Lim, Chae Ryeong;Lee, Ha young;Uhm, Ki-Nam;Kim, Hyung Kwoun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.32
no.5
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pp.672-679
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2022
Microbial lipases are used widely in the synthesis of various compounds due to their substrate specificity and position specificity. 4-Ethyl malate (4-EM) made from diethyl malate (DEM) is an important starting material used to make argon fluoride (ArF) photoresist. We tested several microbial lipases and found that Photobacterium lipolyticum M37 lipase position-specifically hydrolyzed DEM to produce 4-EM. We purified the reaction product through silica gel chromatography and confirmed that it was 4-EM through nuclear magnetic resonance analysis. To mass-produce 4-EM, DEM hydrolysis reaction was performed using an enzyme reactor system that could automatically control the temperature and pH. Effects of temperature and pH on the reaction process were investigated. As a result, 50℃ and pH 4.0 were confirmed as optimal reaction conditions, meaning that M37 was specifically an acid lipase. When the substrate concentration was increased to 6% corresponding to 0.32 M, the reaction yield reached almost 100%. When the substrate concentration was further increased to 12%, the reaction yield was 81%. This enzyme reactor system and position-specific M37 lipase can be used to mass-produce 4-EM, which is required to synthesize ArF photoresist.
An amphiphilic phase enzyme reaction was used to synthesize alkyl glucosides from glucose and alkyl alcohol with immobilized ${\beta}$-glucosidase using four glycol ether cosolvents(monoglyme, diglyme, 2-methoxyethanol, and 1,4-dioxane). Monoglyme was shown to be the best cosolvent for the amphiphilic phase medium composed of water/cosolvent/alkyl alcohol admixture. To obtain high yield of alkyl glucoside by amphiphilic phase enzyme reaction, hydrophilicity-hydrophobicity of amphiphilic media and enzyme microenvironment was optimized from the viewpoints of substrate solubility, enzyme activity, water activity, and dynamic equilibrium between glucose alcoholysis and glucoside hydrolysis. Under optimum reaction conditions, the highest concentrations of hexyl, octyl, decyl, and dodecyl glucosides were 18.2, 9.68, 7.27, and 6.03g/L, respectively.
Tannase (Tan410) from a soil metagenomic library was immobilized on different supports, including mesoporous silica SBA-15, chitosan, calcium alginate, and amberlite IRC 50. Entrapment in calcium alginate beads was comparatively found to be the best method and was further characterized. The optimum pH of the immobilized Tan410 was shifted toward neutrality compared with the free enzyme (from pH 6.4 to pH 7.0). The optimum temperature was determined to be $45^{\circ}C$ for the immobilized enzyme and $30^{\circ}C$ for the free enzyme, respectively. The immobilized enzyme had no loss of activity after 10 cycles, and retained more than 90% of its original activity after storage for 30 days. After immobilization, the enzyme activity was only slightly affected by $Hg^{2+}$, which completely inhibited the activity of the free enzyme. The immobilized tannase was used to remove 80% of tannins from a green tea infusion on the first treatment. The beads were used for six successive runs resulting in overall hydrolysis of 56% of the tannins.
Agmatine iminohydrolase (EC 3.5.3.12) catalyzes the hydrolysis of agmatine into putrescine. The enzyme seems to be one of the critical enzymes in putrescine biosynthesis. The enzyme was purified to homogeneity from Panax ginseng C.A. Meyer by combined method of ammonium sulfate 1 fractionation, DEAR anion exchange column, hydroxyapatite column and agmatine carboxyhexyl Sepharose 4B affinity column. The molecular weight estimated by native pore gadient polyacrylamide gel electrophoresis was 71, 000 Dalton, while that estimated by SDS-PAGE was 70, 000 Dalton, indicating a monomeric enzyme. The optimal pH and temperature were 9.0 and 37$^{\circ}C$, respectively. The Km and 1 Vmax for agmatine were 8.3 mM and 14.4 nmole/hr, respectively. Heat stability of this enzyme was high. The enzyme was observed to be inhibited by polyamines such as putrescine, cadaverine, spermidine and spermine. Especially, putrescine was a potent inhibitor of the purified enzyme. These results suggest that polyamines could be important in growth regulation of Panax ginseng C.A. Meyer.
This study was undertaken to determine the effects of cultural conditions on cell growth and casein hydrolysis for cell production in order to add Micrococcus sp. LL3 as a potential agent for industrial application with aim of shortening ripening period and improving flavor. Optimum temperature for cell growth and caseinolysis was $30^{\circ}C$ and $37{\circ}C$, respectively, and optimum pH was 7.0. The enzyme remained stable up to $50^{\circ}C$. Hydrolysis patterns of casein were also observed on SDS-PAGE. Both ${\alpha}-casein$ and ${\beta}-casein$ were totally hydrolysed by enzymes from Micrococcus sp. LL3 during culture. A preferential attack on ${\beta}-casein$ was observed. Production of aminopeptidase which cleaved polypeptides was the highest in early stationary phase during cell growth.
