The seed coat of the black soybean contains 3 main anthocyanins such as delphinidin-3-O-$\beta$-glucoside, cyanidin-3-O-$\beta$-glucoside, and petunidin-3-O-$\beta$-glucoside. As a part of our effort on discovering and breeding new black soybean cultivars which possesses specific anthocyanin component rich, we determined the anthocyanin profiles of the 2 cultivars recently developed soybean cv. Gaechuck #1 and cv. Gyeongsang #1, using liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) and compared their content and identity with those of previously known 10 cultivar controls. The Cosmosil-$5C_{18}$-AR-II column were selected for the analysis because of the best peak separation. The column temperature was set up at $35^{\circ}C$. The mobile phase consisting of water containing 0.5%(v/v) formic acid and methanol gave good separation between the 3 anthocyanin analytes and internal standard (quercetin 3-O-$\beta$-rutinoside) and peaks with suppressed tail. The MS/MS spectra of each individual anthocyanin standard were detected in positive electron spray ionization (ESI) modes. It was disclosed that the anthocyanin contents of the soybean cv. Gaechuck#1 and cv. Gyeongsang#1 are roughly higher than those of the 10 controls.
Although, mouse bioassay for the monitoring of azaspiracids (AZAs) toxins in shellfish has been used previously, the reported method has low sensitivity and it is time-consuming. Recently, there is an interest in the quantitative analysis of AZAs using liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). The purpose of this study is to verify the simultaneous analysis of AZAs in shellfish and tunicate in Korea using LC-MS/MS. To validate the method, linearity, limit of detection (LOD), limit of quantification (LOQ), precision, accuracy, and repeatability were determined. All standard compounds were analyzed within 7 min. The correlation coefficients (R2) of the standard solution was higher than 0.9995 (within the range of 0.8-10.0 ㎍/L). The LODs and LOQs of AZAs in shellfish were 0.08-0.16 ㎍/kg and 0.23-0.50 ㎍/kg, respectively. The accuracy and precision of the method for determining AZAs in shellfish were 87.1-93.0% and 1.23-4.91%, respectively. Consequently, the verified LC-MS/MS method is suitable to analyze AZAs in shellfish and tunicates in Korea.
Hyunjin Park;Eunjung Kim;Tae Ho Lee;Sihyun Park;Jang-Duck Choi;Guiim Moon
한국축산식품학회지
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제43권5호
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pp.914-937
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2023
The objective of this study was to establish a multi-residue quantitative method for the analysis of anthelmintic and antiprotozoal drugs in various livestock products (beef, pork, and chicken) using ultra-high-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Each compound performed validation at three different levels i.e., 0.5, 1, and 2× the maximum residue limit according to the CODEX guidelines (CAC/GL 71-2009). This study was conducted according to the modified quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe procedure. The matrix-matched calibrations gave correlation coefficients >0.98, and the obtained recoveries were in the range of 60.2%-119.9%, with coefficients of variation ≤32.0%. Furthermore, the detection and quantification limits of the method were in the ranges of 0.03-3.2 and 0.1-9.7 ㎍/kg, respectively. Moreover, a survey of residual anthelmintic and antiprotozoal drugs was also carried out in 30 samples of beef, pork, and chicken collected in Korea. Toltrazuril sulfone was detected in all three samples. Thus, our results indicated that the developed method is suitable for determining the anthelmintic and antiprotozoal drug contents in livestock products.
Flunixin is a veterinary nonsteroidal anti-inflammatory agent whose residues have been investigated in their original form within tissues such as muscle and liver. However, flunixin remains in milk as a metabolite, and 5-hydroxy flunixin has been used as the primary marker for its surveillance. This study aimed to develop a quantitative method for detecting flunixin and 5-hydroxy flunixin in milk and to strengthen the monitoring system by applying to other livestock and fishery products. Two different methods were compared, and the target compounds were extracted from milk using an organic solvent, purified with C18, concentrated, and reconstituted using a methanol-based solvent. Following filtering, the final sample was analyzed using liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Method 1 is environmentally friendly due to the low use of reagents and is based on a multi-residue, multi-class analysis method approved by the Ministry of Food and Drug Safety. The accuracy and precision of both methods were 84.6%-115% and 0.7%-9.3%, respectively. Owing to the low matrix effect in milk and its convenience, Method 1 was evaluated for other matrices (beef, chicken, egg, flatfish, and shrimp) and its recovery and coefficient of variation are sufficient according to the Codex criteria (CAC/GL 71-2009). The limits of detection and quantification were 2-8 and 5-27 ㎍/kg for flunixin and 2-10 and 6-33 ㎍/kg for 5-hydroxy flunixin, respectively. This study can be used as a monitoring method for a positive list system that regulates veterinary drug residues for all livestock and fisheries products.
