This study contains the photocatalytic degradation of methyl-tert-butyl ether(MTBE), one of water-contaminating substances, into $CO_2$. Herein was investigated factors, kinetics, and reaction pathways related with MTBE degradation. This works is possible to be applied in the field of environmental remediation such as undergroundwater purification with optimized system configuration in the near future.
There are three plausible bioconversion pathways in biodegradation mechanism of capsaicinoids; first, side chain degradation through $\omega$-hydroxylation and $\beta$-oxidation, secondly, aromatic ring hydroxylation, and lastly, hydrolysis on the acidaraide linkage. In microbes, it was reported that capsaicin and its synthetic, analog, nonoylvanillylamide(NVA), could be metabolized to N-vanillylcarbamoylbutyric acid via $\omega$-hydroxylation and consecutive $\beta$-oxidations by Aspergillus niger. In order to broaden the scope of microbial degradation of capsaicinoids, over thirty strains of various fungi including Aspergillus, Penicillum, Mycotypha, Gliocladium, Paecilomyces, Byssoclamys, Conidiobolus, Thamnidium, and Entomophthora. It was observed that almost all the strains examined oxidized, the side chain of capsaicids as A. niger did. These observations strongly support the notion that side chain degradation is the most dominant pathway in the microbial degradation of capsaicinoids.
We first confirmed the involvement of MalQ (4-${\alpha}$-glucanotransferase) in Escherichia coli glycogen breakdown by both in vitro and in vivo assays. In vivo tests of the knock-out mutant, ${\Delta}malQ$, showed that glycogen slowly decreased after the stationary phase compared to the wild-type strain, indicating the involvement of MalQ in glycogen degradation. In vitro assays incubated glycogen-mimic substrate, branched cyclodextrin (maltotetraosyl-${\beta}$-CD: G4-${\beta}$-CD) and glycogen phosphorylase (GlgP)-limit dextrin with a set of variable combinations of E. coli enzymes, including GlgX (debranching enzyme), MalP (maltodextrin phosphorylase), GlgP and MalQ. In the absence of GlgP, the reaction of MalP, GlgX and MalQ on substrates produced glucose-1-P (glc-1-P) 3-fold faster than without MalQ. The results revealed that MalQ led to disproportionate G4 released from GlgP-limit dextrin to another acceptor, G4, which is phosphorylated by MalP. In contrast, in the absence of MalP, the reaction of GlgX, GlgP and MalQ resulted in a 1.6-fold increased production of glc-1-P than without MalQ. The result indicated that the G4-branch chains of GlgP-limit dextrin are released by GlgX hydrolysis, and then MalQ transfers the resultant G4 either to another branch chain or another G4 that can immediately be phosphorylated into glc-1-P by GlgP. Thus, we propose a model of two possible MalQ-involved pathways in glycogen degradation. The operon structure of MalP-defecting enterobacteria strongly supports the involvement of MalQ and GlgP as alternative pathways in glycogen degradation.
Birth weight and subsequent weight gain is of critical importance in the survival and performance of piglets on a commercial swine farm setting. Oropharyngeal microbiome could influence immunity, and feeding behavior thus impacting health and weight gain. We used 16S rRNA gene sequencing to profile the composition and predicted metabolic functionality of the oropharyngeal microbiota in 8 piglets (4 with a birthweight ≤ 1.0 kg and 4 with a birthweight ≥ 1.7 kg) at 11, 26, and 63 days of age. We found 9 genera that were significantly associated with average daily gain (ADG) at 11 days (false discovery rate, FDR < 0.05) and 26 days of age (FDR < 0.1), respectively. The microbial functional profile revealed several pathways associated with ADG (FDR < 0.05). Among these, pathways related to degradation of catechols showed a positive association with ADG at 11, 26, and 63 days of age, implying a potential to breakdown the host-derived catecholamines. We also noted that pathways related to the biodegradation of nucleosides and nucleotides increased with ADG during the pre-weaning phase, while those involved in their biosynthesis decreased. Our findings provide insights into the oropharyngeal microbial memberships and metabolic pathways that are involved in a piglet's weight gain. Thus, providing a basis for the development of strategies aimed at improving weight gain in pigs.