Objective: The objective of this study was to optimize ultrasonic-assisted enzymatic hydrolysis conditions, including enzyme-to-substrate (E/S) ratio, pH, and temperature, for producing porcine liver hydrolysates (PLHs) with the highest 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) free radical scavenging activity by using response surface methodology (RSM). Methods: The study used RSM to determine the combination of hydrolysis parameters that maximized the antioxidant activity of our PLHs. Temperature ($40^{\circ}C$, $54^{\circ}C$, and $68^{\circ}C$), pH (8.5, 9.5, and 10.5), and E/S ratio (0.1%, 2.1%, and 4.1%) were selected as the independent variables and analyzed according to the preliminary experiment results, whereas DPPH free radical scavenging activity was selected as the dependent variable. Results: Analysis of variance showed that E/S ratio, pH, and temperature significantly affected the hydrolysis process (p<0.01). The optimal conditions for producing PLHs with the highest scavenging activity were as follows: E/S ratio, 1.4% (v/w); temperature, $55.5^{\circ}C$; and initial pH, 10.15. Under these conditions, the degree of hydrolysis, DPPH free radical scavenging activity, ferrous ion chelating ability, and reducing power of PLHs were 24.12%, 79%, 98.18%, and 0.601 absorbance unit, respectively. The molecular weight of most PLHs produced under these optimal conditions was less than 5,400 Da and contained 45.7% hydrophobic amino acids. Conclusion: Ultrasonic-assisted enzymatic hydrolysis can be applied to obtain favorable antioxidant hydrolysates from porcine liver with potential applications in food products for preventing lipid oxidation.
A $\alpha$-l, 4-D-glucan maltohydrolase $(\beta$-amylase), secreted by the mesophilic aerobic bacterium Bacillus polymyxa No.26, was purified and characterized. The enzyme production was increased after a logarithmic phase of bacterial growth and paralleled with the onset of bacterial sporulation. By applying anion exchange chromatography and gel filtration the enzyme was purified 16.7-fold and had a specific activity of 285.7 units/mg. Two enzyme activities were eluted on a column of DEAE-Sephadex chromatography, and they were designated as E-I for a major enzyme peak and E-II for a minor peak. Of them, E-I enzyme peak was further purified by using gel chromatography. The molecular mass of this enzyme was determined to be 64, 000 daltons and consisted of a single subunit, showing an isoelectric point of 8.9. The enzyme was able to attack specifically the $\alpha$-l, 4-glycosidic linkages in soluble starch and caused its complete hydrolysis to maltose and $\beta$-limited dextrin. This amylolytic enzyme displayed a temperature optimum at $45^\circ{C}$ and a pH optimum at 7.0. The amino acid composition of the purified enzyme was quite similar to the other bacterial $\beta$-amylases reported. Surprisingly, the purified enzyme from this aerobe only exhibited hydrolytic activity on soluble starch, not on starch granules. The degradation of from starch by $\beta$-amylase was greatly stimulated by pullulanase addition. These results differentiated from other $\beta$-amylases reported. Based on a previous result that showed the enzyme system involves in effective degradation of raw starch granules, this result strongly suggested that the purified enzyme (E-I) can be a synergistic part of starch granule-digestion and E-II plays a crucial role in digestion of starch granules.
In, Man-Jin;Gwon, Su-Yeon;Chae, Hee-Jeong;Kim, Dong-Chung;Kim, Dong-Ho
Applied Biological Chemistry
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v.50
no.4
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pp.304-307
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2007
An efficient production method of spirulina extract was developed by enzymatic treatment using cell lytic and proteolytic enzymes. The suitable dosage of Tunicase, a cell lytic enzyme, was found to be 2.0% (w/w). Proteolytic enzymes were screened to obtain high solid recovery and spirulina extraction (SE) index, which indicates nucleic acid-related substances content. Among the seven tested proteases, Esperase was selected and optimal dosage of this enzyme was 2.0% (w/w). The solid recovery and SE index of simultaneous treatment and co-treatment using optimal dosages of Tunicase and Esperase were greatly similar, respectively. However, co-treatment had the effect of shortening total hydrolysis time. The SE index and solid recovery of co-treatment were significantly enhanced by 75% $(11.4{\rightarrow}20.0)$ and 45% $(45.2%{\rightarrow}65.3%)$, respectively, than those of the non-treated extracts.
The dried cinnamon was extracted with enzymes, salts, sugars and additives in order to find the most effective extraction material. Enzymatic hydrolysis of cinnamon suspension with cellulase, hemicellulase, pectinase, ${\beta}-1.4-glucosidase$, tannase and lipase showed a little increase of their cinnamic aldehyde contents. Solid yield, antioxidant activity and degree of browning were increased in hemicellulase treatment. Acid and alkali extraction of cinnamon showed a some increase in solid yields and antioxidant activity was increased by addition of glucose and Na-ascorbate. Cinnamic aldehyde contents and degree of browning were increased in extraction with Na-citrate addition.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.10
no.1
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pp.194-199
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2009
An efficient production method of food-grade heamatococcus extract was developed based on stepwise enzymatic hydrolysis. In the first step, Haematococcus pluvialis cells hydrolysis carried out with commercially available exopeptidase(Flavourzyme) and endopeptidase (Alcalase), resulted in increased astaxanthin content. In the second step, proteolytic hydrolyzed H. pluvialis cells treated with hetero-polysaccharides hydrolytic enzyme (Viscozyme). By two-stage treatments using Alcalase and Flavourzyme and Viscozyme, the highest astaxanthin content was obtained. The astaxanthin content was remarkably enhanced by 320% $(529{\mu}g/g\rightarrow2,256{\mu}g/g)$ than that of the non-treated extract. And then, antioxidative activities determined by DPPH method were increased with increasing the astaxanthin content in haematococcus extract prepared by enzymatic hydrolysis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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