Ji, Dong Yoon;Lee, Chang-Wan;Park, Se Hee;Lee, Eun Jig;Lee, Do Yup
Mass Spectrometry Letters
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제8권4호
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pp.109-113
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2017
Single analytical procedure including extraction, liquid chromatography, and mass spectrometric analysis was evaluated for the simultaneous measurement of lysophospholipids (LPLs). LPLs, particularly, lysophosphatidic acids (LPA) and sphingosine 1-phosphate (S1P) are lipid messengers ubiquitously found in various biological matrix. The molecular species mediate important physiological roles in association with many diseases (e.g. cancer, inflammation, and neurodegenerative disease), which emphasize the significance of the simple and reliable analytical method for biomarker discovery and molecular mechanistic understanding. Thus, we developed analytical method mainly focusing on, but not limited by those lipid species S1P and LPA using reverse phase liquid chromatography-tandem mass spectrometry (RPLC-ESI-MS-MS). Extraction method was modified based on Folch method with optimally minimal level of ionization additive (ammonium formate 10 mM and formic acid). Reverse-phase liquid-chromatography was applied for chromatographical separation in combination with negative ionization mode electrospray-coupled Orbitrap mass spectrometry. The method validation was performed on human blood plasma in a non-targeted lipid profiling manner with full-scan MS mode and data-dependent MS/MS. The proposed method presented good inter-assay precision for primary targets, S1P and LPA. Subsequent analysis of other types of LPLs identified a broad range of lysophosphatidylcholines (LPCs) and lysophosphatidyl-ethanolamines (LPEs).
We demonstrated the combined applications of online protein digestion using trypsin immobilized enzyme reactor (IMER) and dual tandem mass spectrometry with collisionally activated dissociation (CAD) and electron transfer dissociation (ETD) for tryptic peptides eluted through the trypsin-IMER. For the trypsin-IMER, the organic and inorganic hybrid monolithic material was used. By employing the trypsin-IMER, the long digestion time could be saved with little or no sacrifice of the digestion efficiency, which was demonstrated for standard protein samples. For three model proteins (cytochrome c, carbonic anhydrase, and bovine serum albumin), the tryptic peptides digested by the IMER were analyzed using LC-MS/MS with the dual application of CAD and ETD. As previously shown by others, the dual application of CAD and ETD increased the sequence coverage in comparison with CAD application only. In particular, ETD was very useful for the analysis of highly-protontated peptide cations, e.g., ${\geq}3+$. The combination approach provided the advantages of both trypsin-IMER and CAD/ETD dual tandem mass spectrometry applications, which are rapid digestion (i.e., 10 min), good digestion efficiency, online coupling of trypsin-IMER and liquid chromatography, and high sequence coverage.
A rapid, sensitive and specific liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) method was developed for the simultaneous determination of four barbiturates (phenobarbital, pentobarbital, amobarbital and secobarbital) in raw milk. The barbiturates were extracted using liquid-liquid extraction, ultrasonication and centrifugation, and purified on an SPE column. Analytes were separated by HPLC on a CSH C18 column eluted using an acetonitrile-water system with a linear gradient dilution programme, and detected by MS/MS. The recoveries of the barbiturates were 85.0-113.5%, and the intra- and inter-assay RSDs were less than 9.8% and 7.3%, respectively. The limit of detection was 5 ng/mL for all four of the barbiturates. The analytical method exhibited good linearity from 10 to 1000 ng/mL; the correlation coefficient ($r^2$) was greater than 0.9950 for each barbiturate. This method was also applied to the determination of barbiturates in real milk samples and was found to be suitable for the determination of veterinary drug residues in raw milk.
