Park, Jin-Soon;Hwang, In-Wook;Zheng, Hu-Zhe;Kim, Suk-Kyung;Chung, Shin-Kyo
Food Science and Preservation
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v.17
no.2
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pp.261-266
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2010
Acidic hydrolysis conditions prior to HPLC analysis of plant flavonoids was investigated by response surface methodology (RSM), using leaves of Ginkgo biloba L. Ten hydrolysis conditions using 0.5-2.5 M HCl and 0.5-2.5 hr hydrolysis time were chosen to form a central composite rotatable design (CCRD), and optimization by RSM was achieved by measuring myricetin, quercetin, and kaempferol levels by HPLC. Optimum hydrolysis condition was 1.5 M HCl for 1.5 hr. The levels of flavonoids obtained under the condition were in good agreement with predicted maximum values, with yields of more than 95%. These optimum hydrolysis condition was applied to analysis of flavonoid content in the leaves of Camellia sinensis, Ficus carica, and Sageretia theezans.
Journal of the Korean Society of Clothing and Textiles
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v.37
no.7
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pp.962-971
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2013
We compared the effectiveness of amidase (amano acylase, AA) and an endopeptidase, (trypsin, TR) in modifying the hydrophobicity of polyamide fabric. We evaluated the number of amino groups released into the reaction mixture in order to optimize the treatment conditions. We found that a large number of amino groups were released into the reaction mixture due to the cleavage of amide bonds by AA hydrolysis; however, the TR hydrolysis exhibited a relatively lower activity compared to AA hydrolysis. In AA and TR hydrolysis, significant differences were observed in the K/S values and moisture regain. Amide bonds in polyamide fabric were hydrolyzed by AA hydrolysis effectively. Compared to TR, AA formed more hydrolysis product (amino groups) on the fabric surface. Thus, the hydrophobicity of polyamide fabric was modified using AA hydrolysis (as verified by the wettability test) without any deterioration of fiber strength.
Sh. R. Madyarov;Yeo, Joo-Hong;Lee, Kwang-Gill;Lee, Yong-Woo
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.2
no.1
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pp.7-13
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2001
Enzymatic hydrolysis of different forms of silk fibroin (soluble, gel and insoluble forms) by industrial and commercial enzyme preparations to obtain aqueous and powdered silk fibroin in relatively mild conditions was investigated. A mono-enzymatic hydrolysate systems were tested for hydrolysis of water-soluble form of fibroin as most productive form of protein substrate. Insoluble forms of substrate usually were hydrolyzed less effective. In some cases from soluble fibroin substrate gel was formed during hydrolysis process. This hindered intermixing and decreased rates of hydrolysis. Insoluble sediments were formed in enzymatic hydrolysates in other cases. These sediments and also sediment after chemical hydrolysis were purified and tested on amino acids content for comparison. Sediments formation in these conditions are considered as pure tyrosine isolation method. Obtained hydrolysates were characterized by gel-chromatography analysis and other standard biochemical methods. Possibility of application of enzymatic hydrolysis for preparation of silk fibroin hydrolysates is discussed.
Ethanol productions were performed by separate hydrolysis and fermentation (SHF) and simultaneous saccharification and fermentation (SSF) processes using seaweed, Enteromorpha intestinalis (sea lettuce). Pretreatment conditions were optimized by the performing thermal acid hydrolysis and enzymatic hydrolysis for the increase of ethanol yield. The pretreatment by thermal acid hydrolysis was carried out with different sulfuric acid concentrations in the range of 25 mM to 75 mM $H_2SO_4$, pretreatment time from 30 to 90 minutes and solid contents of seaweed powder in the range of 10~16% (w/v). Optimal pretreatment conditions were determined as 75 mM $H_2SO_4$ and 13% (w/v) slurry at $121^{\circ}C$ for 60 min. For the further saccharification, enzymatic hydrolysis was performed by the addition of commercial enzymes, Celluclast 1.5 L and Viscozyme L, after the neutralization. A maximum reducing sugar concentration of 40.4 g/L was obtained with 73% of theoretical yield from total carbohydrate. The ethanol concentration of 8.6 g/L of SHF process and 7.6 g/L of SSF process were obtained by the yeast, Saccharomyces cerevisiae KCTC 1126, with the inoculation cell density of 0.2 g dcw/L.
