The effect of diacylglycerol on glucose release was studied by using 1,2-dioctanoyl-sn-glycerol ($diC_8$), a cell permeable diacylglycerol, in perfused rat liver. The glucose release was increased by $diC_8(50\;{\mu}M$), and the effect was depended on calcium ions. The increment of glucose release by $diC_8(50\;{\mu}M$) was inhibited by indomethacin ($50\;{\mu}M$); the amount of glucose release was almost the same with that of control group. Arachidonic acid($200\;{\mu}M$) also increased glucose release and the release was inhibited by indomethacin. There was no synergistic effect on glucose release by the combination of $diC_8(50\;{\mu}M$) and phenylephrine($10\;{\mu}M$).
Effects of glucose on the catecholamine release from the hypothalamic fragments in vitro were studied. Basal release of catecholamines was inversely related to the concentrations $(5{\sim}30\;mM)$ of glucose in the incubation medium. Glucose did not affect the 30 mM $K{^+}-stimulated$ release of catecholamine. In the presence of tetrodotoxin $(10\;{\mu}M)$, the inhibitory effect of glucose on the basal release of catecholamines was largely persisted, but the inhibitory effect of 30 mM glucose on dopamine release was largerly blocked. In the presence of both tetrodotoxin $(10\;{\mu}M)$ and desipramine $(3\;{\mu}M)$, glucose failed to affect the basal catecholamine release. The results suggest that glucose modulates the catecholamine release through a direct action on the catecholaminergic nerve terminals, as well as through a trans-synaptical action. The glucose-modulation of the catecholamine release may explain, at least in part, the diabetes-induced changes in the hypothalamic catecholamine metabolism.
During cerebral ischemia two important factors such as hypoxia and reduction of glucose can act as modulating stressor affecting the release of amine neurotransmitters including 5-hydroxytryptamine (5-HT). This study was performed to investigate the effect of glucose deprivation on the oxygen deprivation-induced changes of [3H]-5-HT release in the rat hippocampal slices. Experimental groups were divided into 4 groups for this study: normoxic/normoglycemic group, oxygen-deprived group, glucose-deprived group, and oxygen/glucose-deprived group. The hippocampus of rat brain was sliced by 400 $\mu\textrm{m}$ thickness with manual chopper. After 30 minutes preincubation in the normal buffer, the slices were incubated for 20 min in buffer containing [3H]-5-HT (0.1 M, 74 $\mu\textrm$Ci) for uptake. To measure the release of [3H]-5-HT into the buffer, the incubation medium was drained of and refilled with fresh buffer every ten minutes through a sequence of 14 tubes. Oxygen deprivation by gassing with 95% $N_2$/5% $CO_2$ and/or glucose deprivation was done in the 6th and 7th tube. The radioactivities in each buffer and the tissue were counted using scintillation counter. The results were expressed as fractional release. When slices were exposed to oxygen-deprived media for 20 min, the diminution followed by the rebound release of [3H]-5-HT was observed during the post-oxygen deprived period. However, glucose deprivation or oxygen/glucose deprivation markedly increased the release of [3H]-5-HT. which was opposite to the pattern observed in oxygen-deprived group. These results suggested that oxygen deprivation itself inhibits [3H]-5-HT release in rat hippocampal slices during oxygen-deprived period, but additional glucose deprivation convert the inhibitory response to increase of [3H]-5-HT release.
In this research, investigations were made on the effect of type and load of organic substrate on phosphorus release. Reactors of three different sizes were operated, being fed on five kinds of organic substrates. The quantitative analyses were made on phosphorus release and substrate utilization under anaerobic condition. The molar ratios of the uptaken organic substrate to the released phosphorus were 0.5 with acetate, 0.6 with glucose, 0.8 with glucose/acetate, and 1.2 with glucose/acids, respectively. The phosphorus release was inhibited at the higher organic load than the normal at stead state. Both acetate and acids/glucose enhanced phosphorus release- as well as uptake-rate, however, the complete phosphorus removal was achieved after the microbial adaptation to the new environment. In case with acetate, operation was hampered by the poor sludge settleability and phosphorus uptake was not enough although the phosphorus release was active. But with milk/starch, the phosphorus release and uptake was well developed even though phosphorus release was not comparatively high. From this study, it was concluded that organic substrates, such as glucose seemed to be converted fatty acids after fast bio-sorption, followed by concurrent uptake of these acids by excess phosphorus removing bacteria.
