Large quantities of high-quality recipient oocytes with uniform cytoplasm are needed for research in the promising field of somatic cell nuclear transfer (SCNT) and embryonic stem cell research. In canines, however, it is difficult to obtain large quantities of oocytes because each donor produces a limited number of mature oocytes in vivo. Although in vitro maturation (IVM) is considered an alternative approach to oocyte production, this technique is still too rudimentary to be used for the production of highquality, uniform oocytes in large quantities. One technique for overcoming this difficulty is to use oocytes obtained from different species. This technique is known as interspecies SCNT (iSCNT). This review provides an overview of recent advances in canine - porcine interspecies SCNT.
The psbA gene of photo system II was cloned and characterized from the P. ginseng chloroplast. The psbA gene is composed of 1,062 nucleotides. The overall amino acid sequence shows 99% and 98% identities to dicots and monocots of higher plants, respectively. Southern blot analysis revealed that a single copy of the psbA gene existed in the chloroplast genome. Northern blot analysis of the in vivo accumulation of the psbA transcript, after being grown under the different intensities (5%, 10%, 20%, and 100%) of daylight, indicated that the steady-state level of the psbA transcript was not significantly affected by light intensity.
Previously, we have identified 14 putative downstream target genes of Hoxc8 homeoprotein in F9 murine embryonic teratocarcinoma cells through proteomics analysis. Among those, we tested a possibility of a DNA-k type molecular chaperone, Grp78, as a direct downstream target of Hoxc8, by cloning a 2.4 kb upstream region of murine Grp78 into a reporter plasmid and by testing if Hoxc8 can regulate its expression. We observed that Hoxc8 proteins could transactivate the reporter gene, which was affected by small interference RNAs (siRNAs) against to Hoxc8, suggesting that Grp78 is a novel downstream target of Hoxc8 in vivo.
Interleukin-2 enhancer binding factor 2 (ILF2) was reported to regulate transcription of interleukin-2 (IL-2), a central cytokine in the regulation of T-cell responses. This property of ILF2 was well characterized in human and mammals, but little is known in bony fish. In this paper, an ILF2 homologue was cloned and well characterized from Tetraodon nigrovirid is for the further investigation of the function of ILF2 in bony fish. The full-length Tetraodon ILF2 cDNA was 1380 bp in size and contained an open reading frame (ORF) of 1164 bp that translates into a 387 amino-acid peptide with a molecular weight of 42.9 kDa, a 5' untranslated region (UTR) of 57 bp, and a 3' UTR of 159 bp containing a poly A tail. The deduced peptide of Tetraodon ILF2 shared an overall identity of 58%~93% with other known ILF2 sequences, and contained two N-glycosylation sites, two N-myristoylation sites, one RGD cell attachment sequence, six protein kinase C phosphorylation sites, one amino-terminal RGG-rich single-stranded RNA-binding domain, and a DZF zinc-finger nucleic acid binding domain, most of which were highly conserved through species compared. Constitutive expression of Tetraodon ILF2 was observed in all tissues examined, including gill, gut, head kidney, spleen, liver, brain and heart. The highest expression was detected in heart, followed by liver, head kidney and brain. Stimulation with LPS did not significantly alter the expression of Tetraodon ILF2. Gene organization analysis showed that the Tetraodon ILF2 gene have fifteen exons, one more than other known ILF2 genes in human and mouse. Genes up- and down-stream from the Tetraodon ILF2 were Rpa12, Peroxin-11b, Smad4, Snapap and Txnip homologue, which were different from that in human and mouse.
