Incorporation of unique barcodes into fission yeast gene deletion collections has enabled the identification of gene functions by growth fitness analysis. For fine tuning, it is important to examine barcode sequences, because mutations arise during strain construction. Out of 8,708 barcodes (4,354 strains) covering 88.5% of all 4,919 open reading frames, 7,734 barcodes (88.8%) were validated as high-fidelity to be inserted at the correct positions by Sanger sequencing. Sequence examination of the 7,734 high-fidelity barcodes revealed that 1,039 barcodes (13.4%) deviated from the original design. In total, 1,284 mutations (mutation rate of 16.6%) exist within the 1,039 mutated barcodes, which is comparable to budding yeast (18%). When the type of mutation was considered, substitutions accounted for 845 mutations (10.9%), deletions accounted for 319 mutations (4.1%), and insertions accounted for 121 mutations (1.6%). Peculiarly, the frequency of substitutions (67.6%) was unexpectedly higher than in budding yeast (~28%) and well above the predicted error of Sanger sequencing (~2%), which might have arisen during the solid-phase oligonucleotide synthesis and PCR amplification of the barcodes during strain construction. When the mutation rate was analyzed by position within 20-mer barcodes using the 1,284 mutations from the 7,734 sequenced barcodes, there was no significant difference between up-tags and down-tags at a given position. The mutation frequency at a given position was similar at most positions, ranging from 0.4% (32/7,734) to 1.1% (82/7,734), except at position 1, which was highest (3.1%), as in budding yeast. Together, well-defined barcode sequences, combined with the next-generation sequencing platform, promise to make the fission yeast gene deletion library a powerful tool for understanding gene function.
Duchenne muscular dystrophy (DMD) is the most common hereditary neuromuscular disease. It is inherited manifestations. In some rare cases, the disease can also be manifested in females. The aim of the present study was to determine the molecular alteration in two cases of nonrelated DMD symptomatic carriers with no previous history of DMD. Multiplex PCR is commonly used to search for deletion in the DMD gene of affected males. This method could not be used in females because the normal X chromosome masks the deletion of the mutated one. Therefor, we used a set of seven highly polymorphic dinucleotide $(CA)_n$ repeat markers that lie within the human dystrophin gene. The deletions were evidenced by hemizygosity of the loci under study. We localized a deletion in the locus 7A (intron 7) on the maternal X chromosome in one case, and a deletion in the region of introns 49 and 50 on the paternal X chromosome in the other. The use of microsatellite genotyping within the DMD gene enables the detection of the mutant allele in female carriers. It is also a useful method to provide DMD families with more accurate genetic counseling.
Kim, Daseul;Chang, Hun Soo;Won, Eunsoo;Ham, Byung-Joo;Lee, Min-Soo
Korean Journal of Biological Psychiatry
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제23권4호
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pp.140-147
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2016
Objectives To determine the relationship between the Alu insertion/deletion (I/D) polymorphism in the tissue-type plasminogen activator (tPA) gene and the clinical outcome of mirtazapine treatment in Korean major depressive disorder (MDD) patients. Methods We enrolled 422 patients in this study. Symptoms were evaluated using the 21-item Hamilton Depression Rating (HAMD-21) Scale. After 1, 2, 4, and 8 weeks of mirtazapine treatment, the association between the Alu I/D polymorphism in the tPA gene and remission/response outcomes were evaluated. Results The proportion of I/I homozygotes in responders was higher than that in non-responders, whereas the proportion of D/D homozygotes in responders was lower than that in non-responders at 8 weeks of treatment (p = 0.032, OR = 1.57). The percentage decline of HAMD-21 scores in I allele carriers was larger than that of D/D homozygotes at 2 and 8 weeks of treatment (p = 0.035 and 0.007, respectively). I allele carriers were associated with remission at 8 weeks of treatment (p = 0.047, OR = 2.2). Conclusions These results show that treatment response and remission to mirtazapine were associated with the Alu I/D polymorphism of the tPA gene. This suggests the Alu I/D polymorphism may be a potential genetic marker for the prediction of therapeutic response to mirtazapine treatment in patients with MDD.
