Kim, Min-Jung;Jung, See-Sub;Park, Jong-Sel;Kim, Jang-Eok;Lee, Young-Deuk;Kim, Jeong-Han;Oh, Chang-Hwan
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.37
no.2
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pp.304-307
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2005
Multiresidue method was set up for the simultaneous determination of various residual pesticides in potatoes and carrots, which was analyzed by gas chromatography-electron capture detector/nitrogen phosphorus detector. Method consisted with acetone/acetonitrile (9 : 1) extraction and dichloromethane partition, followed by florisil cartridge purification with hexane/dichloromethane/acetonitrile (50 : 45 ; 5) elution. Among 197 pesticides (194 kinds) spiked to food materials, 143 and 155 pesticides were recovered over 70% on potatoes and carrots, respectively. Nineteen pesticides including bromacil, cyproconazole, were not detected in water and sample matrices. Matrix components may affect the low detections of 25 pesticides such as benfuracarb, bitertanol from potatoes and 16 pesticides such as bitertanol, carbosulfan from Carrots. Some pesticides including dichlobenil, fluoroimide and iprodione were highly detected from one or both matrices even though they were not detected from water.
BACKGROUND: This study focused on the development of an analytical method about dichlorprop (DCPP; 2-(2,4-dichlorophenoxy)propionic acid) which is a plant growth regulator, a synthetic auxin for agricultural commodities. DCPP prevents falling of fruits during their growth periods. However, the overdose of DCPP caused the unwanted maturing time and reduce the safe storage period. If we take fruits with exceeding maximum residue limits, it could be harmful. Therefore, this study presented the analytical method of DCPP in agricultural commodities for the nation-wide pesticide residues monitoring program of the Ministry of Food and Drug Safety. METHODS AND RESULTS: We adopted the analytical method for DCPP in agricultural commodities by gas chromatograph in cooperated with Electron Capture Detector(ECD). Sample extraction and purification by ion-associated partition method were applied, then quantitation was done by GC/ECD with DB-17, a moderate polarity column under the temperature-rising condition with nitrogen as a carrier gas and split-less mode. Standard calibration curve presented linearity with the correlation coefficient ($r^2$) > 0.9998, analysed from 0.1 to 2.0 mg/L concentration. Limit of quantitation in agricultural commodities represents 0.05 mg/kg, and average recoveries ranged from 78.8 to 102.2%. The repeatability of measurements expressed as coefficient of variation (CV %) was less than 9.5% in 0.05, 0.10, and 0.50 mg/kg. CONCLUSION(S): Our newly improved analytical method for DCPP residues in agricultural commodities was applicable to the nation-wide pesticide residues monitoring program with the acceptable level of sensitivity, repeatability and reproducibility.
The aim of this study was to determine the methylmercury (MeHg) levels in abyssal fish species. The MeHg in the fishes was extracted with hydrochloric acid and toluene and then purified using an L-cysteine solution. The extract was analyzed with a gas chromatography-electron capture detector (GC-${\mu}ECD$) with a thermon Hg-capillary column. The detection limit and the recovery of the method were 0.002 and 84.2-98.5% (mean, 93.4%), respectively. The MeHg content in 492 abyssal fishes ranged from 0.037 to 2.009 mg/kg. The levels of MeHg [range, mg/kg (mean)] were significantly dependent on fish species and presented as the following; 0.157-2.009 (0.546) in Scalloped hammerhead shark, 0.211-0.878 (0.501) in Blue shark, 0.121-0.993 (0.482) in Spiny dogfish, 0.243-0.658 (0.397) in Salmon shark, 0.074-1.958 (0.353) in Blacktip shark, 0.038-0.807 (0.302) in Southern hake, 0.099-0.511 (0.300) in Scorpion fish, and 0.037-0.133 (0.067) in Ling. The monitoring results showed that the estimated weekly intake of MeHg from sharks, Southern hake, and Ling were lower than the provisional tolerable weekly intake recommended by the Joint FAO/WHO expert committee on food additives.
