Indican (indoxyl-${\beta}$-D-glucoside) is a colorless natural compound and can be used as a precursor for the production of indigo. This production step only require an enzyme, ${\beta}$-glucosidase, that readily screened from microbial resource by using selective media supplemented with indican as a sole carbon source. Agrobacterium tumefaciens was well grown in this media and thus presumed to produce a related enzyme. The corresponding gene, encoding a protein with a calculated molecular mass of 51 kDa, was cloned and overexpressed as MBP fusion proteins. The purified enzyme was determined to be a dimer and showed the maximum activity for indican at pH 7.0 and $40^{\circ}C$. The kinetic parameters for indican, Km and Vmax, were determined to be 1.4 mM and 373.8 ${\mu}M/min/mg$, respectively. The conversion yield of indican into indigo using this enzyme was about 1.7-1.8 folds higher than that of previously isolated enzyme from Sinorhizobium meliloti. Additionally, this enzyme was able to hydrolyze various ${\beta}$-1,4 glycoside substrates.
Penicillin amidohydrolase was partially purified from the fermented broth of Bacillus megaterium, and was immobilized on nylon fiber. The surface area of nylon fiber was increased by roughening it with fine sand and activated by acid treatment. The free amino groups on the nylon fiber exposed by such treatment were then utilized to immobilize the penicillin amidase. Enzymatic properties of penicillin amidohydrolase immobilized on the nylon fiber by covalent bonding and cross linking with glutaraldehyde were studied and compared with those of soluble enzyme. The optimal pH and temperature profile of immobilized enzyme showed only slightly broader peaks, and the values of kinetic constants, $K_m$, $K_{ia}$, and $K_{ip}$, of the immobilized enzyme are only slightly greater than those of the soluble enzyme. These results suggest that the mass transfer effect on the reaction rate for the penicillin amidase immobilized on nylon fiber is not so significant as the enzyme immobilized on some other support material like bentonite. The experimental results of batch reaction agreed well with the results of computer simulation for both the immobilized and soluble enzyme systems, confirming the validity of the rate equation derived which was based on the combined double inhibition by two reaction products.
In this study, a biodegradation model of based on molecular cellulose was established. It is a mathematical, kinetic model, assuming that two major enzymes randomly break glycosidic bonds of cellulose molecules, and calculates the number of molecules by applying the corresponding probability and degradation reaction coefficients. Model calculations considered enzyme dose, cellulose chain length, and reaction rate constant ratio. Degradation increased almost by two folds with increase of temperature (5℃→25℃). The change of degradation was not significant over the higher temperatures. As temperature increased, the degradation rate of the molecules increased along with higher production of shorter chain molecules. As the reaction rates of the two enzymes were comparative the degree of degradation for any combinations of enzyme application was not affected much. Enzyme dose was also tested through experiment. While enzyme dose ranged from 1 mg/L to 10 mg/L, the gap between real data and model calculations was trivial. However, at higher dose of those enzymes (>15 mg/L), the experimental result showed the lower concentrations of reductive sugar than the corresponding model calculation did. We determined that the optimal enzyme dose for maximum generation of reductive sugar was 10 mg/L.
Gamma-glutamyltransferase (GGT, EC 2.3.2.2) which hydrolyzes glutathione (GSH), is required for the maintenance of normal intracellular GSH concentration. GGT is a membrane enzyme present in leukocytes and platelets. Its activity has also been observed in human neutrophils. In this study, GGT was purified from Triton X-100 solubilized neutrophils and its kinetic parameters were determined. For kinetic analyses of transpeptidation reaction, $\gamma$-glutamyl p-nitroanilide was used as the substrate and glycylglycine as the acceptor. Apparent $K_m$ values were determined as 1.8 mM for $\gamma$-glutamyl p-nitroanilide and 16.9 mM for glycylglycine. The optimum pH of GGT activity was 8.2 and the optimum temperature was $37^{\circ}C$. It had thermal stability with 58% relative activity at $56^{\circ}C$ for 30 min incubation. L-serine, in the presence of borate, was detected as the competetive inhibitor. Bromcresol green inhibited neutrophil GGT activity as a noncompetetive inhibitor. The neutrophils seem to contain only the isoenzyme that is present in platelets. We characterized the kinetic properties and compared the type of the isoenzyme of neutrophil GGT with platelet GGT via polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) under a standart set of conditions.
An enzymatic reaction for the production of D-alanine from D-aspartic acid and pyruvate as substrates by a thermostable D-amino acid aminotransferase (D-AAT) was investigated at various conditions In the temperature range of 40-70$\^{C}$ and pH range of 6.0-9.5. The D-AAT was produced with recombinant E. coli BL21, which hosted the chimeric plasmid pTLK2 harboring the D-AAT from the novel thermophilic Bacillus sp. LK-2. The enzyme reaction was shown to follow the Ping Pong Bi Bi mechanism. The K$\_$m/ values for D-aspartic acid and pyruvate were 4.38 mar and 0.72 mM, respectively. It was observed that competitive inhibition by D-alanine, the product of this reaction, was evident with the inhibition constant K$\_$i/ value of 0.1 mM. A unique feature of this reaction scheme is that the decorboxylation of oxaloacetic acid, one of the products, spontaneously produces pyruvate. Therefore, only a catalytic amount of pyruvate is necessary for the enzyme conversion reaction to proceed. A typical time-course kinetic study skewed that D-alanine up to 88 mM could be produced from 100 mM of D-aspartic acid with a molar yield of 1.0.
