Proceedings of the Korean Institute of Intelligent Systems Conference
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2004.04a
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pp.97-100
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2004
The identification of the DNA structure as a double-stranded helix consting of two nucleotide chain molecules was a milestone in modern molecular biology. The DNA chip technology is based on reverse hybridization that follows the principle of complementary binding of double-stranded DNA. DNA chip can be described as the deposition of defined nucleic acid sequences, probes, on a solid substrate to form a regular array of elements that are available for hybridization to complementary nucleic acids, targets. DNA chips based on cDNA clons, oligonucleotides and genomic clons have been developed for gene expression studies, genetic variation analysis and genomic changes associated with disease including cancers and genetic diseases. DNA chips for gene expression profiling can be used for functional analysis in human eel Is and animal models, disease-related gene studies, assessment of gene therapy, assessment of genetically modified food, and research for drug discovery. DNA chips for genetic variation detection can be used for the detection of mutations or chromosomal abnormalities in cnacers, drug resistances in cancer cells or pathogenic microbes, histocompatibility analysis for transplantation, individual identification for forensic medicine, and detection and discrimination of pathogenic microbes. The DNA chip will be generalized as a useful tool in clinical diagnostics in near future. Lab-on-a chip and informatics will facilitate the development of a variety of DNA chips for diagnostic purpose.
Intracellular lipid-binding proteins (LBPs) impact fatty acid homeostasis in various ways, including fatty acid transport into mitochondria. However, the physiological consequences caused by mutations in genes encoding LBPs remain largely uncharacterized. Here, we explore the metabolic consequences of lbp-5 gene deficiency in terms of energy homeostasis in Caenorhabditis elegans. In addition to increased fat storage, which has previously been reported, deletion of lbp-5 attenuated mitochondrial membrane potential and increased reactive oxygen species levels. Biochemical measurement coupled to proteomic analysis of the lbp-5(tm1618) mutant revealed highly increased rates of glycolysis in this mutant. These differential expression profile data support a novel metabolic adaptation of C. elegans, in which glycolysis is activated to compensate for the energy shortage due to the insufficient mitochondrial ${\beta}$-oxidation of fatty acids in lbp-5 mutant worms. This report marks the first demonstration of a unique metabolic adaptation that is a consequence of LBP-5 deficiency in C. elegans.
Cell reprogramming has been considered a powerful technique in the regenerative medicine field. In addition to diverse its strengths, cell reprogramming technology also has several drawbacks generated during the process of reprogramming. Telomere shortening caused by the cell reprogramming process impedes the efficiency of cell reprogramming. Transcription factors used for reprogramming alter genomic contents and result in genetic mutations. Additionally, defective mitochondria functioning such as excessive mitochondrial fission leads to the limitation of pluripotency and ultimately reduces the efficiency of reprogramming. These problems including genomic instability and impaired mitochondrial dynamics should be resolved to apply cell reprograming in clinical research and to address efficiency and safety concerns. Sirtuin (NAD+-dependent histone deacetylase) has been known to control the chromatin state of the telomere and influence mitochondria function in cells. Recently, several studies reported that Sirtuins could control for genomic instability in cell reprogramming. Here, we review recent findings regarding the role of Sirtuins in cell reprogramming. And we propose that the manipulation of Sirtuins may improve defects that result from the steps of cell reprogramming.
Using germinal and somatic cell mutation assaying systems of Drosophila melanogaster, effects of Ginseng and Salvia miltiorrhiza extracts on the in vivo mutagenicity induced by N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine(MNNG) were investigated. For these purpose, the attached-X method and the mwh/flr spot test system which are an X-linked lethal mutation and a somatic chromosome mutation assaying system, respectively, were used. In the induction of X-linked lethal mutations during the spermatogenesis, MNNG showed more actions in the sperm and spermatid stages, in which Ginseng and Salvia miltiorrhiza extracts had remarkable inhibitory effects than other stages. Ginseng and Salvia miltiorrhiza extracts reduced the mutagenicity by MNNG in the mwh/flr system, which reveal that they can inhibit gene mutation, deletion and mitotic chromosomal recombination. These results seem to suggest that Ginseng and Salvia miltiorrhiza extracts may exert their inhibitory effects to in vivo mutagenic and/or carcinogenic properties of DNA-damaging agents.
Nuclear factor E2-related factor 2 (NRF2) plays an important role in redox metabolism and antioxidant defense. Under normal conditions, NRF2 proteins are maintained at very low levels because of their ubiquitination and proteasomal degradation via binding to the kelch-like ECH associated protein 1 (KEAP1)-E3 ubiquitin ligase complex. However, oxidative and/or electrophilic stresses disrupt the KEAP1-NRF2 interaction, which leads to the accumulation and transactivation of NRF2. During recent decades, a growing body of evidence suggests that NRF2 is frequently activated in many types of cancer by multiple mechanisms, including the genetic mutations in the KEAP1-NRF2 pathway. This suggested that NRF2 inhibition is a promising strategy for cancer therapy. Recently, several NRF2 inhibitors have been reported with anti-tumor efficacy. Here, we review the mechanisms whereby NRF2 is dysregulated in cancer and its contribution to the tumor development and radiochemoresistance. In addition, among the NRF2 inhibitors reported so far, we summarize and discuss repurposed NRF2 inhibitors with their potential mechanisms and provide new insights to develop selective NRF2 inhibitors.
