The effects of simazine [2-chloro-4, 6-bis(methylamino)-s-triazine] on in vivo nitrogenase, glutamine synthetase, glutamate synthase, and glutamate dehydrogenase which are important in nitrogen assimilation of Rhodopseudomonas sphaeroides were investigated. Simazine inhibited the synthesis of nitrogenase and glutamine synthetase. The activity of glutamine synthetase in crude extracts of Rhodopseudomonas sphaeroides is less inhibited by simazine than that of glutamate synthase and glutamate dehydrogenase. These results suggest the possibility that simazine inhibits photosynthetic activity and so inhibits the synthesis of nitrogenase and glutamine synthetase in Rhodopseudomonas sphaeroides.
Chlorobium liimicola f. thiosulfatophilum NCIB 8327 was grown on modified Pfennig's medium using ammonium chloride. glutamine. glutamate, or dinitrogen gas as nitrogen sources. Except for the case of dinitrogen gas. the extent of gro\\1h was almost the s~me. The specific activity of glutamine synthetase in crude extracts is the highest in the cells which were grown on the medium containing glutamate. hut that of glutamate synthase is uniform for all four nitrogen sources. When the concentration of ammonium ions increases in the reaction mixture. the specific activity of glutamine synthetase in crude extract from the cells grown on glutamate decreases. hut that of glutamate dehydrogenase increases. whereas that of glutamate synthase remains unchanged. When the concentration of methionine sulfoximine increases, the activity of glutamine synthetases decreases rapidly. On the other hand. when the concentration of ammonium ions increases in the reaction mixture gradually. the activity of glutamine synthetase from the cells grown on higher concentration of ammonium ions less decreases. In the presence of light. the activity of glutamine synthetase increases. hut in the dark it decreases gradually. The production of hydrogen in intact cells depends on light. It is inhihited by adding ammonium ions. hut restores immediately hy adding methionine sulfoximine. The produclion of hydrogen in this strain can he mediated by nitrogenase only. and regulated hy glutamine synthetase.
The aim of the present study was to investigate the effect of glutamate on the biosynthesis of tylosin. Activities of enzymes involved in the metabolic pathway of glutamate to form tylactone, an essential precursor of tylosin, were determined using Streptomyces fradiae grown at different concentration of glutamate. As results, it was found that cell growth and tylactone formation was controlled by the metabolic flux of oxaloacetate. It was clear that cell growth was favored by the activities of citrate synthase and aspartate aminotransferase, while the tylactone synthesis was stimulated by the activity of methylmalonyl-CoA carboxyltransferase. Therefore it was concluded that channelling of oxaloacetate was a point for favoring either cell growth or tylosin biosynthesis.
Two pathways of ammonium assimilation and glutamate biosynthesis have been identified in microorganisms. One pathway involves the NADP-linked glutamate dehydrogenase, which catalyzes the amination of 2-oxoglutarate to form glutamate. An alternative pathway involves the combined activities of glutamine synthetase, which aminates glutamate to form glutamine, and glutamate synthase, which transfers the amide group of glutamine to 2-oxoglutarate to yield two molecules of glutamate. We have cloned the large subunit of the glutamate synthase (GOGAT) from Salmonella typhimurium by screening the expression of GOGAT and complementing the gene in E. coli GOGAT large subunit-deficient mutants. Three positive clones (named pUC19C12, pUC19C13 and pUC19C15) contained identical Sau3AI fragments, as determined by restriction mapping and Southern hybridization, and expressed GOGAT efficiently and constitutively using its own promoter in the heterologous host. The coding region expressed in Escherichia coli was about 170 kDa on SDS-PAGE. This gene spans 4,732 bases, contains an open reading frame of 4,458 nucleotides, and encodes a mature protein of 1,486 amino acid residues (Mr =166,208). The EMN-binding domain of GOGAT contains 12 glycine residues, and the 3Fe-4S cluster has 3 cysteine residues. The comparison of the translated amino acid sequence of the Salmonella GOGAT with sequences from other bacteria such as Escherichia coli, Salmonella enterica, Shigella flexneri, Yersinia pestis, Vibrio vulnificus and Pseudomonas aeruginosa shows sequence identity between 87 and 95%.
Investigations on the liability of nitrogen usuage by Nostoc muscorum that has nitrogen fixing ability, and cultured tobacco cells as they were associately cultured on nitrogen-free media and effects of polyamine on the associated culture condition were carried out. In addition, measurement on the activity of nitrate reductase, glutamine synthetase, glutamate dehydrogenase and glutamate synthase that take part in the metabolic pathway of nitrogen fixation product were performed. Among enzymes participating in the metabolic pathway of nitrogen fixation products, the activity of nitrogen reductase stimulated five times in associated culture, and that of glutamine synthetase of N. muscorum increased two times after heterocyst differentiated. Activity of glutamate dehydrogenase increased markedly when cultured tobacco cells were solely incubated on nitrogen-free media, but inhibited when cultured associately. And, glutamate synthase was showed the highest activity in 0.1 mM of spermine treated group.
