This study was conducted to examine whether the parthenogenetic mouse embryonic stem (P-mES) cells can differentiate into functional cardiomyocytes in vitro similar to (mES) cells. p-mES04 and IVF-derived mES03 cells were cultured by suspension culture for 4 days. The formed embryoid bodies (EBs) were treated with 0.75% dimethyl-sulfoxide (DMSO) for further 4 days (4-/4+), and then plated onto gelatin coated culture dish. The appearance of contracting cardiomyocytes from the P-mES04 and mES03 cells was examined for 30 days. The highest cumulative frequency was detected at days 13 (69.83%) and 22 (61.3%), respectively. By immunocytochemistry, beating P-mES04 cells were positively stained with muscle specific anti-sarcomeric a-actinin Ab and cardiac specific anti-cardiac troponin I Ab similar to contracted mES03 cells. When the expression of cardiac muscle-specific genes was analyzed by RT-PCR, beating P-mES04 cells were expressed cardiac specific L-type calcium channel, a1C, cardiac myosin heavy chain a, cardiac muscle heavy polypeptide $7{\beta}$, GATA binding protein 4 and atrial natriuretic factor, but not expressed skeletal muscle specific L-type calcium channel, a1S, which was similar to male adult heart cells and mES03-derived beating cardiomyocytes. The result demonstrates that the P-mES cells can be used as an alternative for the study on the characteristic analysis of in vitro cardiomyocyte differentiation from the ES cells.
Because the average human life span has recently increased, the number of patients who are diagnosed with neurodegenerative diseases has escalated. Recent advances in stem cell research have given us access to unlimited numbers of multi-potent or pluripotent cells for screening for new drugs for neurodegenerative diseases. Neural stem cells (NSCs) are a good model with which to screen effective drugs that increase neurogenesis. Recent technologies for human embryonic stem cells (ESCs) or induced pluripotent stem cells (iPSCs) can provide human cells that harbour specific neurodegenerative disease. This article discusses the use of NSCs, ESCs and iPSCs for neurodegenerative drug screening and toxicity evaluation. In addition, we introduce drugs or natural products that are recently identified to affect the stem cell fate to generate neurons or glia.
Objective: This study was to examine in vitro neural cell differentiation pattern of the genetically modified human embryonic stem cells expressing tyrosine hydroxylase (TH). Materials and Methods: Human embryonic stem (hES, MB03) cell was transfected with cDNAs cording for TH. Successful transfection was confirmed by western immunoblotting. Newly transfected cell line (TH#2/MB03) was induced to differentiate by two neurogenic factors retinoic acid (RA) and b-FGF. Exp. I) Upon differentiation using RA, embryoid bodies (EB, for 4 days) derived from TH#2/MB03 cells were exposed to RA ($10^{-6}M$)/AA ($5{\times}10^{-2}mM$) for 4 days, and were allowed to differentiate in N2 medium for 7, 14 or 21 days. Exp. II) When b-FGF was used, neuronal precursor cells were expanded at the presence of b-FGF (10 ng/ml) for 6 days followed by a final differentiation in N2 medium for 7, 14 or 21 days. Neuron differentiation was examined by indirect immunocytochemistry using neuron markers (NF160 & NF200). Results: After 7 days in N2 medium, approximately 80% and 20% of the RA or b-FGF induced Th#2/MB03 cells were immunoreactive to anti-NF160 and anti-NF200 antibodies, respectively. As differentiation continued, NF200 in RA treated cells significantly increased to 73.0% on 14 days compared to that in b-FGF treated cells (53.0%, p<0.05), while the proportion of cells expressing NF160 was similarly decreased between two groups. However, throughout the differentiation, expression of TH was maintained ($\sim$90%). HPLC analyses indicated the increased levels of L-DOPA in RA treated genetically modified hES cells with longer differentiation time. Conclusion: These results suggested that a genetically modified hES cells (TH#2/MB03) could be efficiently differentiated in vitro into mature neurons by RA induction method.