A further purified fraction (D-O-ANa) was obtained from DPG 3-2 fraction of Ginseng Radix by complete removal of saponins, nucleosides, nucleic acid bases, amino acids, and sugars. D-O-ANa - induced insulin release was investigated to compare with that of DPG 3-2 and other isolated components. Among the sub fractions of DPG 3-2, D-O-ANa exhibited the most potent release of insulin with or without high concentrations of glucose, and it particularly enhanced the second phase of glucose-induced insulin release. DGP 3-2 potentiated significantly the glucose-induced insulin release from the isolated islets of diabetic mice at increasing concentrations of extracellular calcium ions (0.16 - 2.5 mM). A definite relationship was found between calcium $(^{45}Ca)$ uptake and insulin release. Ginsenoside $(G)-Rb_1\;and\;G-Rg_1$ did not enhance the glucose-induced insulin release. The effect of ginseng saponins was blocked by glucose (16.7 mM), being distinctly different from the glucose-potentiated effect of DPG 3-2. The insulin release effect of $G-Rg_1$ was unaffected by the presence or absence of extracellular $Ca^{2+}$ and theophylline. Adenosine also increased insulin release from isolated islets, but had no effect on perfused rat pancreas. Arginine stimulated insulin release less evidently than D-O-ANa, though arginineand adenosine-induced glucagon releases were more remarkable. In conclusion, D-O-ANa appears to be a major fraction in insulin release activity of ginseng and its mode of action may be related to $Ca^{2+}$ ion uptake. This physiological mechanism was distinct from that of the abnormal release induced by ginseng saponins.
It has been well documented that a massive release of not only glutamate but also other neurotransmitters may modulate the final responses of nerve cells to the ischemic neuronal injury. But there is no information regarding whether the release of monoamines is directly associated with synaptic vesicular proteins under ischemia. In the present study, it was investigated whether synapsin 1, syntaxin and SNAP-25 are involved in the release of 5-hydroxytryptamine $([^3H]5-HT)$ in glucose/oxygen deprived (GOD) rat hippocampal slices. And, the effect of NMDA receptor using DL-2-amino-5-phosphonovaleric acid (APV) on ischemia- induced release of 5-HT and the changes of the above proteins were also investigated. GOD for 20 minutes enhanced release of $[^3H]5-HT,$ which was in part blocked by the NMDA receptor antagonist, APV. The augmented expression of synapsin 1 during GOD for 20 minutes, which was also in part prevented by APV. In contrast, the expression of syntaxin and SNAP-25 were not altered during GOD. These results suggest that ischemic insult induces release of $[^3H]5-HT$ associated with synapsin 1, synaptic vesicular protein, via activation of NMDA receptor in part.
The effects of adenosine, adenosine A1 receptor antagonist (DPCPX), or NMDA receptor antagonist (APV) on the spontaneous release of $[^3H]-5-hydroxytryptamine$ ($[^3H]-5-HT$) during normoxic/normoglycemic or hypoxic/hypoglycemic period were studied in the rat hippocampal slices. The hippocampus was obtained from the rat brain and sliced $400\;{\mu}m$ thickness with the tissue slicer. After 30 min's preincubation in the normal buffer, the slices were incubated for 30 min in a buffer containing $[^3H]-5-HT$ ($0.1\;{\mu}M,\;74{\mu}Ci/8\;ml$) for uptake, and washed. To measure the release of $[^3H]-5-HT$ into the buffer, the incubation medium was drained off and refilled every ten minutes through sequence of 14 tubes. Induction of glucose/oxygen deprivation (GOD; medium depleting glucose and gassed with 95% $N_2/5%\;CO_2$) was done in 6th and 7th tube. The radioactivities in each buffer and the tissue were counted using liquid scintillation counter and the results were expressed as a percentage of the total radioactivities. When slices were exposed to GOD for 20 mins, the spontaneous release of $[^3H]-5-HT$ was markedly increased and this increase of $[^3H]-5-HT$ release was blocked by adenosine ($10\;{\mu}M$) or DL-2-amino-5-phosphonovaleric acid (APV; $30\;{\mu}M$). Adenosine $A_1$ receptor specific antagonist, 8-cyclopentyl-1,3-dipropylxanthine (DPCPX) exacerbate GOD-induced increase of spontaneous release of $[^3H]-5-HT$. These results suggest that Adenosine may play a role in the GOD-induced spontaneous release of $[^3H]-5-HT$ through adenosine $A_1$ receptor activity.
