Fumonisin B1 is a secondary metabolite of Fusarium moniliforme, a contaminant of corn and corn product. Fumonisin B1 has been shown to be responsible for major toxicological effects of the fungus in rats, horses, and pigs. Fumonisin B1 induced λ DNA fragmentation, which was increased with incubation time, reducing agent NADPH and metal ion (Cu2+). The DNA damage was inhibited by dimethyl sulfoxide (DMSO) or mannitol as radical scavenger for free radicals. DNA fragmentation, induced by fumonisin B1 in the presence of 1 mM NADPH and 0.1 mM CuCl2, was inhibited by 100 mM DMSO. By the in vitro reaction of fumonisin B1 with supercoiled plasmid pBR322 DNA, plasmid DNA was relaxed, eventually linearized in the agarose gel electrphoresis. From rifampicin sensitive E. coli CSH138 in bacterial mutagenesis system, the rifampicin resistant E. coli mutants were obtained by fumonisin B1. These results suggest that fumonisin B1 may be a possible environmental mutagen in bacterial mutagen assay system.
The role of inorganic nitrogen assimilation in the production of amino acids, organic acids and soluble sugars is one of the most important biochemical processes in plants, and, in order to achieve normally, nitrate uptake and assimilation is essential. For this reason, the characterization of nitrate assimilation and metabolite composition from leaves, roots and xylem sap of tomato (Solanum lycopersicum) was investigated under different nitrate levels in media. Tomato plants were grown hydroponically in liquid culture under five different nitrate regimes: deficient (0.25 and 0.75 mM $NO_3{^-}$), normal (2.5 mM $NO_3{^-}$) and excessive (5.0 and 10.0 mM $NO_3{^-}$). All samples, leaves, roots and xylem sap, were collected after 7 and 14 days after treatment. The levels of amino acids, soluble sugars and organic acids were significantly decreased by N-deficiency whereas, interestingly, they remained higher in xylem sap as compared with N-normal and -surplus. The N-excessive condition did not exert any significant changes in metabolites composition, and thus their levels were similar with N-normal. The gene expression and enzyme activity of nitrate reductase (NR), nitrite reductase (NIR) and glutamine synthetase (GS) were greatly influenced by nitrate. The data presented here suggest that metabolites, as a signal messenger, existed in xylem sap seem to play a crucial role to acquire nitrate, and, in addition, an increase in ${\alpha}$-ketoglutarate pathway-derived amino acids under N-deficiency may help to better understand plant C/N metabolism.
The microbial transformation of anthranilic acid (1) by the marine-mudflat-derived fungus Thielavia sp. produced an antibacterial polycyclic quinazoline alkaloid, thielaviazoline (2). The stereostructure of the metabolite was assigned based on detailed spectroscopic data analyses including comparison of the NMR ($^1H$ and $^{13}C$) data with those of reported compound (2). Compound 2 displayed in vitro antimicrobial activity against methicillin-resistant and multidrug-resistant Staphylococcus aureus (MRSA and MDRSA), with minimum inhibitory concentrations (MICs) of 6.25 and $12.5{\mu}g/mL$, respectively. Compound 2 also showed potent radical-scavenging activity against 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) with an $IC_{50}$ of $11{\mu}M$, which was more active than the positive control, L-ascorbic acid ($IC_{50}$, $20.0{\mu}M$).
The active metabolite of vitamin D such as $1{\alpha}$,25-dihydroxyvitamin ($D_3(1{\alpha},25(OH)_2D_3)$ is a well-known key regulatory factor in bone metabolism. However, little is known about the potential of vitamin D as an odontogenic inducer in human dental pulp cells (HDPCs) in vitro. The purpose of this study was to evaluate the effect of vitamin $D_3$ metabolite, $1{\alpha},25(OH)_2D_3$, on odontoblastic differentiation in HDPCs. HDPCs extracted from maxillary supernumerary incisors and third molars were directly cultured with $1{\alpha},25(OH)_2D_3$ in the absence of differentiation-inducing factors. Treatment of HDPCs with $1{\alpha},25(OH)_2D_3$ at a concentration of 10 nM or 100 nM significantly upregulated the expression of dentin sialophosphoprotein (DSPP) and dentin matrix protein1 (DMP1), the odontogenesis-related genes. Also, $1{\alpha},25(OH)_2D_3$ enhanced the alkaline phosphatase (ALP) activity and mineralization in HDPCs. In addition, $1{\alpha},25(OH)_2D_3$ induced activation of extracellular signal-regulated kinases (ERKs), whereas the ERK inhibitor U0126 ameliorated the upregulation of DSPP and DMP1 and reduced the mineralization enhanced by $1{\alpha},25(OH)_2D_3$. These results demonstrated that $1{\alpha},25(OH)_2D_3$ promoted odontoblastic differentiation of HDPCs via modulating ERK activation.