Park, Mi-Hye;Kim, Hyoun-Young;Kim, Jong-Hwa;Han, Kap-Hoon
Korean Journal of Microbiology
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제45권4호
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pp.312-317
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2009
Genome analysis of a model filamentous fungus, Aspergillus nidulans, revealed that there are six putative forkhead genes. Among them, fkhF (AN8949.2) showed A. nidulans-specific. fkhF gene is located in chromosome VII and composed of 2,337 bp coding region for 778 amino acid. Since little is known about the involvement of the forkhead proteins in the developmental process of the filamentous fungi, including A. nidulans, we generated a deletion mutant of fkhF gene and analyzed. Deletion of fkhF resulted in less-dense conidiophore formation in a solid culture. However, the sexual developmental process or cleistothecia formation was normal. Furthermore, fkhF deletion mutant produced conidiophores and conidia under the submerged culture, suggesting that the fkhF gene is involved in repression of inappropriated induction and maturation of asexual developmental process but not in sexual development.
Mitochondrial DNA (mtDNA) deletion is a well-known marker for oxidative stress and aging, and contributes to harmful effects in cultured cells and animal tissues. mtDNA biogenesis genes (NRF-1, TFAM) are essential for the maintenance of mtDNA, as well as the transcription and replication of mitochondrial genomes. Considering that oxidative stress is known to affect mitochondrial biogenesis, we hypothesized that ionizing radiation (IR)-induced reactive oxygen species (ROS) causes mtDNA deletion by modulating the mitochondrial biogenesis, thereby leading to cellular senescence. Therefore, we examined the effects of IR on ROS levels, cellular senescence, mitochondrial biogenesis, and mtDNA deletion in IMR-90 human lung fibroblast cells. Young IMR-90 cells at population doubling (PD) 39 were irradiated at 4 or 8 Gy. Old cells at PD55, and H2O2-treated young cells at PD 39, were compared as a positive control. The IR increased the intracellular ROS level, senescence-associated ${\beta}$-galactosidase (SA-${\beta}$-gal) activity, and mtDNA common deletion (4977 bp), and it decreased the mRNA expression of NRF-1 and TFAM in IMR-90 cells. Similar results were also observed in old cells (PD 55) and $H_2O_2$-treated young cells. To confirm that a increase in ROS level is essential for mtDNA deletion and changes of mitochondrial biogenesis in irradiated cells, the effects of N-acetylcysteine (NAC) were examined. In irradiated and $H_2O_2$-treated cells, 5 mM NAC significantly attenuated the increases of ROS, mtDNA deletion, and SA-${\beta}$-gal activity, and recovered from decreased expressions of NRF-1 and TFAM mRNA. These results suggest that ROS is a key cause of IR-induced mtDNA deletion, and the suppression of the mitochondrial biogenesis gene may mediate this process.
A genomic clone carrying a proteinase inhibitor I sequence was isolated and characterized. The clone contained a 0.7 kb EcoRI fragment hybridized with tomato inhibitor I cDNA. The nucleotide sequence of the EcoRI fragment revealed presence of a truncated form of a proteinase inhibitor I gene of potato. The truncated gene contained the 5' flanking region and the first exon of a functional proteinase inhibitor I gene. Although the 5' flanking region contained the regulatory sequences TATAAA and CCACT, a deletion of 40 bp occurred between them.
We have analyzed the MRE3/REC114 gene of Saccharomyces cerevisiae, previously detected in isolation of mutants defective in meiotic recombination. We cloned the MRE3/REC114 gene by complementation of the meiotic recombination defect and it has been mapped to chormosome XIII. The DNA sequence analysis revealed that the MRE3 gene is identical to the REC114 gene. The upstream region of the MRE3/REC114 gene contains a T_4C site, a URS (upstream repression sequence) and a TR (T-rich) box-like sequence, which reside upstream of many meiotic genes. Coincidentally, northern blot analysis indicated that the three sizes of MRE3/REC114 transcripts, 3.4, 1.4 and 1.2 kb, are induced in meiosis. A less abundant transcript of 1.4 kb is detected in both mitotic and meiotic cells, suggesting that it is needed in mitosis as well as meiosis. To examine the role of the MRE3/REC114 gene, we constructed mre3 disruption mutants. Strains carrying an insertion or null deletion of the MRE3/REC114 gene showed slow growth in nutrient medium and the doubling time of these cells increased approximately by 2-fond compared to the wild-type strain. Moreover, the deletion mutant (${\delta}$mre3) displayed no meiotically induced recombination and no viable spores. The mre3/rec114 spore lethality can be suppressed by spo13, a mutation that causes cells to bypass reductional division. The double-stranded breaks (DSBs) which are involved in initiation of meiotic recombination were not detected in the analysis of meiotic chromosomal DNA from the mre3/rec114 disruptant. From these results we suggest that the MRE3/REC114 gene product is essential in normal growth and in early meiotic stages involved in meiotic recombination.