Jo, Jin-Ho;Do, Jeong-Ryong;Kim, Young-Moung;Kim, Dong-Soo;Lee, Taek-Kyun;Kim, Seon-Bong;Cho, Seung-Mock;Kang, Suk-Nam;Park, Douck-Choun
Food Science and Biotechnology
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v.14
no.5
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pp.651-655
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2005
Enzymatic hydrolysis of shark (Squatina oculata) cartilage (SC) was optimized by response surface methodology (RSM) for chondroitin sulfate (CS) preparation. Among 11 commercial proteases, Maxazyme NNP showed highest productivity (CS yield per enzyme cost) of CS. Optimal hydrolysis conditions determined by RSM were 1.63% and 2.87 hr for enzyme concentration and hydrolysis time ($r^2\;=\;0.9527$, p<0.0l), respectively and highest yield of hydrolysate under the conditions was 42.3%. The yield ($43.1{\pm}2.1%$) and CS content ($24.8{\pm}0.1%$) of hydrolysate at optimal condition verified statistical optimization of SC enzymatic hydrolysis was valid.
Waste paper stands for the major biodegradable organic fraction of most of municipal solid waste. The potential of waste paper for glucose production was investigated in this current work. The pretreatment was accomplished by first subjecting waste paper to disintegration time (30 s), followed by ink removal of disintegrated waste paper using an deinking agent. Concentrated acid hydrolysis of waste paper with sulfuric acid was optimized to maximize glucose conversion. The concentrated acid hydrolysis conditions for waste paper (disintegrated time: 30 s, deinking agent loading : 15 ml) were optimized by using central composite design and response surface methodology. The optimization process employed a central composite design, where the investigated variables were acid concentration (60~80%), loading sulfuric acid (1~5 ml) and reaction time (1~5 h). All the tested variables were identified to have significant effects (p < 0.05) on glucose conversion. The optimum concentrated acid hydrolysis conditions were acid concentration of 70.8%, loading sulfuric acid of 3.2 ml and a reaction time of 3.6 h. This research of concentrated acid hydrolysis was a promising method to improve glucose conversion for waste paper.
The hydrolysis of penicillin G, carbenicillin and ampicillin in pure water at room temperature was studied by high pressure liquid chromatography electrospray ionization mass spectrometry. Hydrolysis of ampicillin did not occur under these conditions; however, penicillin G and carbenicillin were completely hydrolyzed after seven days. A short interpretation of this difference is proposed. The mass spectrometric behaviour, namely ESI response and fragmentation pathway, of hydrolyzed penicillin G and hydrolyzed carbenicillin have been also discussed.
We investigated the optimum conditions for conversion of water-insoluble components of basidiocarps of Ganoderma lucidum to water-soluble components by hydrolyzing with chitinase. We also tried it with Ganoderma luciclum residue remaining after extracting hot water-soluble components of Ganoderma lucidum. After hydrolyzing under optimum conditions (20 ppm chitinase, 2% Ganoderma lucidum or 6% Ganoderma lucidum residue, at pH 3 and at $ 35^{\circ}C$), the contents of total water-soluble components (polysaccharide or protein) were measured, and it was found that the contents of water-soluble components increased to 1.5-2.7 fold. Michaelis constant, $K_m$ and maximum rate, $V_max$ calculated by Lineweaver-Burk plot for hydrolysis of Ganoderma lucidum were 1.75% and 0.02%/min respectively and those for hydrolysis of Ganoderma lucidum residue were 53.15% and 0.53%/min respectively The protein-bound polysaccharide was isolated after hydrolysis and molecular weights were measured by Sepharose CL-4B gel filtration and compared with the molecular weights of polysaccharide before hydrolysis.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.24
no.3
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pp.427-433
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1995
The optimal condition for hydrolysis of oyster was evaluated with proteases using response surface methodology(RSM). Among 11 commerical proteases, APLTM 440 was selected as the suitable protease for producing oyster hydrolysate on the basis of cost per unit enzyme activity. The effect of autolysis on degree of hydrolysis in oyster was negligible comparing to that of APL 440 protease treatment. From RSM and ridge analysis, the conditions favoring the highest degree of hydrolysis were pH 9.95, 61.1$^{\circ}C$, 2.64 hr reaction time, 49.2% substrate, and 0.35% enzyme/substrate ratio. Oyster hydrolysate prepared under optimal conditions shwoed virtually 51.98% of hydrolysis.
The hydrolysis conditions of blue mussel were evaluated by response surface methodology(RSM) for the alkaline protease Optimise TM APL-440 . Conditions favoring the highest degree of hydrolysis in blue mussel were pH 9,8, 58$^{\circ}C$ reaction temperature, 2,9 hrs reaction time, 46.8%(w/v) substrate concentration, and 0.34%(v/w) enzym $e_strate ratio. Levels of n-3 fatty acids, e.g.C18 : 3, C18 : 4, and C20 : 5, did not change after hydrolysis in blue mussel sample.le.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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