Kim, Min-Jung;Oh, Hyun-Ju;Kim, Geon-A;Jo, Young-Kwang;Choi, Jin;Lee, Byeong-Chun
Journal of Veterinary Clinics
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v.31
no.4
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pp.267-271
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2014
Accurate determination of in vivo oocyte maturation is particularly critical for dog cloning compared to other assisted reproductive technologies because oocytes in metaphase II stage have to be recovered in order to undergo somatic cell nuclear transfer right after its recovery. The aim of present study was to evaluate the reliability and to set a reference range of a chemiluminescence enzyme immunoassay (CLEIA) compared to radioimmunoassay (RIA) method to retrieve in vivo matured oocytes. Serum progesterone concentration during proestrus and estrus was analyzed by RIA and CLEIA to determine ovulation day (Day 0). On Day 3, in vivo oocytes were recovered surgically and evaluated microscopically maturation status after staining nucleus with bisbenzimidazole dye. Mean progesterone concentration by CLEIA ($7.64{\pm}0.06ng/ml$) was significantly higher than by RIA ($6.46{\pm}0.04ng/ml$, P < 0.0001). It was not different between CLEIA ($10.01{\pm}0.34ng/ml$) and RIA values ($7.91{\pm}0.14ng/ml$, P < 0.05) on Day 0, but significantly higher CLEIA level on Day -1 and Day 1 ($6.41{\pm}0.15$ and $14.25{\pm}0.44ng/ml$) was assessed compared to RIA ($4.95{\pm}0.10$ and $11.29{\pm}0.34ng/ml$). However, with both methods, progesterone level was significantly increased from Day -1 to Day 2. To determine oocyte maturation with CLEIA method, a wider and higher reference range has to be considered.
Foxo1 plays an important role in the integration of hormone-activated signaling pathways with the complex transcriptional cascade that promotes preadipocyte differentiation of clonal cell lines from rodents. We isolated the full-length cDNA of porcine FoxO1 gene using RACE, confirmed by visual Northern blotting. The deduced amino acids indicated 94% and 90% identities with the corresponding human and mice aa. Analysis of the aa sequence, showed that it included a Forkhead domain (aa 167-247), a transmembrane structure domain (aa 90-113), a LXXLL motif (aa 469-473), and 51 Ser, 8 Thr, and 4 Tyr phosphorylation sites, indicating a potential important role for FoxO1 transcriptional activity in vivo. Using the IMpRH panel, we mapped FoxO1 gene to chromosome 11p13. Our data provide basic molecular information useful for the further investigation on the function of FoxO1 gene. Time-course analysis of FoxO1 expressions indicated that levels of mRNA and protein gradually increased from day 0 to 3, and it reached almost maximal level at day 3, then decreased from day 5 to 7 in porcine primary preadipocyte differentiation. After induction by IGF-1, GPDH activity and accumulation of lipid increased, however, expressions of FoxO1 mRNA and protein were inhibited in a dose dependent manner. These results suggest that FoxO1 takes part in porcine preadipocyte differentiation and expressions of FoxO1 were regulated by IGF-1.
A Brevibacterium flavum gene coding for glucose permease of the phosphoenolpyruvate-dependent phosphotransferase system (PTS) was cloned by complementing the Escherichia coli ZSCl13 mutations affecting a ptsG gene with the B. flavum genomic library. From the E. coli clone grown as red colony on a MacConkey plate supplemented with glucose as an additional carbon source, a recombinant plasmid was isolated and named pBFT93. The plasmid pBFT93 was identified as carrying a 3.6-kb fragment of B. flavum chromosomal DNA which enables the E. coli transformant to use glucose or man nose as a sole carbon source in an M9 minimal medium. The non-metabolizable sugar analogues, 2-deoxy-D-glucose (2-DG) and methyl-$\alpha$-D-glucopyranoside (MeGlc) affected the growth of ZSCl13 cells carrying the plasmid pBFT93 on minimal medium supplemented with non-PTS carbohydrate, glycerol, as a sole cabon source, while the analogues did not repress the growth of ZSCl13 cells without pBFT93. It was also found that both $2-deoxy-D-[U-^{14}C]glucose{\;}and{\;}methyl-{\alpha}-D-[U-^{14}C]glucopyranoside$ could be effectively transported into ZSCl13 cells transformed with plasmid pBFT93. Several in vivo complementation studies suggested that the B. flavum DNA in pBFT93 encodes a glucose permease specific for glucose and mannose.