Embryonic stem cells(ES cells) are derived from the inner cell mass(ICM) of blastocysts, which have the potentials to remain undifferentiated, to proliferate indefinitely in vitro, to differentiate into the derivates of three embryonic germ layers. ES cells are an attractive model system for studying the initial developmental decisions and their molecular mechanisms during embryogenesis. Additionally, ES cells of significant interest to those characterizing the various gene functions utilizing transgenic and gene targeting techniques. We investigated the effects of reproductive hormones, gonadotropins(GTH) and steroids on the induction of differentiation and expressions of their receptor genes using the newly established mouse ES cells. We collected the matured blastocysts of inbred mice C57BL/6J after superovulation and co-cultured with mitotically inactivated STO feeder cells. After 5 passages, we confirmed the expression alkaline phosphatase(Alk P) activity and SSEA-1, 3, 4 expressions. The protocol devised for inducing ES differentiation consisted of an aggregation steps, after 5 days as EBs in hormone treatments(FSH, LH, E$_2$, P$_4$, T) that allows complex signaling to occur between the cells and a dissociation step, induced differentiation through attachment culture during 7 days in hormone treatments. Hormone receptors were not increased in dose-dependent manner. All hormone receptors in ES cells treated reproductive hormones were expressed lower than those of undifferentiated ES cell except for LHR expression in E$_2$-treated ES cells group. After hormone induced differentiation, at least some of the cells are not terminally differentiated, as is evident from the expression of Oct-4, a marker of undifferentiated. To assess their differentiation by gene expression, we analyzed the expression of 7 tissue-specific markers from all three germ layers. Most of hormone-treated group increased in the expression of gata-4 and $\alpha$ -fetoprotein, suggesting reproductive hormone allowed or induced differentiation of endoderm.
This study was conducted to investigate the effects of Woohwangcheungsimweun (ox bezoar), deer antlers, and wild ginseng on induction of cardiomyocyte differentiation using the established mouse embryonic stem (ES) cells. The expression of atrial natriuretic peptide (ANP) was highest in Woohwangcheungsimweun treatment group. The expression of rabbit anti-GATA-4(GATA-4) and troponin (TnI) were highest in wild ginseng and Woohwangcheungsimweun treatment groups, respectively. Fluorescence activated cell sorting (FACS) analysis showed that the expression of ANP was highest in Dimethyl sulfoxide(DMSO) and Woohwangcheungsimweun treatment groups. The expression of GATA-4 was relatively high in wild ginseng treatment group. The expression of TnI was highest in Woohwangcheungsimweun treatment group. In the gene expression analysis, DMSO greatly inhibited GATA-4 expression to 25% of control. Woohwangcheungsimweun treatment caused to increase cTnI and cardiac ANP expression significantly. Wild ginseng extract upregulated GATA-4 gene expression. In conclusion, DMSO widely used as cardiomyocyte differentiation inducer did not show significant effects on the expression of ANP, GATA-4 and TnI in this study. Woohwangcheungsimweun showed upregulation of ANP and TnI expression. Wild ginseng extract showed greater effects than DMSO on GATA-4 expression. These results might suggest that the combination of Woohwangcheungsimweun and wild ginseng extract treatment can be expected to increase expressions of all three genes.
Hesperidin has been shown to possess a potential inhibitory effect on vascular formation in endothelial cells. However, the fundamental mechanism for the anti-angiogenic activity of hesperidin is not fully understood. In the present study, we evaluated whether hesperidin has anti-angiogenic effects in mouse embryonic stem cell (mES)-derived endothelial-like cells, and human umbilical vascular endothelial cells (HUVECs), and evaluated their mechanism via the AKT/mammalian target of rapamycin (mTOR) signaling pathway. The endothelial cells were treated with several doses of hesperidin (12.5, 25, 50, and $100{\mu}M$) for 24 h. Cell viability and vascular formation were analyzed using the 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide and tube formation assay, respectively. Alteration of the AKT/mTOR signaling in vascular formation was analyzed by western blot. In addition, a mouse aortic ring assay was used to determine the effect of hesperidin on vascular formation. There were no differences between the viability of mES-derived endothelial-like cells and HUVECs after hesperidin treatment. However, hesperidin significantly inhibited cell migration and tube formation of HUVECs (P<0.05) and suppressed sprouting of microvessels in the mouse aortic ring assay. Moreover, hesperidin suppressed the expression of AKT and mTOR in HUVECs. Taken together, these findings suggest that hesperidin inhibits vascular formation by blocking the AKT/mTOR signaling pathways.
