Identifying Hoxc8 target genes is at the crux of understanding the Hoxc8-mediated regulatory networks underlying its roles during development. However, identification of these genes remains difficult due to intrinsic factors of Hoxc8, such as low DNA binding specificity, context-dependent regulation, and unknown cofactors. Therefore, as an alternative, the present study attempted to test whether the roles of Hoxc8 could be inferred by simply analyzing genes frequently coexpressed with Hoxc8, and whether these genes include putative target genes. Using archived gene expression datasets in which Hoxc8 was differentially expressed, we identified a total of 567 genes that were positively coexpressed with Hoxc8 in at least four out of eight datasets. Among these, 23 genes were coexpressed in six datasets. Gene sets associated with extracellular matrix and cell adhesion were most significantly enriched, followed by gene sets for skeletal system development, morphogenesis, cell motility, and transcriptional regulation. In particular, transcriptional regulators, including paralogs of Hoxc8, known Hox co-factors, and transcriptional remodeling factors were enriched. We randomly selected Adam19, Ptpn13, Prkd1, Tgfbi, and Aldh1a3, and validated their coexpression in mouse embryonic tissues and cell lines following $TGF-{\beta}2$ treatment or ectopic Hoxc8 expression. Except for Aldh1a3, all genes showed concordant expression with that of Hoxc8, suggesting that the coexpressed genes might include direct or indirect target genes. Collectively, we suggest that the coexpressed genes provide a resource for constructing Hoxc8-mediated regulatory networks.
Yang, Seoyeon;Lee, Ji-Yeon;Hur, Ho;Oh, Ji Hoon;Kim, Myoung Hee
BMB Reports
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v.51
no.9
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pp.450-455
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2018
Tamoxifen (TAM) is commonly used to treat estrogen receptor (ER)-positive breast cancer. Despite the remarkable benefits, resistance to TAM presents a serious therapeutic challenge. Since several HOX transcription factors have been proposed as strong candidates in the development of resistance to TAM therapy in breast cancer, we generated an in vitro model of acquired TAM resistance using ER-positive MCF7 breast cancer cells (MCF7-TAMR), and analyzed the expression pattern and epigenetic states of HOX genes. HOXB cluster genes were uniquely up-regulated in MCF7-TAMR cells. Survival analysis of in slico data showed the correlation of high expression of HOXB genes with poor response to TAM in ER-positive breast cancer patients treated with TAM. Gain- and loss-of-function experiments showed that the overexpression of multi HOXB genes in MCF7 renders cancer cells more resistant to TAM, whereas the knockdown restores TAM sensitivity. Furthermore, activation of HOXB genes in MCF7-TAMR was associated with histone modifications, particularly the gain of H3K9ac. These findings imply that the activation of HOXB genes mediate the development of TAM resistance, and represent a target for development of new strategies to prevent or reverse TAM resistance.
Hox proteins containing DNA-binding homedomain act as transcription factors important for anteroposterior body patterning during vertebrate embryogenesis. However, the precise mechanisms by which signal pathways are transduced to regulate the Hox gene expression are not clear. In the course of an attempt to isolate an upstream regulatory factor(s) controlling Hox genes, protein kinase B alpha (Akt1) has been identified as a putative regulator of Hox genes through in silico analysis (GEO profile). In the Gene Expression Omnibus (GEO) dataset GDS1784 at the NCBI (National Center for Biotechnology Information) site, Hox genes were differentially expressed depending on the presence or absence of Akt1. Since it was not well known how Akt1 regulates the specific Hox genes, whose transcription was reported to be regulated by epigenetic modifications such as histone acetylation, methylation etc., the expression of Gcn5, a histone acetyltransferase (HAT), was analyzed in wild type (WT) as well as in $Akt1^{-/-}$ mouse embryonic fibroblast (MEF) cells. RT-PCR analysis revealed that the amount of Gcn5 mRNA was similar in both WT and $Akt1^{-/-}$ MEFs. However, the protein level of Gcn5 was significantly increased in $Akt1^{-/-}$ MEF cells. The half life of Gcn5 was 1 hour in wild type whereas 8 hours in $Akt1^{-/-}$ MEF. These data all together, indicate that Gcn5 is post-transcriptionally down-regulated and the protein stability is negatively regulated by Akt1 in MEF cells.
In order to understand the effects of all-trans-RA on palate development, RA was injected into the abdominal cavity of pregnant mice and then the embryos were taken in the following days and analyzed morphologically as well as molecular biologically. When RA was administered at the stage of E11 or E15, the overall craniofacial development was retarded. The length from jaw to eye was shortened, compared to that of normal group. When the E11 embryos were exposed to RA, cleft lip was also found along with the cleft palate. In vitro palate culture experiment also revealed that RA caused cleft palate. When RT-PCR was performed, early stage administration of RA at E11 inhibited the upregulation of Hoxa7 expression at E15 through E17. Whereas in control group, high level of Hoxa7 expression was detected in the palate of E15 to E17. In the case of Bax, the expression was decreased from E16, while remaining constant in control group. When TUNEL analysis was performed following the RA treatment at E15, TUNEL positive cells were detected in the mesenchymal cells as well as epithelial cells of palatal shelves of E16 and in E17 embryos. Whereas in normal control, TUNEL positive cells were observed mostly at the epithelium around the nasal cavity and oral cavity where rugae is made. These results altogether indicate that exposure to RA during palate development causes facial deformity including cleft palate and cleft lip by modulating the expression of homeotic genes such as Hoxa7 as well as an apoptosis-related gene, Bax, and thus malregulating the apoptosis.
