Sang-Bum Park;Sang-Man Han;Youn-Hyoung Nam;Won-Cheoul Jang
Journal of the Korean Chemical Society
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v.47
no.5
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pp.460-465
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2003
Structural alteration of p53 and overexpression of p53 protein are the most common genetic abnormalities in various kinds of human cancer. Mutations in the p53 tumor-suppressor gene are usually associated with an advanced development of colorectal cancer characterized by the transition from the adenoma to carcinoma stage. Mutations in exons 5-8 of the p53 gene were analyzed by the polymerase chain reaction-single strand conformation polymorphism(PCR-SSCP) and denaturing high performance liquid chromatography(DHPLC). SSCP analysis detected 7 mutations(C13109>T) in 50 colorectal cancer samples(14%) at exon 5, and DHPLC analysis detected 7 mutations (C13109>T) and 2 mutation(C13202>A, C13204>G) in 50 colorectal cancer samples(18%) at exon 5. All of 9 mutations were proved by sequencing analysis. We conclude that DHPLC is a highly sensitive and specific method for p53 gene mutations.
Background: Missense and frame-shift mutations within the dimer forming domain of the caspase 8 gene have been identified in several cancers. However, the genetic status of this region in precancerous lesions, like oral submucous fibrosis (OSMF), and well differentiated oral squamous cell carcinomas (OSCCs) in patients from southern region of India is not known, and hence the present study was designed to address this issue. Materials and Methods: Genomic DNA isolated from biopsy tissues of thirty one oral submucous fibrosis and twenty five OSCC samples were subjected to PCR amplification with intronic primers flanking exon 7 of the caspase 8 gene. The PCR amplicons were subsequently subjected to direct sequencing to elucidate the status of mutation. Results: Sequence analysis identified a frame-shift and a novel missense mutation in two out of twenty five OSCC samples. The frame-shift mutation was due to a two base pair deletion (c.1225_1226delTG), while the missense mutation was due to substitution of wild type cysteine residue with phenylalanine at codon 426 (C426F). The missense mutation, however, was found to be heterozygous as the wild type C426C codon was also present. None of the OSMF samples carried mutations. Conclusions: The identification of mutations in OSCC lesions but not OSMF suggests that dimer forming domain mutations in caspase 8 may be limited to malignant lesions. The absence of mutations in OSMF also suggests that the samples analyzed in the present study may not have acquired transforming potential. To the best of our knowledge this is the first study to have explored and identified frame-shift and novel missense mutations in OSCC tissue samples.
Constitutional RB1 gene mutations were studied in a series of 21 families with unilateral and bilateral retinoblastoma patients. Peripheral blood lymphocytes were analyzed by "exon by exon" PCR-heteroduplex and sequencing. Mutations were identified in 6 (29%) of the patients. One mutation corresponded to an intronic polymorphism in g.174351T > A. The other five mutations resulted C to T exonic transitions, four were CGA sequences (g.65386, g.150037 in two patients, and g.162237), creating stop codons and presumably truncated proteins. The fifth one was new and resulted in alanine to valine substitution (g.73774). Two patients had the same the germline truncated mutation (g.150037C > T), one with a familial bilateral early onset retinoblastoma and one with a sporadic unilateral late onset retinoblastoma. The later type has not been previously described. This finding is discussed in the genotype/phenotype correlation context. Additionally, a single nucleotide change was found in six studied samples, where a C to T homozygous transversion was identified in intron 26 (IVS26 + 28). It is worthy the non concordance of the nucleotide with the published sequence. This analysis proved to be a useful method for the detection of mutations in the RB1 gene, and contributed to the adequate genetic counseling to patients and relatives.