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Oxidative stress causes cell damage and death, which contribute to the pathogenesis of neurodegenerative diseases. Urolithin A (UA), a gut microbial-derived metabolite of ellagitannins and ellagic acid, has high bioavailability and various health benefits such as antioxidant and anti-inflammatory effects. However, it is unknown whether it has protective effects against oxidative stress-induced cell death. We investigated whether UA ameliorates H2O2-induced neuronal cell death. MATERIALS/METHODS: We induced oxidative damage with 300 μM H2O2 after UA pretreatment at concentrations of 1.25, 2.5, and 5 μM in SK-N-MC cells. Cytotoxicity and cell viability were determined using the CCK-8 assay. The formation of reactive oxygen species (ROS) was measured using a 2,7-dichlorofluorescein diacetate assay. Hoechst 33342 staining was used to characterize morphological changes in apoptotic cells. The expressions of apoptosis proteins were measured using Western blotting. RESULTS: UA significantly increased cell viability and decreased intracellular ROS production in a dose-dependent manner in SK-N-MC cells. It also decreased the Bax/Bcl-2 ratio and the expressions of cytochrome c, cleaved caspase-9, cleaved caspase-3, and cleaved PARP. In addition, it suppressed the phosphorylation of the p38 mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathway. CONCLUSIONS: UA attenuates oxidative stress-induced apoptosis via inhibiting the mitochondrial-related apoptosis pathway and modulating the p38 MAPK pathway, suggesting that it may be an effective neuroprotective agent.
Angiotensin converting enzyme (ACE) inhibitors have cardioprotective effects in different species including human. This cardioprotective effect is mainly due to the inhibition of bradykinin (BK) degradation rather than inhibition of the conversion of angiotensin I to angiotensir. II. Bradykinin, a nonapeptide, has been considered to be the potential target for various enzymes including ACE, neutral endopeptidase 24.11, carboxypeptidase M, carboxypeptidase N, proline aminopeptidase, endopeptidase 24.15, and meprin. In the present study, the coronary vascular beds of Sprague Dawley rat isolated hearts were perfused (single passage) with Krebs solution alone or with different concentrations of BK i.e. $2.75{\times}10^{-10},\;10^{-7},\;10^{-6}\;and\;10^{-5}M$ solution. Percent degradation of BK was determined by radioimmunoassay. The degradation products of BK after passing through the isolated rat-hearts were determined using RP-HPLC and mass spectroscopy. All the four doses of BK significantly decreased the perfusion pressure during their passage through the hearts. The percentage degradation of all four doses was decreased as the concentration of drug was increased, implying saturation of a fixed number of active sites involved in BK degradation. Bradykinin during a single passage through the hearts degraded to give [1-7]-BK as the major metabolite, and [1-8]-BK as a minor metabolite, detected on HPLC. Mass spectroscopy not only confirmed the presence of these two metabolites but also detected traces of [1-5]-BK and arginine. These findings showed that primarily ACE is the major cardiac enzyme involved in the degradation of bradykinin during a single passage through the coronary vascular of bed the healthy rat heart, while carboxypeptidase M may have a minor role.
Kim Sunoh;Choo Min-Kyung;Nah Seung-Yeol;Kim Dong-Hyun;Rhim Hyewhon
고려인삼학회:학술대회논문집
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고려인삼학회 2002년도 학술대회지
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pp.531-544
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2002
Ginseng is the best known and most popular herbal medicine used worldwide. Ameliorating effects of ginseng were observed on the models of scopolamine-induced, aged or hippocampal lesioned learning and memory deficits. Further beneficial effects of ginseng were observed on neuronal cell death associated with ischemia or glutamate toxicity. In spite of these beneficial effects of ginseng on the CNS, little scientific evidence shows at the cellular level. In the present study, we have employed cultures of rat hippocampal neurons and examined the direct modulation of ginseng on NMDA receptor-induced changes in $[Ca^{2+}]_i$ and -gated currents using fura-2-based digital imaging and perforated whole-cell patch-clamp techniques, respectively. We found that ginseng total saponins inhibited NMDA-induced but less effectively glutamate-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$ Ginseng total saponins also modulated $Ca^{2+}$ transients evoked by depolarization with 50 mM KCI along with its own effects on $[Ca^{2+}]_i$. Among ginsenosides tested, ginsenoside $Rg_3$ was found to be the most potent component for ginseng actions on NMDA receptors. Furthermore, we examined the inhibitory effects ofbiotransformants of ginsenosides on NMDA receptor using purified stereoisomers of ginsenosides. 20(S)-ginsenoside $Rg_3$ and its metabolite, 20(S)-ginsenoside $Rh_3$, produced the strongest inhibition while 20(S)-ginsenoside $Rh_1$ and Compound K produced the moderate inhibition on NMDA-induced increase in $[Ca^{2+}]_i$. The data obtained suggest that the inhibition of NMDA receptors by ginseng, in particular by 20(S)-ginsenoside $Rg_3$ and its metabolite, 20(S)-ginsenoside $Rh_2$, could be one of mechanisms for ginsengmediated neuroprotective actions.