Recently, we reported that immunostimulation of primary rat cortical astrocyte caused stimulation of glucose deprivation induced apoptotic cell death. To enhance the understanding of the mechanism of the potentiated cell death of clucose-deprived astrocyte by immunostimulation, we investigated the effect of immunostimulation on the glucose deprivation induced cell death of rat C6 glioma cells. Co-treatment of C6 glioma cells with lipopolysaccharide (LPS, $1\;{\mu}\textrm{g}/ml$) and interferon ${\gamma}(IFN{\gamma},\;100U/ml)$ is serum free condition caused marked elevationo f nitric oxide production ($>50\;{\mu}M$). In this condition, glucose deprivation caused significant release of lactate dehdrogenase (LDH) from C6 glioma cells while control cells did not show LDH release. To investigate whether elevated level of nitric oxide is responsible for the enhanced LDH release in glucose-deprived condition, C6 glioma cells were treated with 3-morphorinosydnonimine (SIN-1) and it was observed that SIN-1 caused increase in LDH release from glucose-deprived C6 glioma cells. Treatment of C6 glioma cells with $25\;{\mu}M$ of pyrrolidinedithiocarbamate (PDTC) which inhibit Nuclear factor kB (NF-kB) activation, caused complete inhibition of nitric oxide production. Treatment of C6 glioma cells with NO synthase inhibitors, $N^{G}$-nitro-L-arginine (NNA) or L-$N{\omega}$-nitro-L-arginine methyl ester (L-NAME), caused inhibition of nitric oxide production and also glucose deprivation induced cell death of cytokine-stimulated C6 glioma cells. In addition, diaminohydroxypyrimidine (DAHP, 5 mM) which inhibits the synthesis of tetrahydrobiopterine (BH4), one of essential cofactors for iNOS activity, caused complete inhibition of NO production from immunostimulated C6 glioma cells. The results from the present study suggest that immunostimulation causes potentiation of glucose deprivation induced death of C6 glioma cells which is mediated at least in part by the increased production of nitric oxide. The vulnerability of immunostimulated C6 glioma cells to hypoglycemic insults may implicate that the elevated level of cytokines in various ischemic and neurodegenerative diseases may play a role in their pathogenesis.
Bushra, Rashid;Nikhat, Manzoor;M., Amin;Luqman A., Khan
Animal cells and systems
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v.8
no.4
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pp.307-312
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2004
Fast kinetics of transient pH changes and difference spectrum formation have been investigated following mixing of ADP/ATP with partially purified plasma membrane PM-ATPase of the pathogenic yeast Candida albicans in the presence of five nutrients: glucose, glutamic acid, proline, lysine, and arginine and two analogs of glucose: 2-deoxy D-glucose and xylose. Average $H^+$- absorption to release ratio, indicative of population of ATPase undergoing complete hydrolytic cycle, was found to be 0.27 for control. This ratio varied between 0.25 (proline) to 0.36 (arginine) for all other compounds tested, except for glucose. In the presence of glucose, $H^+$- absorption to release ratio was exceptionally high (0.92). While no UV difference spectrum was observed with ADP, mixing of ATP with ATPase led to a large conformational change. Exposure to different nutrients restricted the magnitude of the conformational change; the analogs of glucose were found to be ineffective. This suppression was maximal in the case of glucose (80%); with other nutrients, the magnitude of suppression ranged from 40-50%. Rate of $H^+$- absorption, which is indicative of E~P complex dissociation, showed positive correlation with suppression of conformational change only in the case of glucose and no other nutrient/analog. Mode of interaction of glucose with plasma membrane $H^+$-ATPase thus appears to be strikingly distinct compared to that of other nutrients/analogs tested. The results obtained lead us to propose a model for explaining glucose stimulation of plasma membrane $H^+$-ATPase activity.
Gatric mucosa is exposed to toxic, reactive oxygen species generated within the lumen. Nitric oxide protected acetaminophen-induced hepatotoxicity by maintaining glutathione homeostasis. The present study examined the role of nitric oxide in mediating hydrogen peroxide - induced damage to gastric cells. Hydrogen peroxide was generated by glucose oxidase acting on ${\beta}-D-glucose$. L-arginine, $N^G-nitro-L-arginine$ methyl ester, or $N^G-nitro-L-arginine$ were treated to the cells with glucose/glucose oxidase. Lipid peroxidation and nitrite release and cellular content of glutathione were determined. As a result, dose - dependent increase in lipid peroxide production as well as dose - dependent decrease in nitrite release and cellular glutathione content were observed in glucose/glucose oxidase - treated cells. Pretreatment of L-arginine, a substrate for nitric oxide synthase, prevented the increase of lipid peroxide production and the reduction of nitrite release as well as glutathione content. Inhibitors of nitric oxide synthase such as $N^G-nitro-L-arginine$ methyl ester and $N^G-nitro-L-arginine$ did not protect hydrogen peroxide - induced cell damage. In conclusion, nitric oxide protects gestric cells from hydrogen peroxide possibly by inhibiting lipid peroxidation and by preserving cellular glutathione stores.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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