Incorporation of unique barcodes into fission yeast gene deletion collections has enabled the identification of gene functions by growth fitness analysis. For fine tuning, it is important to examine barcode sequences, because mutations arise during strain construction. Out of 8,708 barcodes (4,354 strains) covering 88.5% of all 4,919 open reading frames, 7,734 barcodes (88.8%) were validated as high-fidelity to be inserted at the correct positions by Sanger sequencing. Sequence examination of the 7,734 high-fidelity barcodes revealed that 1,039 barcodes (13.4%) deviated from the original design. In total, 1,284 mutations (mutation rate of 16.6%) exist within the 1,039 mutated barcodes, which is comparable to budding yeast (18%). When the type of mutation was considered, substitutions accounted for 845 mutations (10.9%), deletions accounted for 319 mutations (4.1%), and insertions accounted for 121 mutations (1.6%). Peculiarly, the frequency of substitutions (67.6%) was unexpectedly higher than in budding yeast (~28%) and well above the predicted error of Sanger sequencing (~2%), which might have arisen during the solid-phase oligonucleotide synthesis and PCR amplification of the barcodes during strain construction. When the mutation rate was analyzed by position within 20-mer barcodes using the 1,284 mutations from the 7,734 sequenced barcodes, there was no significant difference between up-tags and down-tags at a given position. The mutation frequency at a given position was similar at most positions, ranging from 0.4% (32/7,734) to 1.1% (82/7,734), except at position 1, which was highest (3.1%), as in budding yeast. Together, well-defined barcode sequences, combined with the next-generation sequencing platform, promise to make the fission yeast gene deletion library a powerful tool for understanding gene function.
The inappropriate and widespread use of quinolones in humans and animals may cause accelerated emergence and spread of antimicrobial-resistant determinants. In this study, we investigated quinolone resistance mechanisms in a total of 65 nalidixic acid-resistant E. coli isolated from swine rectal swabs (N=40) and clinical specimens (N=25). Antimicrobial susceptibilities were determined by the disk diffusion method. PCR and DNA sequencing were performed for investigations of genes and mutations associated with quinolone resistance. In our study, 62 of 65 nalidixic acid-resistant E. coli harbored mutations in gyrA, parC, and/or parE genes; of the 65 isolates, 62 (95.4%) had mutations in the gyrA gene, 35 (53.8%) had mutations in the parC gene, 7 (10.8%) had mutations in the parE gene. The 35 isolates harbored mutations in two genes, gyrA and parC. Plasmid-mediated quinolone resistance (PMQR) determinants were investigated in the 65 isolates. Thirteen of 65 nalidixic acid-resistant E. coli contained the qnrS gene and 10 of those isolates had mutations in the gyrA, parC, and/or parE genes. We confirmed that an important mechanism of quinolone resistance in E. coli isolated from human and swine involves chromosomal mutations in the gyrA, parC, and/or parE genes with increasing use of quinolone for treatment or additives.
Mundhofir, Farmaditya EP;Wulandari, Catharina Endah;Prajoko, Yan Wisnu;Winarni, Tri Indah
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.17
no.3
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pp.1539-1546
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2016
Specific patterns of the hereditary breast and ovarian cancer (HBOC) syndrome are related to mutations in the BRCA1 gene. One hundred unrelated breast cancer patients were interviewed to obtain clinical symptoms and signs, pedigree and familial history of HBOC syndrome related cancer. Subsequently, data were calculated using the Breast and Ovarian Analysis of Disease Incidence and Carrier Estimation Algorithm (BOADICEA) risk prediction model. Patients with high score of BOADICEA were offered genetic testing. Eleven patients with high score of BOADICEA, 2 patients with low score of BOADICEA, 2 patient's family members and 15 controls underwent BRCA1 genetic testing. Mutation screening using PCR-HRM was carried out in 22 exons (41 amplicons) of BRCA1 gene. Sanger sequencing was subjected in all samples with aberrant graph. This study identified 10 variants in the BRCA1 gene, consisting of 6 missense mutations (c.1480C>A, c.2612C>T, c.2566T>C, c.3113A>G, c.3548 A>G, c.4837 A>G), 3 synonymous mutations (c.2082 C>T, c.2311 T>C and c.4308T>C) and one intronic mutation (c.134+35 G>T). All variants tend to be polymorphisms and unclassified variants. However, no known pathogenic mutations were found.