These studies were designed to examine the differential effect of nitric oxide (NO) and cGMP on glutamate neurotransmission. In primary cultures of rat cerebellar granule cells, the glutamate receptor agonist N-methyl-D-aspartate (NMDA) stimulates the elevation of intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]_i$), the release of glutamate, the synthesis of NO and an increase of cGMP. Although NO has been shown to stimulate guanylyl cyclase, it is unclear yet whether NO alters the NMDA-induced glutamate release and ${[Ca^{2+}]}_i$ elevation. We showed that the NO synthase inhibitor, NG-monomethyl-L-arginine (NMMA), partially prevented the NMDA-induced release of glutamate and elevation of ${[Ca^{2+}]}_i$ and completely blocked the elevation of cGMP. These effects of NO on glutamate release and [Ca2+]i elevation were unlikely to be secondary to cGMP as the cGMP analogue, dibutyryl cGMP (dBcGMP), did not suppress the effects of NMDA. Rather, dBcGMP slightly augmented the NMDA-induced elevation of ${[Ca^{2+}]}_i$ with no change in the basal level of glutamate or ${[Ca^{2+}]}_i$. The extracellular NO scavenger hydroxocobalamine prevented the NMDA-induced release of glutamate providing indirect evidence that the effect of NO may act on the NMDA receptor. These results suggest that low concentration of NO has a role in maintaining the NMDA receptor activation in a cGMP-independent manner.
In order to understand the regulation of glutamate dehydrogenase(GDH) synthesis in Brevibacterium flavum, we have isolated a mutant lacking NADP-linked GDH activity by ethlmethane sulfonate treatment. The $gdh^-$ mutant was grown on the minimal plate with 1mM ammonium chloride and not that with 300mM ammonium chloride. The cell-free extracts from $gdh^-$ mutant and prototroph were also examined with glutamine synthetase(GS) and glutamate synthase (GOGAT) production by niteogen sources. The growth of $gdh^-$ mutant in presence of 20mM ammonium chloride means that GOGAT synthesis is sufficient to allow growth in this condition. GS production of $gdh^-$ mutant as well as parental strain was induced by 1mM urea and ammonium tartrate, but it was repressed by higher concentration of ammonia, and also induced by 20mM to 50mM glutamate as a substrate. It was special attention that GOGAT synthesis from $gdh^-$ strain was more repressed by higher concentration of ammonia than prototroph as described in E. coli system.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1986.12a
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pp.517.2-517
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1986
The regulation of 3 ammonia assimilatory enzymes GDH(glutamate dehydrogenase), GS(glutamine synthetase) and GOGAT (glutamate synthase), have been examined in C. glutamicum for the biosynthesis of glutamate and glutmine. The cell free extracts of 3 kinds of arg, his and trp auxotrophs were investigated the activities of -ketoglutarate dehydrogenase, GDH, GS, and GOGAT on the media cultured with nitrogen excess and limiting conditions. Trp and his howed higher level of glutamate and glutamine than that of parental strain. The inhibition of GS activities by ADP suggested that GS is regulated by energy charge in C. glutamicum. The results with his, trp, glyc, ala, ser, and GMP implied that a system of feedback inhibition were effective. Three enzyme biosynthesis is repressed by nitrogen sources such as trp, pro, glyc, ala, ser and tyrosine.
Enzymatic micro-assay methods were studied those were capable of determining ammonia down to 10$^{-5}$M(0.01 $\mu$mole/ml) in the presence of other nitrogenous compounds such as protein and amino acid. Microquantities of ammonia (0.01-0.1 $\mu$mole) could be determined indirectly by measuring phosphorous, one of the products of the enzymatic reaction catalyzed by glutamine synthetase. In this reaction, L-glutamate, ATP and ammonium chloride were used as substrates, and phosphorous was formed in propotion to the concentration of ammonium chloride In the reaction mixture. Another procedure was examined in which glutamine synthetase reaction coupled with pyruvate kinase and lactate dehydrogenase reactions was used. One mililiter of the assay mixture contained; phosphoenol pyruvate, 3 mM, L-glutamate, 10 mM; ATP, 1mM: MgSO$_4$, 20 mM: KCl, 75mM: NADH, 0.2mM: Tris-HCl buffer(pH 7.0), 100mM; pyruvate kinase, 10 U: lactate dehydrogenase, 12 U and glutamine synthetase, 4 U. After preincubation for 20 min at 3$0^{\circ}C$, NH$_4$Cl was added and the rates of NADH oxidation were followed at 340nm. The effective range of this method was proved to be from 0.01 to 0.05 $\mu$mole/$m{\ell}$. Glutamine synthetase reaction coupled with glutamate synthase reaction could also be effectively used for determining microquantities of ammonia. The one mililiter assay mixture contained; ATP, 5mM: L-glutamate, 5mM; L-ketoglutarate, 5mM; MgCl$_2$, 15mM; NADPH, 0.15mM; Tris-HCl buffer(pH 7.0); 100mM; glutamine synthetase, 1U and glutamate synthase, 0.5U. After preincubation for 20min at 3$0^{\circ}C$ NH$_4$Cl was added and the rates of NADPH oxidation were followed at 340nm. The effective range of this procedure was appeared to be from 0.01 to 0.05$\mu$mole/$m{\ell}$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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