Kim, Sung-Dan;Cho, Tae-Hee;Han, Eun-Jung;Park, Seoung-Gyu;Han, Chang-Ho;Jo, Han-Bin;Choi, Byung-Hyun
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.40
no.2
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pp.123-128
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2008
The MRLs (maximum residue limits) of DDT (DDD and DDE) in fresh ginseng, dried ginseng, and steamed red ginseng are set as low as 0.01 mg/kg, 0.05 mg/kg, and 0.05 mg/kg, respectively. Therefore, this study was undertaken to develop a simple and highly sensitive analysis method, as well as to reduce interfering ginseng matrix peaks, for the determination of DDT isomers (o,p'-DDE, p,p'-DDE, o,p'-DDD, p,p'-DDD, o,p'-DDT, and p,p'-DDT) in fresh ginseng, dried ginseng, and steamed red ginseng at the 0.01 mg/kg level. The method used acetonitrile extraction according to simultaneous analysis, followed by normal-phase Florisil solid-phase extraction column clean-up. The purification method entailed the following steps: (1) dissolve the concentrated sample extract in 7 mL hexane; (2) add 3 mL of $H_2SO_4$; (3) vigorously shake on avortex mixer; (4) cetrifuge at 2000 rpm for 5 min; (5) transfer 3.5 mL of the supernatant to the Florisil-SPE (500 mg/6 mL);and (6) elute the SPE column with 1.5 mL of hexane and 10 mL of ether/hexane (6:94). The determination of DDT isomers was carried out by a gas chromatography-electron capture detector (GC-${\mu}$ECD). The hexane and ether/hexane (6:94) eluate significantly removed chromatographic interferences, and the addition of 30% $H_2SO_4$ to the acetonitrile extract effectively reduced many interfering ginseng matrix peaks, to allow for the determination of the DDT isomers at the 0.01 mg/kg level. The recoveries of the 6 fortified (most at 0.01 mg/kg) DDT isomers from fresh ginseng, dried ginseng, and steamed red ginseng ranged from 87.9 to 99.6%. The MDLs (method detection limits) ranged from 0.003 to 0.009 mg/kg. Finally, the application of this method for the determination of DDT isomers is sensitive, rapid, simple, and inexpensive.
Samples (river water, tap water, soil, sediment, fish and shellfish) collected in Downstream Area of Nakdong River were analyzed for organochlorine pesticides by G.C. equipped with electron capture detector. Residue levels of organochlorine pesticides in the river water and tap water ranged from less than detection limit (ND) to 56ppt. Total BHC concentration in the river water and tap water were found to increase in summer and decrease in winter. The variation appeared to be related to rain fall. ${\alpha}-BHC\;and\;{\beta}-BHC$ concentration in the soil were ND-3.3ppb and ND-769.7ppb, respectively. ${\alpha}-BHC\;and\;{\beta}-BHC$ concentration in the sediment were ND-2.0ppb and ND-409.9ppb, respectively. Concentration factor of total BHC in the sediment ranged from 83 to 3213. In fish, Carasssus carassius and shellfish, Anodonta woodiana(Lea) the concentration factor of ${\beta}-BHC$ and total BHC were 2,609, 435 and 3,261, 375, respectively.
BACKGROUND: Residual organochlorine pesticides (OCPs) are chemical substances that persist in the environment, bioaccumulate through the food web, and pose a risk of causing adverse effect to human health and the environment. They were designated as persistent organic pollutants (POPs) by Stockholm Convention. Greenhouse strawberry is economic crop in agriculture, and its cultivation area and yield has been increased. Therefore, we tried to investigate the POPs residue in greenhouse soil and strawberry.METHODS AND RESULTS: Extraction and clean-up method for the quantitative analysis of OCPs was developed and validated by gas chromatography (GC) with electron capture detector (ECD). The clean-up method was established using the modified quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe(QuEChERS) method for OCPs in soil and strawberry. Limit of quantitation (LOQ) and recovery rates of OCPs in greenhouse soil and strawberry were 0.9-6.0 and 0.6-0.9 μg/kg, 74.4-115.6 and 75.6-88.4%, respectively. The precision was reliable sincerelative standard deviation (RSD) percentage (0.5-3.7 and 2.9-5.2%) was below 20, which was the normal percent value. The residue of OCPs in greenhouse soil was analyzed by the developed method, and dieldrin, β-endosulfan and endosulfan sulfate were detected at 1.6-23, 2.2-28.4 and 1.8-118.6 μg/kg, respectively. Those in strawberry were not detected in all samples.CONCLUSION: Dieldrin, β-endosulfan and endosulfan sulfate in a part of investigated greenhouse soil were detected. But those were not detected in investigated greenhouse strawberry. These results showed that the residue in greenhouse soil were lower level than bioaccumulation occurring.