A fully automated high performance liquid chromatography with column-switching was developed for the simultaneous determination of KR60436, a new reversible proton pump inhibitor, and its active metabolite O-Demethyl-KR60436 from rat plasma samples. Plasma sample (50$\mu$l) was directly introduced onto a Capcell Pak MF Ph-1 column ($10{\times}4$ mm I.D.) where primary separation was occurred to remove proteins and concentrate target Substances Using acetonitrile-Potassium Phosphate (PH 7, 0.1 M) (2 : 8, v/v). The drug molecules eluted from MF Ph-1 column were focused in an intermediate column ($10{\times}2$ I.D.) by the valve switching step. The substances enriched in intermediate column were eluted and separated on a Vydac 218MR53 column ($250{\times}3.2$ I.D.) using acetonitrilepotassium phosphate (pH 7, 0.02 M) (47:53, v/v) at a flow rate of 0.5 ml/min when the valve status was switched back to A position. The method showed excellent sensitivity (detection limit of 2 ng/ml) with small volume of samples ($50{\mu}$l), good precision and accuracy, and speed (total analysis time 24 min) without any loss in chromatographic efficiency. The response was linear ($r^2{\geq}0.797$) over the concentration range of 5-500 ng/ml.
An intravenous pharmacokinetics for a new red cell substitute, PEG-hemoglobin SB1, was studied in SD rats. Total-hemoglobin and its metabolite methemoglobin in the plasma were determined using a spectrophotometer. The limit of quantitation was 0.01g/dL and the C.V for interday assay reproducibility was less than 6%. Upon intravenous administration of anticipated clinical dose, 10 ml(0.7 gHb)/kg, plasma concentration curve of total-hemoglobin was well described by one-compartment model. The $t_{\frac{1}{2}},{\;}CL_{t}$, Vd and $AUC^{0-48hr}$ were $8.23{\pm}0.96{\;}hr,{\;}0.06{\;}{\pm}{\;}0.01 {\;}dL/hr/kg,{\;}0.66{\pm}0.05{\;}dL/lg{\;}and{\;}13.6{\;}{\pm}{\;}1.01g{\cdot}hr/dL$, respectively, in male rats(n=5, $mean{\;}{\pm}{\;}SD$). Those parameters in female rats were $9.21{\;}\pm{\;}2.31{\;}hr,{\;}0.06{\;}{\pm}{\;}0.01{\;}dL/hr/kg,{\;}0.79{\pm}{\;}0.08{\;}dL/kg{\;}and{\;}13.0{\;}{\pm}{\;}2.36{\;}g{\cdot}hr/dL$, respectively. Similar kinetic profiles between males and females were also obtained from other parameters. Small amount of methemoglobin, an oxidative metabolite of SB1, was detected in the plasma of both sexes, where the $AUC^{0-48{\;}hr,m}$ and $t_{{\frac{1}{2}},m}$ were approximately $1.5{\;}g{\cdot}hr/dL$ and 20 hr, respectively. The present work provides a critical kinetic data for the effective clinical applications of PEG-hemoglobin SB1.
Ginsenosides, one of the active ingredients of Panax ginseng, show various pharmacological and physiological effects, and they are converted into compound K (CK) or protopanaxatriol (M4) by intestinal microorganisms. CK is a metabolite derived from protopanaxadiol (PD) ginsenosides, whereas M4 is a metabolite derived from protopanaxatriol (PT) ginsenosides. The ${\gamma}$-aminobutyric acid $receptor_C$ ($GABA_C$) is primarily expressed in retinal bipolar cells and several regions of the brain. However, little is known of the effects of ginsenoside metabolites on $GABA_C$ receptor channel activity. In the present study, we examined the effects of CK and M4 on the activity of human recombinant $GABA_C$ receptor (${\rho}$ 1) channels expressed in Xenopus oocytes by using a 2-electrode voltage clamp technique. In oocytes expressing $GABA_C$ receptor cRNA, we found that CK or M4 alone had no effect in oocytes. However, co-application of either CK or M4 with GABA inhibited the GABA-induced inward peak current ($I_{GABA}$). Interestingly, pre-application of M4 inhibited $I_{GABA}$ more potently than CK in a dose- dependent and reversible manner. The half-inhibitory concentration ($IC_{50}$) values of CK and M4 were $52.1{\pm}2.3$ and $45.7{\pm}3.9{\mu}M$, respectively. Inhibition of $I_{GABA}$ by CK and M4 was voltage-independent and non-competitive. This study implies that ginsenoside metabolites may regulate $GABA_C$ receptor channel activity in the brain, including in the eyes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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