The chestnut blight fungus, Cryphonectria parasitica, and its hypovirus aye a useful model system in the study of the mechanisms of hypoviral infection and its consequences, such as a biological control of fungal pathogens. Strains containing the double-stranded (ds) RNA viruses Cryphonectria hypovirus 1 show characteristic symptoms of hypovirulence and display hypovirulence-associated changes, such as reduced pigmentation, sporulation, laccase production, and oxalate accumulation. Interestingly, symptoms caused by hypoviral infection appear to be the result of aberrant expression of a number of specific genes in the hypovirulent strain. Several viral regulated fungal genes are identified as cutinase gene, Lac1, which encodes an extracellular laccase, Crp, which encodes an abundant tissue-specific cell-surface hydrophobin that mediates physical strength, and Mf2/1 and Mf2/2, which encode pheromone genes involved in poor sporulation in the presence of hypo-virus. Since the phenotypic changes in the fungal host are pleiotropic, although coordinated and specific, it has been suggested that the hypovirus disturbs one or several regulatory pathways (Nuss,1996). Accordingly, several studies have shown the implementation of a signal transduction pathway during viral symptom development. Although further studies are required, hypovirulence and its associated symptom development due to the hypoviral regulation of a fungal hetero-trimeric G-protein have been suggested. In addition, recent studies have shown the presence of a novel protein kinase gene cppk1 and its transcriptional upregulation by hypovirus. In this review, the presence of important components in signal transduction pathway, their putative biological function, and viral-specific regulation will be addressed.
한국미생물학회 2005년도 International Meeting of the Microbiological Society of Korea
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pp.159-161
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2005
Hypovirus infection of the chestnut blight fungus Cryphonectria parasitica is a useful model system to study the hypoviral regulation of fungal gene expression. The hypovirus is known to downregulate the fungal laccase1 (lac 1), the modulation of which is tightly governed by the inositol triphosphate ($IP_3$) and calcium second messenger system in a virus-free strain. We cloned the gene cplc1 encoding a phosphatidyl inositol-specific phospholipase C (PLC), in order to better characterize the fungal gene regulation by hypovirus. Sequence analysis of the cplc1 gene indicated that the protein product contained both the X and Y domains, which are the two conserved regions found in all known PLCs, with a 133 amino acid extension between the 2nd ${\beta}$-strand and the ${\alpha}$-helix in the X domain. In addition, the gene organization appeared to be highly similar to that of a ${\delta}$ type PLC. Disruption of the cplc1 gene resulted in slow growth and produced colonies characterized by little aerial mycelia and deep orange in color. In addition, down regulation of lac1 expression was observed. However, temperature sensitivity, osmosensitivity, virulence, and other hypovirulence-associated characteristics did not differ from the wild-type strain. Functional complementation of the cplc1-null mutant with the PLC1 gene from Saccharomyces cerevisiae restored lac1 expression, which suggests that the cloned gene encodes PLC activity. The present study indicates that the cplc1 gene is required for appropriate mycelial growth, and that it regulates the lac1 expression, which is also modulated by the hypovirus. Although several PLC genes have been identified in various simple eukaryotic organisms, the deletion analysis of the cplc1 gene in this study appears to be the first report on the functional analysis of PLC in filamentous fungi.
We tested for the presence of double-stranded RNA (dsRNA) mycovirus in 827 Fusarium graminearum isolated from diseased barley and maize. dsRNA mycoviruses with various sizes were isolated. Of them, it was previously reported that dsRNA from DK2l isolate had pronounced morphological changes, including reduction in mycelial growth, increased to red pigmentation, reduced virulence and sporulation. (Chu et al., Appl. Environ. Microbiol. 2002). For better understanding of this hypovirulence associated with DK2l dsRNA virus, we determined the complete nucleotide sequence of dsRNA genome and named Fusarium hypovirus DK2l strain (Fhv-DK2l ). Genomic RNA of Fhv-DK2l was determined to be 6625 nucleotides in length excluding the poly (A) tail and contained three putative open reading frame. RNA-dependent RNA polymerase (RdRp) and helicase domain were expected in ORF A, 54 to 4709 nucleotide position. ORE B, 4752 to 5216 nucleotide position, and ORF C, 5475 to 6578 nucleotide position, were predicted to encode 16.7kDa and 41.3kDa protein respectively each. We could not detect any conserved domains from these two proteins. Phylogenetic analysis showed Fhv-DK2l was related to Cryphonectria hypovirus 3. Ten additional isolates were found that were infected with dsRNA mycoviruses. These mycoviruses contain 2 to 4 different segments of dsRNAs with the size range of approximately 1.7 to 10-kbp in length. The presence of dsRNAs isolates did not affect colony morphology and were transmissible through conidia and ascospore with incidence of 30-100%. These results indicate that there is genomic diversity of dsRNA mycoviruses that infect F. graminearum isolates and that impact of virus infection on host's morphology and virulence is determined by the interaction between dsRNAs and the fungal host, not by the mere presence of the dsRNAs
Cryparin은 Cryphonectria parasitica의 세포벽에 풍부한 소수성 단백질에 속한다. cryparin은 비록 하나의 유전자에 의해 발현되지만 액체배양 후 48시간이 지나면 발현된 전체 유전자중에서 22%를 차지할 정도의 높은 발현 양상을 나타낸다. 또한 cryparin은 RNA mycovirus인 Cryphonectria hypovirus 1의 감염에 의해 발현이 현저히 억제되는 유전자로 알려졌다. 이미 지난 실험(Kim et al., 1999)에서 상동염색체간의 재조합을 이용하여 cryparin 유전자를 항생제 hygromycin B 저항성 유전자로 치환한 치환체를 제조하였다. 발현율이 매우 높으면서도 virus에 의해 밀접하게 영향받는 cryparin 유전자의 promoter 분석을 위하여서는 대상이 되는 유전자 치환을 위한 vector만을 포함하며, 분석에 이용될 여러 유전자 운반체들이 어느 한곳에만 삽입되도록 하는 성질을 가진 균주의 개발이 필요하다. 그러나 지난번 실험의 결과 얻어진 cryparin 치환체는 치환용 vector외에도 무작위로 삽입된 vector가 존재하고 나아가 새로운 vector들이 어느 한곳에만 삽입되도록 하는 성질을 갖지 못하였다. 따라서 본 실험에서는 cryparin 유전자 치환체와 영양요구성 돌연변이체인 균주간의 교잡을 이용하여 분석 대상이 되는 유전자의 치환에 이용된 vector만을 포함하며, 분석에 이용될 여러 유전자 운반체들이 genome내의 어느 한곳에만 삽입되도록 하는 성질을 가진 균주를 제조하였다.