BACKGROUND: To investigate the dissipation patterns of 3 pesticides, azoxystrobin, difenoconazole and iprodione, on green garlic after field treatment pesticides were treated as foliar treatment by single application at recommended and double the recommended rates. METHODS AND RESULTS: Residue samples were harvested at 0, 1, 2, 5, 7 and 10 days post-treatment for azoxystrobin and 0, 1, 2, 5, 7, 10, 15 and 21 days post-treatment for difenoconazole and iprodione. After preparation the fortified samples were extracted and analyzed by gas chromotography-electron capture detector (GC-ECD) to determine the residue levels. Recoveries ranged from 87 to 109% for azoxystrobin, difenoconazole and iprodione at two different levels. The limit of Quantification (LOQ) values were 0.002 mg/kg for azoxystrobin and difenoconazole and 0.01 mg/kg for iprodione. CONCLUSION(S): Half-lives of azoxystrobin, difenoconazole and iprodione in green garlic after treatment were 1.2, 3.8 and 3.2 days at recommended and 1.4, 3.3 and 3.2 at double the recommended rate, respectively. Residue level of azoxystrobin, difenoconazole and iprodione in green garlic were below the maximum residue limits (MRLs) at 0 day, 0 day and 5 days, respectively. Therefore, these pesticide were considered that residues was satisfied to the requirement of domestic trade related to the consumer safety.
The optimum conditions for the residue analysis of hydroxyanilide fungicide fenhexamid on cucumber, strawberry and grape were investigated by gas chromatography equipped with electron capture detector (GC-ECD) and the residual amount was determined by sprayed days before harvest. Each samples were extracted with acetone, filtered and concentrated to 50 mL. The concentrated extracts were transferred to dichloromethane and then thoroughly concentrated. The concentrated phase was loaded on the filtration column stuffed with silica gel and purified with acetone:hexane (5:95, 15:85, v/v) mixed solvent. The regression equation and linearity of the standard calibration curves between 0.05~2.00 ng were as follows : cucumber; Y=312.40X+10.26, $R^2=0.9996$, strawberry; Y=313.33X+5.54, $R^2=0.9998$, grape; Y=253.27X-2.23, $R^2=0.9994$. From the standard additional experiments with 0.10 mg/L and 0.40 mg/L, the average recoveries of cucumber, strawberry and grape were 94.8%, 88.1% and 93.7%, respectively and the detection limits were all the same as 0.01 mg/L. Residual amounts in crops were ranged from 0.01 to 0.58 mg/L.
Total mercury and methylmercury concentrations were determined in 15 commonly consumed aquatic food species using total mercury analyzer and gas chromatography with electron capture detector. The mean total mercury and methylmercury concentrations (mg/kg) were 0.088 and 0.034 in mackerel, 0.061 and 0.016 in hair tail, 0.030 and 0.005 in yellow croaker, 0.032 and 0.008 in Alaska pollock, 0.059 and 0.023 in eastern catfish, 0.110 and 0.045 in snakehead, 0.030 and 0.011 in Japanese common squid, 0.026 and 0.009 in common octopus, 0.035 and 0.008 in swimming crab, 0.009 and not detected (ND) in oyster, 0.011 and ND in shortneck clam, 0.008 and ND in mussel, 0.018 and ND in sea mustard, 0.007 and ND in nori, and 0.019 and ND in sea tangle, respectively. The total weekly dietary intakes of total mercury and methylmercury were estimated, respectively, using food consumption data from diet surveys and the concentrations of total mercury and methylmercury from this study. They were $0.178\;{\mu}g/kg$ body weight (b.w.)/week (3.57% of provisional tolerable weekly intake (PTWI)) and $0.052\;{\mu}g/kg$ b.w./week (3.34% of PTWI) respectively, and all were within their respective PTWI set by the Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives (JECFA). Therefore, considering that the main contributor to mercury intake in the diet is aquatic foods and that the 15 aquatic food species examined in this study are highly consumed, it is concluded that the mercury levels in the foods measured in this study do not present a concern for consumer health.
Procedure for analysis of methylmercury in fish was developed, involving addition of HCl, extraction with toluene, and clean-up using L-cystein solution. Obtained extract is analyzed by gas chromatography with electron capture detector using Ulbon HR-Thermon-Hg column. Detection limit and recovery of the method were 0.005mg/kg (expressed as Hg), 98-107 (103%), respectively. Total mercury and methylmercury concentrations in 175 commercial fish samples ranged from [mean-max (mean), unit: mg/kg]: 0.014-1.200 (0.270) and 0.006-0.901 (0.168) in tuna-fish, 0.020-0.934 (0.323) and 0.012-0.553 (0.149) in martin-fish, 0.082-0.782 (0.391) and 0.040-0.436(0.201) in shark, 0,023-0.031 (0.026) and 0,013-0.018 (0.015) in salmon, 0.098-0.193 (0.133) and 0.031-0.015(0.090) in tilefish, and 0,031-0.214 (0.089) and 0.016-0.093 (0.042) in canned tuna respectively. No sample of analyzed fish exceeded 1.0mg/kg wet wt., limit for methylmercury established by Codex. In all species examined, estimated weekly intake was lower than Provisional Tolerable Weekly Intake recommended by the JECFA (the Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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