Somatic embryogenesis was initiated from in vitro grown leaf explants of rose following an induction period of four weeks on MS basal medium supplemented with auxin and several subcultures on MS medium with cytokinin. '4th of July' showed the highest regeneration frequencies on 1 mg/L NAA followed by culture on medium with 4 mg/L zeatin. The embryogenic callus was propagated on MS medium with NAA, zeatin and $GA_3$. Germination of somatic embryos was achieved on MS medium with 1 mg/L BA. Somatic embryo derived plantlets were hardened and successfully transferred to the greenhouse.
Aloe in vitro culture was attempted to induce callus and regeneration ability from different explant sources onto MS medium with 0.5mg/l NAA plus 1.0mg/l BA. Anthers that no developed any callus and plant regeneration, while only four out of 274 filament explants induced calli at cut edge without regenerated plants. Twenty ovary explants regenerated four direct plantlets without via callus from the base of epidermal tissues. Regenerated plants on the root tip gave 2n=14 of chromosome numbers.
Resistant cell lines to azetidine-2-carboxylic acid (AZCA) were selected through rice embryo culture after mutagenic treatment of callus irradiated with 30,50,70,90 and 120 Gy. The optimum AZCA concentration for the selection of resistant cell lines was 3 or 4 mM AZCA considering $LD_{50}$ and the fresh weight of callus. Survival rate of the AZCA resistant callus showed remarkable increase in the callus irradiated with 50 and 70 Gy. Regeneration rate of the AZCA resistant callus was much lower on the whole. Ninety and 120 Gy increased the regeneration rate for calli selected from 3 and 4 mM AZCA, respectively. Based on fresh weight, survival rate and regeneration for selection of the AZCA resistant cell line, 50-90 Gy was considered as the optimum range of gamma irradiation. Irradiated calli selected from AZCA were more tolerant to NaCl than those from non-irradiated calli. It suggests that elevated resistance to osmotic stress resulted from mutagenic treatment. The level of free proline content in the AZCA resistant cell line was increased up to 3.5 times compared with that in the control. Proline content in the regenerant derived from the AZCA resistant cell line also increased to 1.7 times that from the control plants regenerated from callus grown in AZCA free medium. Selection of proline overproducing cell lines by in vitro mutagenesis was successful and seems to be useful for improvement of stress tolerance in this crop.
Purple passion fruit (Passiflora edulis Sims) is one of the introduced tropical plants, an increasing interest has arisen due to its distinctive taste and attractive flavor. It is expected that passion fruit production and planted area will increase gradually in the years ahead because of high profitability and consumer's demands of healthful ingredients. So we tried to investigate the effect of plant growth regulators and antioxidants on in vitro plant regeneration and callus induction from leaf explants of passion fruit for an establishment of optimal mass propagation system. Young leaf explants of purple passion fruit were cultured in Murashige and Skoog (MS) medium containing different growth regulators and antioxidant additives to induce the shoot organogenesis. After 8 weeks, the highest embryogenic callus formation rate was obtained in MS medium supplemented with $1mg{\cdot}L^{-1}$ 6-benzylaminopurine (BAP) and $2mg{\cdot}L^{-1}$ 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), furthermore, the shoot development via organogenesis was also observed. Silver nitrate ($AgNO_3$), which was added into the medium to minimize the adverse effects of leached phenolics, was effective for reduction of medium browning and sudden explant death. In the medium supplemented with $1mg{\cdot}L^{-1}$ BAP and $1mg{\cdot}L^{-1}$ gibberellic acid ($GA_3$), shoots were most vigorously regenerated and elongated. Most shoots rooted successfully in half strength medium with $1mg{\cdot}L^{-1}$ indol-3 acetic acid (IAA), and more than 90% of plantlets survived after 4-month acclimatization period.
Apple (Malus×domestica Borkh.; Rosaceae) is an important fruit crop grown mainly in temperate regions of the world. Tissue culture in vitro is a biotechnological technique that has been used to genetically improve cultivars (scions) and rootstocks. This could be important in the production of genetically uniform scions and rootstocks for commercial apple production. In nurseries, apple plants are produced by grafting scions onto rootstocks. The Cornell-Geneva (Geneva® series) breeding program has bred several dwarf rootstocks that are resistant to diseases and pests and are also cold hardy. This study was conducted to determine the optimal medium strength to improve sprouting shoot rate of apical meristem of the apple rootstocks of fire blight resistance. The apple rootstocks apical meristem at size (0.2 mm to 0.3 mm) with axillary buds were cultured on the MS(Murashige & Skoog) medium supplemented with plant growth regulators. The sprouting ratio and growth characteristics was evaluated after eight weeks in vitro culture. The highest rate of bud differentiation and shoot formation were 23.8% and 55.6%, respectively. After 6 weeks, shoots were regenerated from apical meristem, and their growth characteristics was significantly varied on the respective basal medium with different plant growth regulators. Our studies showed that the apple rootstocks the apple rootstocks of fire blight resistance plantlets could be successfully produced from apical meristem differentiated out of young twigs via organogenic regeneration.
Kim Young-Sook;Choi Chang-Hak;Kim Hyun-Soon;Ko Jeong-Ae
Plant Resources
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제8권2호
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pp.81-86
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2005
An efficient plant regeneration system of Gentiana scabra through somatic embryogenesis was established. Leaves and roots of seedlings of Gentiana scabra excised after germination were cultured on MS basal medium with 2,4-D, NAA or BA. Embryogenic callus was obtained on MS medium with 0.5 mg/L 2,4-D alone or 0.1 mg/L 2,4-D combimation with 1.0 mg/L BA after 45 days of culture. These embryogenic calli gave rise to somatic embryos, which subsequently developed into plantlets on MS medium without PGRs. Also, shoots were effectively differentiated from embryogenic callus when root segments were cultured on MS medium supplement with 0.1 mg/L 2,4-D and 1.0 mg/L BA. Shoots were effectively rooted on MS medium without PGRs. In vitro flowers were formed from plantlets cultured on MS medium with $5\%$ sucrose after 60 days of culture.
Choi, Kyung-Mi;Hwang, Sung-Jin;Chung, Sang-Jin;Hwang, Baik
한국약용작물학회지
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제14권2호
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pp.87-91
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2006
An efficient plant regeneration of C. asiatica was achieved from organogenesis using petiole explants of in vitro plantlet on MS basal medium controled with different plant growth regulators (NAA,2,4-D, IAA kinetin, and BA). Best results that 50%, efficiency of regeneration per explant for regeneration were obtained with IAA $17.13\;{\mu}M$ and BA $8.9\;{\mu}M$. Formation of adventitious shoots via organogenesis from the petiole explant was verified by histological sectioning of plantlets. Regenerated plants were transplanted into soil.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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