The cyclic AMP (cAMP) pathway plays a major role in growth, sexual differentiation, and virulence factor synthesis of pathogenic fungi. In Cryptococcus neoformans, perturbation of the cAMP pathway, such as a deletion in the gene encoding adenylyl cyclase (CAC1), causes defects in the production of virulence factors, including capsule and melanin production, as well as mating. Previously, we performed a comparative transcriptome analysis of the Ras- and cAMP- pathway mutants, which revealed 163 potential cAMP-regulated genes (38 genes at a 2-fold cutoff). The present study characterized the role of one of the cAMP pathway-dependent genes (serotype A identification number CNAG_ 06576.2). The expression patterns were confirmed by Northern blot analysis and the gene was designated cAMP-regulated gene 1 (CAR1). Interestingly, deletion of CAR1 did not affect biosynthesis of any virulence factors and the mating process, unlike the cAMP-signaling deficient cac1$\Delta$ mutant. Furthermore, the car1$\Delta$ mutant exhibited wild-type levels of the stress-response phenotype against diverse environmental cues, indicating that Car1, albeit regulated by the cAMP-pathway, is not essential to confer a cAMP-dependent phenotype in C. neoformans.
Lee, Eu Kyoung;Eem, Yeun-Joo;Chung, Nack-Gyun;Kim, Myung Shin;Jeong, Dae Chul
Clinical and Experimental Pediatrics
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제56권6호
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pp.265-268
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2013
Wiskott-Aldrich syndrome (WAS) is an inherited X-linked disorder. The WAS gene is located on the X chromosome and undergoes mutations, which affect various domains of the WAS protein, resulting in recurrent infection, eczema, and thrombocytopenia. However, the clinical features and severity of the disease vary according to the type of mutations in the WAS gene. Here, we describe the case of a 4-year-old boy with a history of marked thrombocytopenia since birth, who presented with recurrent herpes simplex infection and late onset of eczema. Examination of his family history revealed that older brother, who died from intracranial hemorrhage, had chronic idiopathic thrombocytopenia. Therefore, we proceeded with genetic analysis and found a new deletion mutation in the WAS gene: c.858delC (p.ser287Leufs$^*21$) as a hemizygous form.
Shin, Kyoung-Hwa;Choi, Boram;Park, Yang-Seo;Cho, Nam Jeong
Molecules and Cells
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제26권6호
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pp.554-557
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2008
Double-stranded RNA (dsRNA) induces gene silencing in a sequence-specific manner by a process known as RNA interference (RNAi). The RNA-induced silencing complex (RISC) is a multi-subunit ribonucleoprotein complex that plays a key role in RNAi. VIG (Vasa intronic gene) has been identified as a component of Drosophila RISC; however, the role VIG plays in regulating RNAi is poorly understood. Here, we examined the spatial and temporal expression patterns of VIG-1, the C. elegans ortholog of Drosophila VIG, using a vig-1::gfp fusion construct. This construct contains the 908-bp region immediately upstream of vig-1 gene translation initiation site. Analysis by confocal microscopy demonstrated GFP-VIG-1 expression in a number of tissues including the pharynx, body wall muscle, hypodermis, intestine, reproductive system, and nervous system at the larval and adult stages. Furthermore, western blot analysis showed that VIG-1 is present in each developmental stage examined. To investigate regulatory sequences for vig-1 gene expression, we generated constructs containing deletions in the upstream region. It was determined that the GFP expression pattern of a deletion construct (${\Delta}-908$ to -597) was generally similar to that of the non-deletion construct. In contrast, removal of a larger segment (${\Delta}-908$ to -191) resulted in the loss of GFP expression in most cell types. Collectively, these results indicate that the 406-bp upstream region (-596 to -191) contains essential regulatory sequences required for VIG-1 expression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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