Kim, Sang-Hoon;Lee, Ji-Yeon;Park, Sung-Joo;Kim, Myoung-Hee
Biomedical Science Letters
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v.17
no.3
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pp.231-238
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2011
During pregnancy, stress induces maternal glucocorticoid secretion, which in turn is known to affect structural malformation, retardation of growth, reduced birth weight of the fetus. As Hox genes are master transcription factors which fulfill critical roles in embryonic development, we aimed to explore the possibility that alterations of the Hox gene expression might be involved in stress-induced malformation. The pregnant mice were injected with dexamethasone at a dose of 1 mg/kg or 10 mg/kg on day 7.5, 8.5 and 9.5 p.c. (post coitum), as well as saline as control. Embryos of E11.5 and E18.5 were obtained by sacrificing pregnant animals. Weight and crown-rump length (CRL) were measured. RT-PCR was performed to examine the Hox gene expression levels. Embryos given dexamethasone at day 7.5~9.5 p.c. had small CRL and weighed less both in E11.5 and E18.5. The percentage of embryos showing abnormalities was high in groups received high dose of dexamethasone. To define the molecular basis for abnormal embryonic development, we analyzed the Hox gene expression pattern and found that many Hox genes display altered expression. Effects of prenatal dexamethasone treatment on embryonic development might be associated with the aberrant Hox gene expression.
To understand the effect of prenatal stress on sex-specific changes in embryonic and placental growth, a synthetic glucocorticoid (dexamethasone) was administered intraperitoneally at a dosage of 1 mg/kg body weight (BW) (Dex1) or 10 mg/kg BW (Dex10) to pregnant ICR mice at the gestational days 7.5, 8.5 and 9.5 post coitum (p.c.). Embryos and placentas were then harvested at days 11.5 and 18.5 p.c., and their body weight and size were measured following the determination of sex through PCR using Sry specific primers in tail tissues. As a result, female embryos presented reduced fetal body weight and size in Dex1- and Dex10-treated groups than those of control group at the embryonic day 11.5 p.c. Interestingly, the growth seems to be recovered at day 18.5 as there was no difference in growth between control and dexamethasone treated groups. In the case of males, Dex1 induced a decrease in fetal weight in day 11.5 and this pattern was maintained until day 18.5, whereas their growth was not affected by Dex10 treatment. Placental growth showed similar patterns to fetal growth in both sexes but the extent of reduction was not statistically significant in most cases. Placental weights in Dex1- and Dex10-treated group were decreased significantly in male only. The results imply that the effect of prenatal stress is largely sex dependent due to different strategies for growth and survival in a stressful environment.
Oh, Ji Hoon;Lee, Youra;Kong, Kyoung-Ah;Kim, Myoung Hee
Biomedical Science Letters
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v.19
no.3
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pp.266-269
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2013
Hox genes encode transcription factors important for anterior-posterior body patterning at early stages of embryonic development. However, the precise mechanisms by which signal pathways are stimulated to regulate Hox gene expression are not clear. In the previous study, protein kinase B alpha (Akt1) has been identified as a putative upstream regulator of Hox genes, and Akt1 has shown to regulate Gcn5, a prototypical histone acetyltransferase (HAT), in a negative way in mouse embryonic fibroblast (MEF) cells. Since the activity of HAT such as the CBP/p300, and PCAF (a Gcn5 homolog), was down-regulated by Akt through a phosphorylation at the Akt consensus substrate motif (RXRXXS/T), the amino acid sequence of Gcn5 protein was analyzed. Mouse Gcn5 contains an Akt consensus substrate motif as RQRSQS sequence while human Gcn5 does not have it. In order to see whether Akt1 directly binds to Gcn5, immunoprecipitation with anti-Akt1 antibody was carried out in wild-type (WT) mouse embryonic fibroblast (MEF) cells, and then western blot analysis was performed with anti-Akt1 and anti-Gcn5 antibodies. Gcn5 protein was detected in the Akt1 immunoprecipitated samples of MEFs. This result demonstrates that Akt1 directly binds to Gcn5, which might have contributed the down regulation of the 5' Hoxc gene expressions in wild type MEF cells.
In this study the effect of extenders and temperatures on sperm viability and fertilizing capacity of boar sperm during long-term storage was investigated. Acrosomal integrity, membrane integrity, motility and hypo-osmotic resistance were evaluated by fluorescence and light microscopy. An in vitro fertilization test was performed to assess the fertilizing capacity of stored spermatozoa. The five diluents tested were ranked according to their ability to maintain sperm functional parameters and Zorlesco (ZO) extender with BSA or with PVA instead of BSA produced the best results. Zorlesco extender substituted with PVA (ZO+PVA) was found to maintain motility both at 15 and 20$^{\circ}C$. within 5 days of storage, but the quality of semen stored at 15$^{\circ}C$ decreased thereafter as compared to semen stored at 20$^{\circ}C$ Semen stored at 5$^{\circ}C$ demonstrated rapid loss of motility already within 24 h. Both fertilization and cleavage of semen stored at 20$^{\circ}C$ in ZO substituted with PVA instead of BSA did not change significantly until day 8 of storage. It is therefore concluded that PVA can be used to substitute for BSA and 20$^{\circ}C$ was more suitable than 15$^{\circ}C$ for boar semen storage, and in vitro fertilizing capacity of spermatozoa was maintained for at least 8 days in ZO+PVA at 20$^{\circ}C$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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