This study examined complex infections with various enteropathogens and the genetic diversity of bovine norovirus (BNoV) in 932 fecal samples from diarrheic calves in South Korea. Overall, seventeen (1.8%) of the samples tested positive for BNoV following RT-PCR examination. All BNoV-positive samples were co-infected with other intestinal pathogens, including bovine Rotavirus, Giardia, Cryptosporidium, and Escherichia coli. The genetic diversity of the BNoVs shared high nucleotide identity (98.1-99.5%) and amino acid homology (93.5-98.1%) with genotype 2 BNoV (GIII.2) strains. In conclusion, BNoV infections with GIII genotypes were detected in complex infections of diarrheic calves in South Korea.
Listeria (L.) monocytogenes in samples could not be detected occasioally by faster growth of other Listeria spp. especially L. innocua. The aim of this study was to develop the differential media and multiplex polymerase chain reaction (PCR) assays for the rapid detection of L. monocytogenes. L. monocytogenes colonies were characterized by their ${\beta}$-hemolysis with fluorescence under 366 nm UV light on the Listeria hemolysis agar (LHA). L. innocua, a species commonly present in foods, did not produce ${\beta}$-hemolysis on LHA. Therefore, one or more colonies of L. monocytogenes were easily distinguished from large populations of L. innocua. The multiplex PCR assays were developed to distinguish from L. monocytogenes and other Listeria spp. with two pairs of primers. The primers were designed in 16S rRNA and listeriolysin O gene for specific amplification of all members of the genus Listeria and L. monocytogenes, respectively. The multiplex PCR assays produced 560 and 938 bp products in L. monocytogenes; only 938 bp products in the genus Listeria. The multiplex PCR assays could detect as little as 50 pg of L monocytogenes DNA. These results indicated that the differential media and multiplex PCR assays might be useful diagnostic tools for the rapid detection of L. monocytogenes.
We have developed a polymerase chain reactionrestriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP) marker that can distinguish male-fertile (N) and male-sterile (S) cytoplasm in onions. The PCR-RFLP marker was located in a chloroplast psbA gene amplicon. Digesting the amplicons from different cytoplasm-containing varieties with the restriction enzyme MspI revealed that N-cytoplasm plants have a functional MspI site (CCGG), whereas the S-cytoplasm plants has a substitution in that site (CTGG), and thus no MspI target. The results obtained using this PCR-RFLP marker to distinguish between cytoplasmic male sterile factors in 35 onion varieties corresponded with those using a CMS-specific sequence-characterized amplified region (SCAR) marker. Moreover, the PCR-RFLP marker can identify N- ot S-cytoplasms in DNA sample mixtures in which they are in up to a 10-fold minority, indicating that use of the marker has high diagnostic precision. We also demonstrated the usefulness of the SNP detected in the psbA gene for high-throughput discrimination of CMS factors using Real-time PCR and a TaqMan probe assay.
Aim: This study assessed if onfFN mRNA in the peripheral blood of patients with DTC can identify individuals with metastatic disease. Methods: Comparison of onfFN mRNA was made among 3 groups: disease-free, lymph node metastasis, and distant metastasis using real-time RT-PCR on 5 ml blood samples from each DTC patient. Results: Fifty-one patients were included: 30 (59%) were disease-free; 7 (13.7%) had lymph node metastasis; and 14 (27.5%) had distant metastasis. OnfFN mRNA levels in the 3 groups were significantly different (P=0.001) but with a large overlap and the expression being highest in the disease-free group. Subgroup analysis of the metastatic groups did not show any effect of age, cell type, and serum TSH, Tg, and antiTg on onfFN mRNA. The within-run and between-run root mean square coefficients of variations were <2%. Conclusion: OnfFN mRNA in patients with DTC cannot identify those with metastatic disease.
In this study, we developed a rapid, sensitive and specific reverse-transcriptase loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) assay for detection of swine influenza viruse (SIV) including major subtypes of swine influenza viruses H1N1, H1N2 and H3N2, and a novel subtype of influenza A virus that accidentally infected in pig population. The RT-LAMP was completed in 40 min at $58^{\circ}C$ and the sensitivity of the RT-LAMP ($1copy/{\mu}L$) was 10-fold higher than conventional reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) ($10copy/{\mu}L$) and the same to real time RT-PCR ($1copy/{\mu}L$). Also, the result of the RT-LAMP can be confirmed without any detection system. Therefore, the RT-LAMP could be a alternative diagnostic method for SIV detection in national SIV monitoring system and clinical diagnostic laboratory in the future.
