Inulinase의 효율적인 재사용을 위하여 vinylsulfone activated agarose에 endo- 및 exoinulinase를 고정화시켰다. Gram gel당 exoinulinase는 400U, endoinulinase는 80U까지 고정화시킬 수가 있었고 열안정성은 exoinulinase 에서 증가되었다. 두 고정화 효소의 혼합비율에 따른 synergistic effect는 endo/exo가 0.5-0.1일 대 가장 컸으며, synergistic effect는 혼합되지 않은 상태의 고정화 효소에 비해 그 활성이 약 1.7배 증가하였다. 두 고정화 효소의 최적 pH는 4.4-5.0 범위이었으며 operational stability는 batch reactor에서 20번 반복된 실험결과 어떠한 효소활성의 감소도 보이지 않았다.
Xylanase plays important roles in a broad range of industrial production as a biocatalyst, and its applications commonly require immobilization on supports to enhance its stability. Aluminum hydroxide, a carrier material with high surface area, has the advantages of simple and low-cost preparation and resistance to biodegradation, and can be potentially used as a proper support for xylanase immobilization. In this work, xylanase from Thermomyces lanuginosus was immobilized on two types of aluminum hydroxide particles (gibbsite and amorphous Al(OH)3) through adsorption, and the properties of the adsorbed enzymes were studied. Both particles had considerable adsorptive capacity and affinity for xylanase. Xylanase retained 75% and 64% of the original catalytic activities after adsorption to gibbsite and amorphous Al(OH)3. Both the adsorptions improved pH and thermal stability, lowered activation energy, and extended lifespan of the immobilized enzyme, as compared with the free enzyme. Xylanase adsorbed on gibbsite and amorphous Al(OH)3 retained 71% and 64% of its initial activity, respectively, after being recycled five times. These results indicated that aluminum hydroxides served as good supports for xylanase immobilization. Therefore, the adsorption of xylanase on aluminum hydroxide particles has promising potential for practical production.
This study was carried out to investigate the characteristics of extracellular cellulase and xylanase from Fusarium pallidoroseum and Aspergillus niger, such as enzyme activity and stability by various pH, temperature and metal ions, for application into enzymatic deinking system. The optimal temperature and pH for enzyme activity and stability of Fusarium pallidoroseum and Aspergillus niger were $50^{\circ}C$, pH 5.0 and $60^{\circ}C$, pH 9.0, respectively. Certain metal ions, calcium and cobalt, brought to elevate cellulase and xylanase activity from F. pallidoroseum and A. niger. With these results we suggest that enzymatic deinking system should be proceed at $50\~60^{\circ}C$ under their optimal pH condition.
Phenylketonuria (PKU) is an inherited metabolic disorder caused by mutations in the phenylalanine catabolic enzyme, phenylalanine hydroxylase (PAH). The use of phenylalanine ammonia-lase (PAL) by oral and parenteral routes as a therapeutic drug for PKU has been severely limited due to inactivation by intestinal proteolysis and immune reactions. PEGylation was applied to PAL to reduce the degrees of antigenicity and proteolytic inactivation. Kinetic experiments with native PAL and pegylated PALs were performed, and pH stability, temperature stability, and protease susceptibility were evaluated. Enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) was carried out to measure the immune complex between pegylated PALs and antiserum that had been extracted from a PAL-immunized mouse. Pegylated PAL, especially branched pegylated PAL (10 kDa, 1:32), was more active for phenylalanine and more stable in pancreatic proteases than native PAL. Native PAL was optimal at pH 8.5, corresponding to the average pH range of the small intestine; the same finding was noted for pegylated PALs. All linear and branched pegylated PALs had low reactivity with mouse antiserum, especially the 1:16 formulation with linear 5-kDa PEG and the 1:32 formulation with branched 10-kDa PEG. Therefore, we suggest the 1:32 formulation with branched 10-kDa PEG as the most promising formulation for enzyme replacement therapy.
The angiontensin converting enzyme (ACE) inhibitory peptides were separated from beef sarcoplasmic protein extract and their amino acid sequences were identified as GFHI, DFHINQ, FHG, and GLSDGEWQ. The 4 peptides were synthesized in a laboratory and the ACE inhibitory activities of pep tides was measured after 2 months of storage at $4^{\circ}C$ under different pH conditions (6.0, 6.5, 7.0, 7.5, and 8.0) and the exposure of different temperatures (70, 80, 90, and $100^{\circ}C$) for 20 min to evaluate industrial use. No significant difference was detected by pH and temperature abuse for 20 min during storage. When the synthetic peptides were digested by pepsin, trypsin, and chymotrypsin, the ACE inhibitory activity was not changed. These results indicated that the 4 synthetic peptides with ACE inhibitory activity were pH-stable, heat-stable, and resistant to proteinases in gastro-intestinal tracts. Therefore, those 4 peptides can be used as a source for functional food product with various applications.