When butyl rubber dissolved in toluene was used as a binder of carbon powder, carbon paste showed a mechanical hardness due to the fast volatility of the solvent just after the electrode fabrication. With a view of validating its quantitative electrochemical behaviors, its kinetic parameters, e.g. the symmetry factor, the exchange current density, the capacity of the double layer, the Michaelis constant, the time constant and other factors were investigated. Our experimental facts indicated that butyl rubber is available for a promising binder of carbon powder.
Acetohydroxyacid synthase (AHAS, EC 2. 2. 1. 6) is the enzyme that catalyses the first step in the common pathway of the biosynthesis of the branched chain amino acids, valine, leucine and isoleucine. For the first time, the AHAS gene from Bacillus anthracis was cloned into the expression vector pET28a(+), and was expressed in the E. coli strain BL21(DE3). The purified enzyme was checked on 12% SDS-PAGE to be a single band with molecular weight of 65 kDa. The optimum pH and temperature for B. anthracis AHAS was at pH 7.5 and 37 oC, respectively. Kinetic parameters of B. anthracis were as follows: Km for pyruvate, K0.5 for ThDP and Mg2+ was 4.8, 0.28 and 1.16 mM respectively. AHAS from B. anthracis showed strong resistance to three classes of herbicides, Londax (a sulfonylurea), Cadre (an imidazolinone), and TP (a triazolopyrimidine). These results indicated that these herbicides could be used in the search for new anti-bacterial drugs.
The activity of $Ca^{2+}$calmodulin (CaM)-dependent protein kinase Ia (CaM kinase Ia) is shown to be regulated through direct phosphorylation by CaM kinase I kinase (CaMK IK). In the present study, three distinct CaMKIK peaks were separated from Q-Sepharose colunm chromatography of pig brain homogenate using a Waters 650 Protein Purification System. The purified CaMKIK from the major peak potently and rapidly enhanced CaM kinase Ia activity, reaching a maximal stimulation within 2min at the concentrations of 12-15nM. The activated state of CaM kinase Ia is characterized by a markedly enhanced $V_{max}4 as well as significantly decreased $K_m\;and\;K_a$ values toward peptide substrate and CaM, respectively. These observations suggest the activation process of CaM kinase Ia. The phosphorylation of CaM kinase Ia by CaMKIK may induce its conformational change responsible for the alterations in the kinetic properties, which ultimately leads to the rapid enzyme activation.
Jin, Young Min;Kim, Jeong Yoon;Lee, Soo Min;Tan, Xue Fei;Park, Ki Hun
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.62
no.1
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pp.81-86
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2019
A yellow resin (gamboge) from Garcinia hanburyi has been widely used as folk medicine due to its antibacterial and antitumor activities. We isolated four ${\alpha}$-glucosidase inhibitory compounds from the methanol extract of gamboge. The compounds (1-4) were identified as gambogoic acid (1), moreollic acid (2), gambogic acid (3), and 10-methoxygambogenic acid (4), respectively through spectroscopic data including 2D-NMR and HREIMS. All compounds were examined in the enzyme inhibition assay against ${\alpha}$-glucosidase to identify their inhibitory potencies and kinetic behavior. All compounds (1-4) showed enzyme inhibition against ${\alpha}$-glucosidase, but the activity was significantly affected by the methoxy group on C-10 of ring A and pentenyl pyran moiety of ring D. For example, compound 1 ($IC_{50}=41.4{\mu}M$) bearing pyran ring eight times effective that 4 ($IC_{50}=350.6{\mu}M$) having geranyl group itself. Most active compound was found out to be gambogoic acid (1) which was analyzed most abundant metabolite in gamboge by LC-ESI-MS/MS. In kinetic study, compounds 1 and 2 were proved as noncompetitive inhibitors.
Effect of a nonionic surfactant, Tween 20 on the adsorption and kinetic mechanism for the hydrolysis of a microcrystalline cellulose, Avicel PH 101, by endoglucanase Ⅰ (Endo Ⅰ) and exoglucanase Ⅱ (Exo Ⅱ) isolated from Trichoderma viride were studied. The Langmuir isotherm parameters, amount of maximum adsorption (Amax) and adsorption equilibrium constant (Kad) for the adsorption, were obtained in the presence and the absence of nonionic surfactant. On the addition of Tween 20, the Kad and Amax values of Exo Ⅱ were decreased, while those of Endo Ⅰ were not affected. These indicate that the adsorption affinity of Exo Ⅱ on the cellulose is weakened by nonionic surfactant, and the surfactant enhanced desorption of Exo Ⅱ from insoluble substrate. The enzymatic hydrolysis of the cellulose can be described by two parallel pseudo-first order reactions using the percentages of easily (Ca) and hardly (Cb) hydrolyzable cellulose in Avicel PH 101 and associated rate constants (ka and kb). The Ca value was increased by adding Tween 20 for all enzyme samples (Exo Ⅱ, Endo Ⅰ and their 1:1 mixture) implying that the low-ordered crystalline fraction in the cellulose may be partly dispersed by surfactant. The ka value was not affect by adding Tween 20 for all enzyme samples (Exo Ⅱ, Endo Ⅰ and their 1:1 mixture). The kb value of Exo Ⅱ was increased by adding Tween 20, while that of Endo Ⅰ was not affected. This suggests that the surfactant helps the Exo Ⅱ desorb from microcrystalline cellulose, and increase the hydrolysis rate. These results were show that the increase of hydrolysis of cellulose by the nonionic surfactant is due to both the activation of Exo Ⅱ and partial defibrillation of the cellulose.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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