The ubiquitin-proteasome system and the autophagy lysosome system are the two major protein degradation machineries in eukaryotic cells. These two systems coordinate the removal of unwanted intracellular materials, but the mechanism by which they achieve this synchronization is largely unknown. The ubiquitination of substrates serves as a universal degradation signal for both systems. Our study revealed that the amino-terminal Arg, a canonical N-degron in the ubiquitin-proteasome system, also acts as a degradation signal in autophagy. We showed that many ER residents, such as BiP, contain evolutionally conserved arginylation permissive pro-N-degrons, and that certain inducers like dsDNA or proteasome inhibitors cause their translocation into the cytoplasm where they bind misfolded proteins and undergo amino-terminal arginylation by arginyl transferase 1 (ATE1). The amino-terminal Arg of BiP binds p62, which triggers p62 oligomerization and enhances p62-LC3 interaction, thereby stimulating autophagic delivery and degradation of misfolded proteins, promoting cell survival. This study reveals a novel ubiquitin-independent mechanism for the selective autophagy pathway, and provides an insight into how these two major protein degradation pathways communicate in cells to dispose the unwanted proteins. [BMB Reports 2015; 48(9): 487-488]
The ubiquitin-proteasome system (UPS) and autophagy are two major degradative pathways of proteins in eukaryotic cells. As about 30% of newly synthesized proteins are known to be misfolded under normal cell conditions, the precise and timely operation of the UPS and autophagy to remove them as well as their tightly controlled regulation, is so important for proper cell function and survival. In the UPS, target proteins are labeled by small proteins called ubiquitin, which are then transported to the proteasome complex for degradation. Alternatively, many greatly damaged proteins are believed to be delivered to the lysosome for autophagic degradation. Although these autophagy and UPS pathways have not been considered to be directly related, many recent studies proposed their close link and dynamic interconversion. In this review, we'll focus on the several regulatory molecules that function in both UPS and autophagy and their crosstalk. Among the proposed multiple modulators, we will take a closer look at the so-called main connector of UPS-autophagy regulation, p62. Last, the functional role of p62 in the mitophagy and its implication for the pathogenesis of Parkinson's disease, one of the major neurodegenerative diseases, will be briefly reviewed.
Hydroxybenzoic acids are the most important intermediates in the degradative pathways of various aromatic compounds. Microorganisms catabolize aromatic compounds by converting them to hydroxylated intermediates and then cleave the benzene nucleus with ring dioxygenases. Hydroxylation of the benzene nucleus of an aromatic compound is an essential step for the initiation and subsequent disintegration of the benzene ring. The incorporation of two hydroxyl groups is essential for the labilization of the benzene nucleus. Monohydroxybenzoic acids such as 2-hydroxybenzoic acid, 3-hydroxybenzoic acid, and 4-hydrosybenzoic acid, opr pyrocattechuic acid that are susceptible for subsequent oxygenative cleavage of the benzene ring. These terminal aromatic intermediates are further degraded to cellular components through ortho-and/or meta-cleavage pathways and finally lead to the formation of constituents of the TCA cycle. Many groups of microorganisms have been isolated as degraders of hydroxybenzoic acids with diverse drgradative routes and specific enzymes involved in their metabolic pahtway. Various microorganisms carry out unusual non-oxidative decarboxylation of aromatic acids and convert them to respective phenols which have been documented. Futher, Pseudomonas and Bacillus spp. are the most ubiquitous microorganisms, being the principal components of microflora of most soil and water enviroments.
Jeongmin Song;Junghee Sung;Kim, Young-Min;Gerben J. Zylstra;Kim, Eungbin
Journal of Microbiology
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제38권4호
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pp.245-249
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2000
Catabolic pathways for the degradation of various aromatics by Sphingomonas yanoikuyae Bl are intertwined, joining at the level of substituted benzoates, which are further degraded vita ring cleavage reactions. The mutant strain EK497, which was constructed by deleting a large DNA region containing most of the genes for biphenyl, naphthalene, m-xylene, and m-toluate degradation, was unable to grow on all of the aromatics tested except for benzoate as the sole source of carbon and energy.S. yanoikuyae EK497 was found to possess only catechol ortho-ring cleavage activity due to deletion of the genes for the meta-cleavage pathway. Wild-type S. yanoikuyae Bl grown on benzoate has both catechol orthoand meta-cleavage activity. However, m-xylene and m-toluate, which are metabolized through methylbenzoate, and biphenyl, which is metabolized through benzoate, induce only the meta-cleavage pathway, suggesting the presence of a substrate-dependent induction mechanism.
Two isolated strains, Comamonas testosteroni CPW301 and Arthrobacter ureafaciens CPR706, were able to use 4-chlorophenol (4-CP) as a sole carbon and energy source. CPW301 was found to degrade 4-CP via a meta-cleavage pathway in which the chloro-substituent was eliminated even when 4-chlorocatechol was cleaved by the catechol 2, 3-dioxygenase. In contrast, CPR706 removed chloride from 4-CP prior to the ring-fission reaction, producing hydroquinone as a transient intermediate during 4-CP degradation. CPR706 exhibited much higher tolerance for 4-CP than CPW301, which was indicated by the maximum degradable concentration and degradation rate.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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