Kim, Myoung-Ju;Kwon, Bo-Ra;Park, Seung-Moon;Chung, Hea-Jong;Yang, Moon-Sik;Churchill, Alice C.L.;Van Alfen, Neal K.;Kim, Dae-Hyuk
Molecules and Cells
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제26권5호
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pp.496-502
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2008
Cryparin, encoded as a single copy gene (Crp) of the chestnut blight fungus Cryphonectria parasitica, is the most abundant protein produced by this fungus. However, its accumulation is decreased remarkably in C. parastica strains containing the double-stranded (ds) RNA virus Cryphonectria hypovirus 1. To characterize the transcriptional regulatory element(s) for strong expression and viral regulation, promoter analysis was conducted. Serial deletion of the Crp promoter region resulted in a step-wise decrease in promoter activity, indicating a localized distribution of genetic elements in the cryparin promoter. Promoter analysis indicated two positive and a repressive cis-acting elements. Among them, the promoter region between nt -1,282 and -907 appeared to be necessary for hypoviral-mediated down-regulation. An electrophoretic mobility shift assay (EMSA) on the corresponding promoter region (-1,282/-907) indicated two regions at (-1,257/-1,158) and (-1,107/-1,008) with the characteristic AGGAGGA-N42-GAGAGGA and its inverted repeat TCCTCTC-N54-TCCTCCT, respectively, appeared to be specific binding sites for cellular factors.
So, Kum-Kang;Ko, Yo-Han;Chun, Jeesun;Kim, Jung-Mi;Kim, Dae-Hyuk
한국균학회소식:학술대회논문집
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한국균학회 2018년도 춘계학술대회 및 임시총회
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pp.11-11
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2018
Cryphonectria parasitica, chestnut blight fungus, has a characteristic of decreasing pathogenicity when infected with Cryphonectria hypovirus 1. C. parasitica is known to be one of the most representative model systems used to observe the interaction between viruses, plants and fungi. The mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathway, which is well conserved in various organisms ranging from yeast to humans, functions in relaying phosphorylation-dependent signals within MAPK cascades to diverse cellular functions involved in the regulation of pheromone, cell wall integrity, and osmotolerance in filamentous fungi. Several genes in the MAPK pathway were revealed to be regulated by hypovirus, or to be involved in pathogenicity in C. parasitica. Among these pathways, the CWI pathway has aroused interest because CpBck1, an ortholog of yeast Bck1 (a CWI MAPKKK), was previously reported to be involved in cell wall integrity and sectorization. Interestingly, sporadic sectorization was observed in the CpBck1 mutant and sectored phenotypes were stably inherited in the progeny that were successively transferred from sectored mycelia. In this study, we analyzed the biological function of CpSlt2, downstream gene of CpBck1, to confirm whether the sectorization phenomenon occurred in the specific single gene or cell wall integrity (CWI) pathway. As results, the CpSlt2-null mutant exhibited marked changes in colonial growth, near absence of conidiation and aerial hyphae, abnormal pigmentation, CWI-related phenotypic defects, and dramatically impaired virulence. As cultivation of the mutant strains progressed, the majority of the colonies showed sporadic sectorization and mycelia from the sectored area stably maintained the sectored phenotype. These results suggest that the unique sectorization is CWI pathway-specific, though the components in the same CWI pathway have common and specific functions.
유전자의 삽입에 의해 발생하는 C. parasitica의 돌연변이체중 mycovirus에 감염된 것과 같이 색소와 포자를 적게 형성하는 균주(HSM1)를 선발하였다. 선발된 균주는 형태학적 병징외에도 laccase효소의 역가와 같은 생화학적 그리고 표지 유전자들을 통해 분자 생물학적인 특징도 virus에 감염된 균주와 동일한 특징을 나타냈다. HSM1에서 돌연변이가 일어날 부위를 cloning하여 조사한 결과, 유전자 삽입 부위는 C. parasitica의 두 유전자(Cpg2와Cpg3)의 사이(intergenic space)이며 유전자의 삽입 결과, HSM1에서 Cpg2의 발현이 오히려 증가됨이 관찰되었고, 나아가 이와 같은 현상은 mycovirus 감염 균주(UEP1)에서도 일어나고 있음을 확인하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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