A rapid liquid chromatography/tandem mass spectrometry (LC/MS/MS) assay method was developed for the determination of topotecan levels in rat serum. The assay utilized a single liquid-liquid extraction with a mixture of ethy l acetate and acetonitrile (6:1 v/v) and isocratic elution. The multiple reaction monitoring was based on the transition of m/z 422.0$\rightarrow$376.5 for topotecan and 315.1$\rightarrow$226.6 for clomipramine (internal standard). The developed assay was validated to demonstrate the specificity, recovery, lower limit of quantification (LLOQ), accuracy and precision. The assay was linear over a concentration range from 0.5-100 ng/mL, with LLOQ being 0.5 ng/mL using a small volume of rat serum (0.1 mL). The mean intra- and inter-day assay accuracy was 87.7-111.0% and 97.8-108.3, respectively, and the mean intra- and interday precision was between 1.6-4.3% and 3.8-10.3, respectively. The developed assay was applied to a pharmacokinetic study after a bolus i.v. injection of topotecan in rats.
Hur, Yeoun;Tae, Sookil;Koh, Yun-Joo;Hong, Sung-Hyun;Yoon, Young Ho;Jang, Haejong;Kim, Sooji;Kim, Kyeong Ho;Kang, Seung Woo;Lee, Youngshin;Han, Sang Beom
Mass Spectrometry Letters
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제5권2호
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pp.42-48
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2014
A specific and sensitive liquid chromatography-electrospray ionization tandem mass spectrometry method (LC-ESI-MS/MS) was developed and validated for the simultaneous quantification of porphyrins (coproporphyrin, pentacarboxylporphyrin, hexacarboxylporphyrin, heptacarboxylporphyrin, and uroporphyrin) in human plasma and urine. Acidified plasma samples and urine samples were prepared by using liquid-liquid extraction using ethyl acetate and protein precipitation with acetonitrile, respectively. The separation was achieved onto a Synergi Fusion RP column ($150mm{\times}2.0mm$, $4{\mu}m$) with a gradient elution of mobile phase A (0.1% formic acid in 2 mmol/L ammonium acetate, v/v) and mobile phase B (20% methanol in acetonitrile, v/v) at a flow rate of $450{\mu}L$/min. Porphyrins and the internal standard (IS), coproporphyrin I-$^{15}N_4$, were detected by a tandem mass spectrometer equipped with an electrospray ion source operating in positive ion mode. Multiple reaction monitoring (MRM) transitions of the protonated precursor ions and the related product ions were optimized to increase selectivity and sensitivity. The proposed method was validated by assessing selectivity, linearity, limit of quantification (LOQ), precision, accuracy, recovery, and stability. The calibration curves were obtained in the range of 0.1-100 nmol/L and the LOQs were estimated as 0.1 nmol/L for all porphyrins. Results obtained from the validation study of porphyrins showed good accuracy, precision, recovery, and stability. Finally, the proposed method was successfully applied to clinical studies on the autism spectrum disorder (ASD) diagnosis of 203 Korean children.
Grayanotoxin-contaminated honey exhibits toxicity. In this study, a reliable and sensitive liquid-chromatography-tandem-mass-spectrometric method (LC-MS/MS) was developed and validated for the quantitation of grayanotoxin I and grayanotoxin III in honey. The grayanotoxins were extracted from honey via solid phase extraction and separated on a biphenyl column with a mobile phase consisting of 0.5 % acetic acid in water and methanol. Mass spectrometric detection was performed in the multiple-reaction monitoring mode with positive electrospray ionization. The calibration curve covered the range 0.25 to 100 ㎍/g. The intra- and inter-day deviations were less than 10.6 %, and the accuracy was between 94.3 and 114.0 %. The validated method was successfully applied to the determination of grayanotoxins in mad honey from Nepal. The concentrations of grayanotoxin I and grayanotoxin III in 33 out of 60 mad honey samples were 0.75 - 64.86 ㎍/g and 0.25 - 63.99 ㎍/g, respectively. The method established herein would help in preventing and confirming grayanotoxin poisoning.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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