사료에 여러 종류의 xanthophylls(lutein, canthaxanthin, astaxanthin, capxanthin)을 30ppm 수준으로 6주간 얻은 닭고기 육균질물의 산화 억제를 구명하기 위해 모델 시스템을 통한 실험을 실시하였다. Xanthophyll을 급여한 계육의 가슴육과 다리육에서 대조에 비해 TBARS (thiobarbituric acid reactive substances) 값이 낮은 것으로 보아 사료 첨가에 의한 고기에서 항산화성을 확인하였다. 특히, 처리구 중 가슴육에서는 lutein이 다리육에서는 lutein과 astaxanthin이 다른 처리구들에 비해 항산화성이 높은 것으로 나타났다.
본 실험은 육가공품에 첨가된 대두단백질(soy protein)을 정량하기 위한 면역분석법의 개발을 위해 고기 혼합물, 유화형소세지 및 시판육제품을 사용하여 정량실험을 설시하였다. 본 실험에 사용한 standard 항원을 추출과정 전과 후에 가열처리하여 반응성을 조사한 결과 가열온도에 따른 반응성 변화의 유의성은 인정되지 않았다. 고기혼합물과 유화형소세지의 대두단백 회수율에서 가열온도에 따른 반응성 변화의 유의성은 인정되지 않았으며, 지방 및 첨가된 향신료에 의한 반응성의 방해는 나타나지 않았다. 실험의 연관성은 대두함량이 높은 10% 첨가구에서 낮은 첨가구(2, 5%)보다 다소 낮게 나타났다. 시판 육제품의 대두단백 회수율은 제품간의 차이를 나타냈으며, 생야채와 소맥전분 등을 첨가한 일부 제품에서는 다소 낮게 나타냈으나, 실험을 통한 회수율의 연관성은 인정되었다.
본 연구는 모델시스템과 가열우육에서 옻나무 추출물의 항산화 효과를 구명함으로서 육제품에 이용 가능성을 검토하고자 실시하였다. DPPH에 대한 소거력$(\%)$은 옻나무 에탄올 추출물을 1, 10, 100, 1,000 ppm으로 증가시킴에 따라 14.79, 75.08, 82.02, $83.97\%$로 증가하였다(p<0.05). 옻나무 에탄올 추출물(10 ppm)을 liposome과 육균질물에 첨가하면 대조구보다 높은 항산화 효과를 나타냈으며, 단독 첨가보다 $\alpha-tocopherol$(2 ppm) 혼용 첨가가 억제율이 증가되었다. 육균질물은 pH 6.0에서, liposome은 pH $5.0\~6.0$에서 최대 산화 억제율을 보였다. 또한 옻나무 열수 추출물의 첨가로 인해 가열 우육의 냉장저장 중 TBARS와 POV가 대조구보다 낮은 수준으로 유지되었으며(p<0.05), 소금을 첨가하여 산화를 촉진시켰어도 강력한 항산화 효과를 나타내었다. 따라서 육제품 제조 시 옻나무 추출물이 천연 항산화제로서 이용 가능성이 있다고 판단된다.
방어, 참돔, 피조개, 굴 4종의 어패육에 V. vulnificus M-8을 접종하여 저장온도와 시간에 따른 균수의 변화를 시험한 결과는 다음과 같다. 1. V. vulnificus의 저온저항성은 $-20^{\circ}C$의 $1.5\%$ 식염-인산완충희석수에서는 32시간에 거의 사멸하였으며, 방어육 균질액에서는 인산완충희석수에서 보다 감소가 완만하였고 72시간 이후에도 균이 검출되었다. 그리고 $4^{\circ}C$ 저장에서도 균의 감소가 현저하였다. 따라서 이 균의 저온저항성은 약하지만 단시간 냉동 및 냉장에 의한 균의 사멸은 어렵다는 것을 알 수 있었다. 2. 어패육에 접종하여 $30^{\circ}C$에 저장한 시료중의 V. vulnificus의 증식은 일반적으로 16시간만에 최대균수에 달하였으나 피조개의 경우는 12시간으로 약간 빨랐으며 특히 방어육에 있어서는 초기에 감소하는 특징과 더불어 균의 증식속도가 완만하였다. 그리고 가열처리육보다 생육에서의 균의 증식이 빠르게 나타났다.
우리나라에서 생산되고 있는 패류 중 비교적 PSP의 검출률과 독소함량이 높은 것으로 알려진 진주담치를 시료로 하여 PSP로 인한 식중독사고의 예방과 독화된 패류의 활용방안을 모색하기 위하여 독화된 진주담치의 여러가지 처리조건 즉, 동결과 해동, 가열, 향신료 첨가 등이 독력에 미치는 영향과 통조림 제조공정 중의 독력변화에 관하여 실험한 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. PSP는 동결과 해동에 의하여 전혀 영향을 받지 않을 뿐만 아니라 마늘과 생강액즙의 첨가에 의해서도 영향을 받지 않는다. 2. PSP를 가열하였을 때 $70^{\circ}C$ 이하에서는 60분간의 가열에 의해서도 거의 독력변화가 없었으나, $80^{\circ}C$ 이상에서는 온도의 상승에 따라 독력의 감소율도 증가하였다. 3. 독화된 진주담치를 통조림 제조하였을 때 살균공정에서 독력의 감소가 심하여 최초 독력의 90이상이 감소하였다.
Tetracycline antibiotics have been widely used not only therapeutics but feed additives. There are many methods for the isolation and determination of tetracycline antibiotics in animal muscle tissue. But those methods take much time and labor, so it is difficult to analyse many samples simultaneously. A rapid isolation method and liquid chromatographic determination of tetracycline antibiotics in animal muscle tissue (bovine, porcine, chicken) is presented. Blank control and tetracyclines fortified samples (0.5g) were blended with $C_{18}$ containing 0.05g each of oxalic acid and disodium ethylenediaminetetraacetate. After homogenize, homogenate was transferred to glass column made from 10ml glass syringe and compressed to 4~4.5ml volume. A column made from the $C_{18}$/meat matrix was washed with hexane (8ml) and dichloromethane (8ml, if needed), following which the tetracyclines were eluted,vith methanol or 0.01M methanolic oxalic acid (8ml). The eluates containing tetracyclines analytes were free from interfering compounds when analysed by HPLC with UV detection (photodiode array at 360nm). Standard curve for each tetracycline showed a linear response at the range of $0.05{\sim}1.0{\mu}g/ml$ and tetracycline antibiotics were eluted within 4ml of eluted volume. All tetracycline antibiotics except tetracycline were stable during the concentration process at $40^{\circ}C$ and time required for concentration was 3~4 hours. Fortified samples containing oxalic aicd and EDTA represented more good recoveries than those of not-contained sample. Recoveries were 91.8~110.1% (oxytetracycline; OTC), 57.7~79.5% (tetracycline; TC), 78.1~88.6% (chlortetracyclines; CTC) and 88.4~100.6% (doxycycline; DC) in pork tissue, 101.1~126.8% (OTC), 66.4~75.4% (TC), 79.2~88.1% (CTC) and 69.3~86.7% (DC) in beef tissue, and 90.8~95.6% (OTC), 66.2~84.4% (TC), 75.7~77.2% (CTC) and 55.6~80.7% (DC) in chicken muscle tissue. The detection limits validated in muscle tissue by this method were $0.05{\mu}g/g$ for OTC and TC, and $0.1{\mu}g/g$ for CTC and DC.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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