Background: The main goal of this study was to evaluate the diagnostic efficacy of reverse transcription-nested polymerase chain reaction (RT-nested PCR) in bronchial washing fluid with MAGE A1-6 common primers for the detection of lung cancers invisible by bronchoscopy. Methods: To determine the expression of MAGE A1-6 gene in 189 lung cancers diagnosed by conventional fluoroscopy-guided lung biopsy and 89 cancer-free controls, RT-nested PCR was performed in bronchial washing specimens. We analyzed MAGE A1-6 RT-nested PCR data according to tumor histology, stage, size, and compared them with cytological data. Results: 189 patients (111 cases in adenocarcinoma, 47 cases in squamous cell carcinoma, 22 cases in small cell lung carcinoma, and 9 cases in other cancers) and 89 benign patients were investigated. The expression of MAGE was performed by nested RT-PCR using common MAGE primer. Among 189 cancer patients, the expression rate of MAGE was 49.2%, and the positive predictive value was 89.4%. However, the expression rate of MAGE in patients with benign lesions was 12.4%. In peripheral lung cancer, the positive rate of MAGE expression was 57.4% in squamous cell carcinoma, 44.1% in adenocarcinoma and 59.1% in small cell lung cancer. Whereas the expression rate of bronchial washing cytology in peripheral lung cancer was 9.0% (p=0.011). Conclusion: MAGE RT-PCR in bronchial washing fluid gave us promising data for the detection of peripheral lung cancer. It could be a useful method for selecting diagnostic tools for peripheral lesions.
PCR detection of intestinal protozoa is often restrained by a poor DNA recovery or by inhibitors present in feces. The need for an extraction protocol that can overcome these obstacles is therefore clear. $QIAamp^{(R)}$ DNA Stool Mini Kit (Qiagen) was evaluated for its ability to recover DNA from oocysts/cysts directly from feces. Twenty-five Giardia-positive, 15 Cryptosporidium-positive, 15 Entamoeba histolytica-positive, and 45 protozoa-free samples were processed as control by microscopy and immunoassay tests. DNA extracts were amplified using 3 sets of published primers. Following the manufacturer's protocol, the kit showed sensitivity and specificity of 100% towards Giardia and Entamoeba. However, for Cryptosporidium, the sensitivity and specificity were 60% (9/15) and 100%, respectively. A series of optimization experiments involving various steps of the kit's protocol were conducted using Cryptosporidium-positive samples. The best DNA recoveries were gained by raising the lysis temperature to the boiling point for 10 min and the incubation time of the InhibitEX tablet to 5 min. Also, using a pre-cooled ethanol for nucleic acid precipitation and small elution volume ($50-100{\mu}l$) were valuable. The sensitivity of the amended protocol to Cryptosporidium was raised to 100%. Cryptosporidium DNA was successfully amplified by either the first or the second primer set. When applied on parasite-free feces spiked with variable oocysts/cysts counts, ${\approx}2$ oocysts/cysts were theoretically enough for detection by PCR. To conclude, the Qiagen kit with the amended protocol was proved to be suitable for protozoan DNA extraction directly from feces and support PCR diagnosis.