Park, Joonhong;Yoo, Han Mo;Sul, Hae Jung;Shin, Soyoung;Lee, Seung Woo;Kim, Jeong Goo
Journal of Gastric Cancer
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v.20
no.1
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pp.29-40
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2020
Purpose: Gastrointestinal stromal tumors (GISTs) frequently harbor activating gene mutations in either KIT or platelet-derived growth factor receptor A (PDGFRA) and are highly responsive to several selective tyrosine kinase inhibitors. In this study, a targeted next-generation sequencing (NGS) assay with an Oncomine Focus Assay (OFA) panel was used for the genetic characterization of molecular targets in 30 Korean patients with GIST. Materials and Methods: Using the OFA that enables rapid and simultaneous detection of hotspots, single nucleotide variants (SNVs), insertion and deletions (Indels), copy number variants (CNVs), and gene fusions across 52 genes relevant to solid tumors, targeted NGS was performed using genomic DNA extracted from formalin-fixed and paraffin-embedded samples of 30 GISTs. Results: Forty-three hotspot/other likely pathogenic variants (33 SNVs, 8 Indels, and 2 amplifications) in 16 genes were identified in 26 of the 30 GISTs. KIT variants were most frequent (44%, 19/43), followed by 6 variants in PIK3CA, 3 in PDGFRA, 2 each in JAK1 and EGFR, and 1 each in AKT1, ALK, CCND1, CTNNB1, FGFR3, FGFR4, GNA11, GNAQ, JAK3, MET, and SMO. Based on the mutation types, majority of the variants carried missense mutations (60%, 26/43), followed by 8 frameshifts, 6 nonsense, 1 stop-loss, and 2 amplifications. Conclusions: Our study confirmed the advantage of using targeted NGS with a cancer gene panel to efficiently identify mutations associated with GISTs. These findings may provide a molecular genetic basis for developing new drugs targeting these gene mutations for GIST therapy.
The effects of DNA polymerase $\beta$ on the somatic chromosome mutations and mitotic recombinations were investigated using the transgenic Drosophila beating chimetic gene consisting of a promoter region of Drosophila actin 5C gene and rat DNA polymerase $\beta$. For detecting the somatic chromosome mutations and mitotic recombinations, the heterozygous (mwh/+) strains possessing or lacking transgene poi 13 were used. The spontaneous frequency of small mwh spots, due to deletion or nondisjunction etc., in the non-transgenic w strain and the transgenic p[pol $\beta$]-130 strain was 0.351 and 0.606, respectively. The spontaneous frequency (0.063) of large mwh spots, arises mostly from somatic recombination between the centromere and the locus mwh, in the transgenic p[pol $\beta$]-130 strain was about three times higher than that (0.021) of the non-transgenic w strain. The mutant clone frequencies of small and large mwh spots induced by N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine and ethyl methanesulfonate in the transformant p[pol $\beta$]-130 were higher than those in the host strain w. The present results suggest that rat DNA polymerase $\beta$ participate at least in the somatic chromosome mutations and mitotic recombination processes.
The unc-29 region on the chromosome I of Caenorhabditis elegans has been mutagenized in order to obtain lethal mutations. In this screen, the uncoordinated phenotype of unc-29 (e193) mutant was used to identify any lethal mutations closely linked to the unc-29 gene, which encodes a subunit of nicotinic acetylcholine receptors. We have isolated six independent mutations (jh1 to jh6) out of approximately 5,200 ethyl methanesulfonate(EMS) treated haploids. Four of the six mutations demonstrated embryonic lethal phenotypes, while the other two showed embryonic and larval lethal phenotypes. Terminal phenotypes observed in two mutations (jh1 and jh2) indicated developmental defects specific to posterior part of embryos which appeared similar to the phenotypes observed in nob (no back end) mutants. Another mutation (jh4) resulted in an interesting phenotype of body-wall muscle degeneration at larval stage. These mutations were mapped by using three-factor crosses and deficiency mutants in this region. Here we report genetic analysis and characterization of these lethal mutations.
Gastric cancer is the second most common cause of cancer death worldwide. Environmental as well as genetic factors have been shown to be involved in its genesis. Among genetic factors, loss of function of a tumor suppressive gene named promyelocytic leukemia (PML) has been demonstrated in gastric cancer. In order to cast light in the mechanism by which PML protein is under-expressed in gastric cancer cells, we analyzed all exons and intron-exon boundaries of PML gene in 50 formalin-fixed paraffin-embedded tissue blocks from gastric carcinoma tumors by means of PCR-SSCP and CSGE, with direct sequencing of abnormally shifted bands. We found a novel sequence variant of unknown significance localized in intron 5 in 3 samples (c.1398+84delA). We did not detect any deleterious mutations of the PML gene. This study shows that PML mutations may not contribute to gastric adenocarcinoma development. Post-translational modifications or protein degradation might be mechanisms by which PML is not expressed in gastric tumors.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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