Park, Jae-Eun;Do, Su-Il;Lee, Ki-Sung;Lee, Sang-Soo
BMB Reports
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v.37
no.5
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pp.597-602
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2004
N-terminal His-tagged recombinant $\beta$-1,4-galactosyltransferase from Neisseria meningitidis was expressed and purified to homogeneity by column chromatography using Ni-NTA resin. Mutations were introduced to investigate the roles of, Ser68, His69, Glu88, Asp90, and Tyr156, which are components of a highly conserved region in recombinant $\beta$-1,4 galactosyltransferase. Also, the functions of three other cysteine residues, Cys65, Cys139, and Cys205, were investigated using site-directed mutagenesis to determine the location of the disulfide bond and the role of the sulfhydryl groups. Purified mutant galactosyltransferases, His69Phe, Glu88Gln and Asp90Asn completely shut down wild-type galactosyltransferase activity (1-3%). Also, Ser68Ala showed much lower activity than wild-type galactosyltransferase (19%). However, only the substitution of Tyr156Phe resulted in a slight reduction in galactosyltransferase activity (90%). The enzyme was found to remain active when the cysteine residues at positions 139 and 205 were replaced separately with serine. However, enzyme reactivity was found to be markedly reduced when Cys65 was replaced with serine (27%). These results indicate that conserved amino acids such as Cys65, Ser68, His69, Glu88, and Asp90 may be involved in the binding of substrates or in the catalysis of the galactosyltransferase reaction.
Protein kinase CKII is composed of two catalytic ($\alpha$ or $\alpha$') subunits and two regulatory ($\beta$) subunits. The $CKII{\beta}$ subunit is thought to mediate the tetramer formation and interact with other target proteins. However, its physiological function remains obscure. In this study, point mutants of $CKII{\beta}$ that are defective for the L41 binding were isolated by using the reverse two-hybrid system. A sequence analysis of the point mutants revealed that Asp-26, Met-52, and Met-78 of $CKII{\beta}$ are critical for L41 binding; Asn-67 (and/or Lys-139) and Met-52 are important for $CKII{\beta}$ homodimerization. Two point mutants, R75 and R83, of $CKII{\beta}$ interacted with L5, topoisomerase $II{\beta}$, and CKBBP1/SAG, but not with the wild-type $CKII{\beta}$. This indicates that $CKII{\beta}$ homodimerization is not a prerequisite for its binding to target proteins. These $CKII{\beta}$ point mutants may be useful in exploring the biochemical physiological functions of $CKII{\beta}$.
TTRAP is a multi-functional protein that is involved in multiple aspects of cellular functions including cell proliferation, apoptosis and the repair of DNA damage. Here, we demonstrated that the lentivirus-mediated overexpression of TTRAP significantly inhibited cell growth and induced apoptosis in osteosarcoma cells. The ectopic TTRAP suppressed the growth and colony formation capacity of two osteosarcoma cell lines, U2OS and Saos-2. Cell apoptosis was induced in U2OS cells and the cell cycle was arrested at G2/M phase in Saos-2 cells. Exogenous expression of TTRAP in serum-starved U2OS and Saos-2 cells induced an increase in caspase-3/-7 activity and a decrease in cyclin B1 expression. In comparison with wild-type TTRAP, mutations in the 5'-tyrosyl-DNA phosphodiesterase activity of TTRAP, in particular $TTRAP^{E152A}$, showed decreased inhibitory activity on cell growth. These results may aid in clarifying the physiological functions of TTRAP, especially its roles in the regulation of cell growth and tumorigenesis.
The breast cancer susceptibility gene BRCA1 encodes a nuclear protein, which functions as a tumor suppressor and is involved in gene transcription and DNA repair processes. Many families with inherited breast and ovarian cancers have mutations in the BRCA1 gene. However, only a few studies have reported on the mechanism underlying the regulation of BRCA1 expression in humans. In this study, we investigated the transcriptional regulation of BRCA1 in HeLa cells treated with etoposide. We found that three Egr-1-binding sequences (EBSs) were located at -1031, -1005, and -385 within the enhancer region of the BRCA1 gene. Forced expression of Egr-1 stimulated the BRCA1 promoter activity. EMSA data showed that Egr-1 bound directly to the EBS within the BRCA1 gene. Knockdown of Egr-1 through the expression of a small hairpin RNA (shRNA) attenuated etoposide-induced BRCA1 promoter activity. We conclude that Egr-1 targets the BRCA1 gene in HeLa cells exposed to etoposide.
In embryonic stem cells (ESCs), cell cycle regulation is deeply connected to pluripotency. Especially, core transcription factors (CTFs) which are essential to maintaining the pluripotency transcription programs should be reset during M/G1 transition. However, it remains unknown about how CTFs are governed during cell cycle progression. Here, we describe that the regulation of Oct4 by Aurora kinase b (Aurkb)/protein phosphatase 1 (PP1) axis during the cell cycle is important for resetting Oct4 to pluripotency and cell cycle related target genes in determining the identity of ESCs. Aurkb starts to phosphorylate Oct4(S229) at the onset of G2/M phase, inducing the dissociation of Oct4 from chromatin, whereas PP1 binds Oct4 and dephosphorylates Oct4(S229) during M/G1 transition, which resets Oct4-driven transcription for pluripotency and the cell cycle. Furthermore, Aurkb phosphormimetic and PP1 binding-deficient mutations in Oct4 disrupt the pluripotent cell cycle, lead to the loss of pluripotency in ESCs, and decrease the efficiency of somatic cell reprogramming. Based on our findings, we suggest that the cell cycle is directly linked to pluripotency programs in ESCs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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