Mohammad Ismael Ibrahim Jebur;Narges Dastmalchi;Parisa Banamolaei;Reza Safaralizadeh
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제50권4호
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pp.253-261
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2023
Objective: Azoospermia (the total absence of sperm in the ejaculate) affects approximately 10% of infertile males. Despite diagnostic advances, azoospermia remains the most challenging issue associated with infertility treatment. Our study evaluated transition nuclear protein 2 (TNP2) and synaptonemal complex protein 3 (SYCP3) polymorphisms, azoospermia factor a (AZFa) microdeletion, and gene expression levels in 100 patients with azoospermia. Methods: We investigated a TNP2 single-nucleotide polymorphism through polymerase chain reaction (PCR) restriction fragment length polymorphism analysis using a particular endonuclease. An allele-specific PCR assay for SYCP3 was performed utilizing two forward primers and a common reverse primer in two PCR reactions. Based on the European Academy of Andrology guidelines, AZFa microdeletions were evaluated by multiplex PCR. TNP2, SYCP3, and the AZFa region main gene (DEAD-box helicase 3 and Y-linked [DDX3Y]) expression levels were assessed via quantitative PCR, and receiver operating characteristic curve analysis was used to determine the diagnostic capability of these genes. Results: The TNP2 genotyping and allelic frequency in infertile males did not differ significantly from fertile volunteers. In participants with azoospermia, the allelic frequency of the SYCP3 mutant allele (C allele) was significantly altered. Deletion of sY84 and sY86 was discovered in patients with azoospermia and oligozoospermia. Moreover, SYCP3 and DDX3Y showed decreased expression levels in the azoospermia group, and they exhibited potential as biomarkers for diagnosing azoospermia (area under the curve, 0.722 and 0.720, respectively). Conclusion: These results suggest that reduced SYCP3 and DDX3Y mRNA expression profiles in testicular tissue are associated with a higher likelihood of retrieving spermatozoa in individuals with azoospermia. The homozygous genotype TT of the SYCP3 polymorphism was significantly associated with azoospermia.
Background: With the introduction of Xpert MTB/RIF assay (Xpert), its incorporation into tuberculosis (TB) diagnostic algorithm has become an important issue. The aim of this study was to evaluate the performance of the Xpert assay in comparison with a commercial polymerase chain reaction (PCR) assay. Methods: Medical records of patients having results of both Xpert and AdvanSure TB/NTM real-time PCR (AdvanSure) assays using the same bronchial washing specimens were retrospectively reviewed. Results: Of the 1,297 patients included in this study, 205 (15.8%) were diagnosed with pulmonary TB. Using mycobacterial culture as the reference method, sensitivity of the Xpert assay using smear-positive specimens was 97.5%, which was comparable to that of the AdvanSure assay (96.3%, p=0.193). However, the sensitivity of the Xpert assay using smear-negative specimens was 70.6%, which was significantly higher than that of the AdvanSure assay (52.9%, p=0.018). Usng phenotypic drug susceptibility testing as the reference method, sensitivity and specificity for detecting rifampicin resistance were 100% and 99.1%, respectively. Moreover, a median turnaround time of the Xpert assay was 1 day, which was significantly shorter than 3 days of the AdvanSure assay (p<0.001). Conclusion: In comparison with the AdvanSure assay, the Xpert assay had a higher sensitivity using smear-negative specimens, a shorter turnaround time, and could reliably predict rifampin resistance. Therefore, the Xpert assay might be preferentially recommended over TB-PCR in Korean TB diagnostic algorithm.
Yong Ju, Jin;Dawon, Jo;Soon-Wo, Kwon;Samnyu, Jee;Jeong-Seon, Kim;Jegadeesh, Raman;Soo-Jin, Kim
The Plant Pathology Journal
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제38권6호
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pp.656-664
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2022
Pectobacterium odoriferum is the primary causative agent in Kimchi cabbage soft-rot diseases. The pathogenic bacteria Pectobacterium genera are responsible for significant yield losses in crops. However, P. odoriferum shares a vast range of hosts with P. carotovorum, P. versatile, and P. brasiliense, and has similar biochemical, phenotypic, and genetic characteristics to these species. Therefore, it is essential to develop a P. odoriferumspecific diagnostic method for soft-rot disease because of the complicated diagnostic process and management as described above. Therefore, in this study, to select P. odoriferum-specific genes, species-specific genes were selected using the data of the P. odoriferum JK2.1 whole genome and similar bacterial species registered with NCBI. Thereafter, the specificity of the selected gene was tested through blast analysis. We identified novel species-specific genes to detect and quantify targeted P. odoriferum and designed specific primer sets targeting HAD family hydrolases. It was confirmed that the selected primer set formed a specific amplicon of 360 bp only in the DNA of P. odoriferum using 29 Pectobacterium species and related species. Furthermore, the population density of P. odoriferum can be estimated without genomic DNA extraction through SYBR Green-based real-time quantitative PCR using a primer set in plants. As a result, the newly developed diagnostic method enables rapid and accurate diagnosis and continuous monitoring of soft-rot disease in Kimchi cabbage without additional procedures from the plant tissue.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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