A Brevibacterium lactofermentum gene coding for a glucose-specific permease of the phosphoenolpyruvate-dependent phosphotransferase system (PTS) was cloned, by complementing an Escherichia coli mutation affecting a ptsG gene with the B. lactofermentum genomic library, and completely sequenced. The gene was identified as a ptsG, which enables an E. coli transformant to transport non-metabolizable glucose analogue 2-deoxyglucose (2DG). The ptsG gene of B. lactofermentum consists of an open reading frame of 2,025 nucleotides encoding a polypeptide of 674 amino acid residues and a TAA stop codon. The 3' flanking region contains two stem-loop structures which may be involved in transcriptional termination. The deduced amino acid sequence of the B. lactofermentum enzyme $II^{GIe}$ specific to glucose ($EII^{GIe}$) has a high homology with the Corynebacterium glutamicum enzyme $II^{Man}$ specific to glucose and mannose ($EII^{Man}$), and the Brevibacterium ammoniagenes enzyme $II^{GIc}$ specific to glucose ($EII^{GIc}$). The 171-amino-acid C-terminal sequence of the $EII^{Glc}$ is also similar to the Escherichia coli enzyme $IIA^{GIc}$ specific to glucose ($IIA^{GIc}$). It is interesting that the arrangement of the structural domains, IIBCA, of the B. lactofermentum $EII^{GIc}$ protein is identical to that of EIIs specific to sucrose or $\beta$-glucoside. Several in vivo complementation studies indicated that the B. lactofermentum $EII^{Glc}$ protein could replace both $EII^{ Glc}$ and $EIIA^{Glc}$ in an E. coli ptsG mutant or crr mutant, respectively.
Jeong, Yeon Ik;Park, Chi Hun;Kim, Huen Suk;Jeong, Yeon Woo;Lee, Jong Yun;Park, Sun Woo;Lee, Se Yeong;Hyun, Sang Hwan;Kim, Yeun Wook;Shin, Taeyoung;Hwang, Woo Suk
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.26
no.12
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pp.1680-1688
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2013
Many different approaches have been developed to improve the efficiency of animal cloning by somatic cell nuclear transfer (SCNT), one of which is to modify histone acetylation levels using histone deacetylase inhibitors (HDACi) such as trichostatin A (TSA). In the present study, we examined the effect of TSA on in vitro development of porcine embryos derived from SCNT. We found that TSA treatment (50 nM) for 24 h following oocyte activation improved blastocyst formation rates (to 22.0%) compared with 8.9% in the non-treatment group and total cell number of the blastocysts for determining embryo quality also increased significantly ($88.9{\rightarrow}114.4$). Changes in histone acetylation levels as a result of TSA treatment were examined using indirect immunofluorescence and confocal microscopy scanning. Results showed that the histone acetylation level in TSA-treated embryos was higher than that in controls at both acetylated histone H3 lysine 9 (AcH3K9) and acetylated histone H4 lysine 12 (AcH4K12). Next, we compared the expression patterns of seven genes (OCT4, ID1; the pluripotent genes, H19, NNAT, PEG1; the imprinting genes, cytokeratin 8 and 18; the trophoblast marker genes). The SCNT blastocysts both with and without TSA treatment showed lower levels of OCT4, ID1, cytokeratin 8 and 18 than those of the in vivo blastocysts. In the case of the imprinting genes H19 and NNAT, except PEG1, the SCNT blastocysts both with and without TSA treatment showed higher levels than those of the in vivo blastocysts. Although the gene expression patterns between cloned blastocysts and their in vivo counterparts were different regardless of TSA treatment, it appears that several genes in NT blastocysts after TSA treatment showed a slight tendency toward expression patterns of in vivo blastocysts. Our results suggest that TSA treatment may improve preimplantation porcine embryo development following SCNT.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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