본 연구에서는 tyrosinase 효소반응시에 발생하는 반응 비활성화를 막아 조엽 얀정성을 향상시키는 것을 목적으로 연구를 수행하였다. Quinone에 의해 친핵성 공격을 받는 lysine기를 bifunctional rea gent인 glutaraldehyde로 변형시켜 줌으로써 효소 의 비활성화를 줄일 수 있었다. 또한, 고정화된 효소 를 충진층 반응기에 충진시켜 비활생화를 열으키는 생산물을 연속적으로 제거함으로써 효소의 얀정성을 크게 향상시켰다. 고정화 방법으로는 glass bead를 이용한 담체 가교법을 이용하였으며, 이때 glutarald dehyde와 효소의 lysine이 반응하게 되어 qumone 에 의한 친핵성 공격을 받지 않게 되어 안정성이 더욱 향상되 었다. 반응매 질로 borate buffer를 이용하 게되면 catechol과 borate의 복합체 형성으로 catechol에서 qumone으로의 전환이 줄어들게 되어 효소 비활성화가 감소하였다.
남극해에는 산업적으로 유용한 신규 효소촉매를 생산하는 미생물들이 들어 있다. 우리는 로스해(Ross Sea)로부터 분리한 여러 저온성 박테리아를 조사하였으며, 그 중에서 지방분해 능력이 뛰어난 Croceibacter atlanticus (No. 40-F12)를 찾았다. Shotgun 클로닝 방법으로 리파아제 유전자(lipCA)를 찾았으며 Escherichia coli 균에서 LipCA 효소를 발현하였다. Spain Arreo metagenome alpha/beta hydrolase를 기준으로 LipCA 상동구조모델을 만들어서 분석한 결과, ${\alpha}/{\beta}$ hydrolase fold, Gly-X-Ser-X-Gly motif, 그리고 lid 구조를 갖고 있기 때문에 전형적인 리파아제 효소임이 밝혀졌다. Ammonium sulfate 침전법과 겔여과 크로마토그래피를 통해서 세포추출액으로부터 LipCA 효소를 순수하게 분리한 후, 최적 온도, pH, 안정성, 기질특이성, 유기용매 안정성 등의 효소특성을 규명하였다. LipCA를 cross-linked enzyme aggregate (CLEA) 방법으로 고정화하고 효소특성을 조사, 비교하였다. 고정화를 통해 온도, pH, 유기용매에 대한 안정성이 증가하였고 기질특이성의 변화는 관찰되지 않았다. $LipCA^{CLEA}$는 원심분리 방법으로 쉽게 회수되었고 4번의 재사용 후에 40% 이상의 활성이 잔재하였다. 이 논문은 C. atlanticus 리파아제의 발현, 특성규명, Cross-linked Enzyme Aggregated 고정화를 바탕으로 안정성을 높여 산업적 활용 가능성을 제시한 최초의 보고이다.
$\beta $-Glucosidase (EC 3.2.1.21) was purified from Aspergillus niger SFN-416 by a sequential process of ammonium sulfate precipitation, Sepadex G-100 and DEAE-Sephacel column chromatography. Molecular weight of the enzyme was 46, 000 daltons. The K$_{m}$ and V$_{max}$ values for PNPG were 0.67 mM and 25 moles/ml $\cdot $min., respectively. The optimum pH and temperature of the enzyme activity were 3.5 and 58$\circ $C, respectively. The enzyme activity was decreased by addition of metal ions, and increased by addition of metanol, ethanol, isopropanol and 1-butanol at a concentration of 10% (v/v). Stability of the enzyme was increased by addition of isopropanol and 1-butanol at a concentration of 10% (v/v).
A strain of Trichoderm sp. J-30 which strongly products cellulase to reduce the content of cellulose in the stem of leaf tobacco was isolated from leaf tobaco. The Trichoderma sp. J-30 was identified as Trochoderma voride. The cellulase from this strain was purified with the physico-chemical methods and treated in the culled stem of leaf tobacco. The results obtained were summarized as follows. 1. Optimal pH of the enzyme was at pH 5.0. 2. The enzyme shooed a higher activity at $40^{\circ}C$ and its thermal stability began to decrease at $60^{\circ}C$. 3. The enzyme activity was promoted by the metal ions such as $Ca^{2+}, Mg^{2+}, Pb^{2+}and\;Zn^{2+}.$ 4. When the culled stem of leaf tobacco was applied with the 3% of the enzyme solution at $40^{\circ}C$ for 3 days. 15 to 17% of cellulose contents decreased, 12 to 13% of total sugar increased and the filling power was increased by 10-13% in the sample.
Purine nucleoside phosphorylase (PNP) was purified in Micrococcus luteus (M. luteus) using streptomycin sulfate and amomonium sulfate fractionation, three times by a Sephadex G-100 gel filtration and a DEAE-Sephadex A-50 ion exchange chromatography. The enzyme was purified 72 folds with a 11% recovery and showed a single band in a nondenaturing gel electrophoresis. The M. W. of PNP turned out to be 1.35 * 10$^{5}$ delton in G-150 gel filtration chromatography. The stability of the enzyme was increased by treatment with both substrates, MgCI$_{2}$ or CaCI$_{2}$, but not significantly kcal/mol. M. luteus PNP catalyzed the phosphorolysis of inosine, deoxyinosine, guanosine and deoxyguanosine with the Km value of 1.5 * 10$^{-3}$ M, 3.0 * 10$^{-3}$ M, 5.0 * 10$^{-4}$ M, respectively. The enzyme was reacted with adenosine, 1-methylnosine and 1-methylguanosine as substrates, which were shown to be poor substrates for mammalian enzyme.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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