Cytochrome oxidase was purified from bovine-heart mitochondria and its enzymatic properties were examined. The purified cytochrome oxidase was identified by its absorption spectrum and chromatogram through gel filtration. The specific activity, purification degree and yield of purified cytochrome oxidase were 18 nmol/mg/ml/min, 24.83 fold and 0.93%, respectively. The activity of the enzyme assayed by a ferrocytochrome $c-O_2$ system was optimized at $25^{\circ}C$ and pH 6.5. Examining the effect of nonionic detergents established that cytochrome oxidase was deactivated by Triton X-100. The oxidase was activated by Tween 80 and deactivated by Tween 20. The Michaelis constant and maximum velocity of the oxidase for ferrocytochrome c were 0.032~0.044 mM and 0.019~0.021 mM/min, respectively. After adaption to basal diet for a week, experimental diets containing 6 mg Cu/kg, or zero mg Cu/kg, or 12 mg Cu/kg were fed to a control group, a copper-free group and a copper-rich group of Sprague-Dawley rats, respectively, for 4 weeks. The specific activities assayed for the ferrocytochrome $c-O_2$ system of isolated cytochrome oxidase from the rat liver of control, copper-free, and copper-rich group were 1.00, 1.19, and 0.878 nmol/mg/ml/min, respectively. Their degrees of purification were 11.38, 10.82 and 8.78 fold, respectively. The specific activities for liver and heart mitochondrial cytochrome oxidase of copper-free/copper-rich groups assayed using the ferrocytochrome $c-O_2$ system were 81.4% and 96.4%/64.1% and 61.1%, respectively, compared with those of the control.
The ability of bovine intact red blood cells to scavenge superoxide and hydrogen peroxide by superoxide dismutase, catalase and glutathione peroxidase was investigated. Intact red cells(up to 0.4%) suspensions did not inhibit ferricytochrome c reduction by superoxide in the superoxide generating system. On the other hand, intact red cell(0.4%) suspensions almost completely inhibit ferrocytochrome c oxidation by hydrogen peroxide. The ability of intact red cells to scavenge hydrogen peroxide was mainly attributed to either membrane bound catalase or glutathione peroxidase. The scavenge of hydrogen peroxide by 0.1~0.2% intact red cells showed a trend of dependence on mainly glutathione peroxidase. However, at blood cell concentration higher than 0.3%, the process depended upon peroxidase-independent scavengers like catalase. Enhancement of ferrocytochrome c oxidation by red cells treated with aminotriazole proved that the protection against hydrogen peroxide was due to catalase, while the protection in the presence of glutathione indicated scavenging effect of glutathione peroxidase against hydrogen peroxide.
Ferricytochrome c was artificially made to receive the aqueous electrons evolved through the influence of illuminated chloroplast. This ferricytochrome c, which was bombarded by electrons, was reduced to ferrocytochrome c by making sure that a certain cytochrome is reduced. This may require an electronic attack that is created by the chloroplast inside the plant cell. The possibility of reversing the oxidation of ferrocytochrome c by cytochrome oxidase was examined using a contrived redox system composed of cytochrome oxidase, ferricytochrome c and chloroplast with illumination. We recognized that the oxidase is unserviceable for the reversibleness in spite of the existence of chloroplast.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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1999.06a
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pp.46-46
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1999
Positively charged cytochrome c interacts with the negatively charged mitochondrial inner membrane. This interaction induces conformational changes in bound cytochrome c. In order to estimate the effect of cytochrome c-membrane interaction on the mitochondrial electron transfer, we have investigated oxidation of ferrocytochrom c in the presence of anionic phospholipids.(omitted)
Association of cytochrome c with anionic membranes involved both electrostatic and hydrophobic interactions and their relative contributions depended on the physical state of the membrane and the redox state of cyto-chromec.Hydrophobic interaction was favored by the membranes in gel phase, by the membranes with a large curvature, and by the membranes with a high surface charge density. Ferrocytochrome c was less dissociable by NaCl than ferricytochrome c suggesting that a lower protein stability is beneficial for hydrophobic interac-tion.Hydrophobic interaction induced larger structural perturbations on cytochrome c as monitored by the loss of the Fe-Met bond and by the increase in the distance between heme and Trp-59. When bound to anionic mem-branes,spin-labeled cytochrome c showed an electron paramagnetic resonance spectrum with two or more components, providing a direct evidence for multiple conformations of bound cytochrome c.
Cytochrome c peroxidase (CcP) is a yeast mitochondrial enzyme which catalyzes the reduction of hydrogen peroxide to water using two equivalents of ferrocytochrome c. The CcP/cytochrome c system has many features which make it a very useful model for detailed investigation of heme protein structure/function relationships including activation of hydrogen peroxide, protein-protein interactions, and long-range electron transfer. Both CcP and cytochrome c are single heme, single subunit proteins of modest size. High-resolution crystallographic structures of both proteins, of one-to-one complexes of the two proteins, and a number of active-site mutants are available. Site-directed mutagenesis studies indicate that the distal histidine in CcP is primarily responsible for rapid utilization of hydrogen peroxide implying significantly different properties of the distal histidine in the peroxidases compared to the globins. CcP and cytochrome c bind to form a dynamic one-to-one complex. The binding is largely electrostatic in nature with a small, unfavorable enthalpy of binding and a large positive entropy change upon complex formation. The cytochrome c-binding site on CcP has been mapped in solution by measuring the binding affinities between cytochrome c and a number of CcP surface mutations. The binding site for cytochrome c in solution is consistent with the crystallographic structure of the one-to-one complex. Evidence for the involvement of a second, low-affinity cytochrome c-binding site on CcP in long-range electron transfer between the two proteins is reviewed.
The 1H NMR signals of the heme methyl, propionate and related chemical groups of cytochrome C3 from Desulfovibrio vulgaris Miyazaki F (D.v. MF) were assigned by means of 1D NOE, 2D DQFCOSY and 2D TOCSY spectra. They were consistent with the assignments of the hemes with the highest and second-lowest redox potentials reported by Gayda et al. [Reference: 15]. The heme assignments were also supported by NOE between the methyl groups of these hemes and the side chain of Val-18, All the results contradicted the heme assignments for D.v. MF cytochrome C3 made on the basis of NMR [Reference: 11]. Based on these assignments, the interaction of cytochrome C3 with ferredoxin I was investigated by NMR. The major interaction site of cytochrome C3 was identified as the heme with the highest redox potential, which is surrounded by the highest density of positive charges. The stoichiometry and association constant were two cytochrome C3 molecules per monomer of ferredoxin I and 108 M-2 (at 53 mM ionic strength and $25^{\circ}C$), respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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