The goal of cell stem cell technology is to produce a viable and genetically normal animal. To achieve this goal various laboratories have followed 2 different pathways beginning with either the culture of 1) single or pooled ICMs grown with or without a feeder layer or 2) single or pooled 16-20 cell stage embryos grown with a feeder layer. Also, thus far embryonic cell cultures or lines have been established by several methods including loose suspension culture for short-term cultures and more commonly murine or bovine fibroblast feeder layers for long-term culture. Pluripotent lines have been derived from 16-cell through blastocyst inner cell mass stages. The efficiency of establishing cell lines and cell proliferation apper to be affected by the number of cells or embryos starting the line. Most attempts to produce offspring from long term STO cell feeder layer cultured ICM or morulae derived ES cells have resulted in pregnancy failure in the first trimester when ES cells were used in cuclear transfer or have failed to retain ES cells in the progeny produced by chimerization. The exception is 1 chimeric fetus from use of morula ES cells in the chimerization with early embryonic cells. There is much to be learned yet about ES cell culture requirements for maintenance of totipotency. If bovine ES cell lines loose imprinting pattern and totipotency with long-term culture and passage as suggested for mouse ES cells, we may be limited to the use of short-term cultures for multiplication of embryos and efficient production of transgenic animals. No bovine ES cell system has yet met all of the criteria indicated for a totipotent ES cell line.
Porcine embryonic stem (ES) cells have a great potential as tools for transgenic animal production and studies of regulation of differentiation genes. Although several studies showed successful derivation of porcine ES-like cells, these cells were not maintained long-term in culture. Therefore, this study was conducted to establish porcine pluripotent ES-like cells using in vivo fertilized embryos and to maintain these cells in long term culture. Porcine ES-like cells from in vivo embryos obtained by immunosurgery or whole explant culture were successfully cultured for over 56 passages. Morphology of porcine ES-like cells was flat-shaped with a monolayer type colony. These cells stained for alkaline phosphatase throughout the culture. Furthermore, porcine ES-like cells reacted with antibodies against Oct-4, SSEA-1, SSEA-4, Tra-1-60, and Tra-1-81, which are typical markers of undifferentiated stem cells. To characterize the ability of porcine ES-like cells to differentiate into three germ layers, embryoid body formation was induced. After plating of these cells, porcine ES-like cells were spontaneously differentiated into various cell types of all three germ layers. In addition, porcine ES-like cells were successfully derived from IVF blastocysts in media containing human recombinant basic fibroblast growth factor.
Lee, Jeoung Eun;Chung, Young Gie;Eum, Jin Hee;Lee, Yumie;Lee, Dong Ryul
BMB Reports
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v.49
no.4
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pp.197-198
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2016
Although three different research groups have reported successful derivations of human somatic cell nuclear transfer-derived embryonic stem cell (SCNT-ESC) lines using fetal, neonatal and adult fibroblasts, the extremely poor development of cloned embryos has hindered its potential applications in regenerative medicine. Recently, however, our group discovered that the severe methylation of lysine 9 in Histone H3 in a human somatic cell genome was a major SCNT reprogramming barrier, and the overexpression of KDM4A, a H3K9me3 demethylase, significantly improved the blastocyst formation of SCNT embryos. In particular, by applying this new approach, we were able to produce multiple SCNT-ES cell lines using oocytes obtained from donors whose eggs previously failed to develop to the blastocyst stage. Moreover, the success rate was closer to 25%, which is comparable to that of IVF embryos, so that our new human SCNT method seems to be a practical approach to establishing a pluripotent stem cell bank for the general public as well as for individual patients.
An embryonic stem (ES) cell-based in vitro model system was examined to determine whether a simple differentiation of embryoid bodies (EB) in the suspension medium is useful to dissect early erythropoiesis. Characteristics of the differentiating EBs were monitored for their differentiation potential to generate hematopoietic cell types by general morphology, benzidine staining and two-step colony assays, and expressivity of several erythroid marker genes by the RT-PCR analysis for total cellular RNA prepared from the differentiating EBs. Every ematopoietic lineage cells were generated from the differentiating EBs with reproducible frequencies, similar to the other sophisticated differentiation protocols. Furthermore, the globin gene switching in differentiating ES cells paralleled the sequence of events found in the mouse embryo, and such that their expression was activated by at least 12 hrs later than those of erythroid-specific transcription factors, GATA-1 and Tal-1 The erythropoietic differentiation program initiated reproducibly and efficiently in this simple differentiation system in a suspension culture, such that this system may be useful for dissection of the molecular events of early erythropoiesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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