 위해 ACh receptor의 저해제인 atropine을 전처리한 결과, ACh에 의한 $Ca^{2+}$ 농도 증가가 완전히 저해되었다. 초기 2-세포 배에서 ACh이 결합하는 receptor의 종류를 확인하기 위하여 carbachol과 nicotin tartrate를 처리 하였다. Nicotinic AChR의 agonist인 nicotine tartrate 1 mM은 세포내 $Ca^{2+}$ 농도 증가를 보이지 않았다. 따라서 초기 2-세포 배의 세포막에는 muscarnic AChR가 기능적으로 작용함을 알 수 있다. ACh에 의한 세포내 $Ca^{2+}$ 농도 증가가 $Ca^{2+}$이 제거된 배양액에서도 나타나는 것으로 보아 ACh에 의한 세포내 $Ca^{2+}$ 변화는 주로 소포체와 같은 세포내 $Ca^{2+}$ 저장고로부터 분비됨을 알 수 있었다. 이러한 세포내 $Ca^{2+}$ 저장고로부터의 $Ca^{2+}$ 분비가 어떤 신호전달체계를 통해 나타나는 지를 조사하였다. 세포막의 PLC 저해제인 U73122를 전처리한 배는 ACh에 의한 $Ca^{2+}$ 농도 증가가 나타나지 않았으며, 세포 내 $Ca^{2+}$ 통로인 IP3R와 RyR의 저해제인 xestospongin과 heparin 혹은 dantrolene을 전처리한 결과 dantrolene에 의해 세포내 $Ca^{2+}$ 농도 증가가 억제되었다. 그리고 세포내 반복적인 $Ca^{2+}$ 농도 증가에 의해 활성도가 변화는 CaMKII의 작용을 확인하기 위하여 Ca MKII의 저해제인 KN-93을 전처리한 결과 $Ca^{2+}$ 농도 증가가 억제되는 것을 확인하였다. 이상의 결과로부터 ACh은 생쥐 초기 2-세포 배에서 ryano-dine receptor를 통하여 세포내 $Ca^{2+}$ 저장고로부터 $Ca^{2+}$ 분비를 유도하며, CaM KII에 의해서도 영향을 받는 것으로 보여진다. 생쥐 초기 2-세포 배에서 "in vitro 2-cell block"의 극복은 ACh에 의해 유도된 신호전달체계를 통해 세포내에 증가하는 $Ca^{2+}$ 농도 및 이에 따른 세포내 대사 작용의 활성화에 의하여 나타나는 것으로 생각된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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