Fucosyltransferase IV (FUT4) has been implicated in cell adhesion, motility, and tumor progression in human epidermoid carcinoma A431 cells. We previously reported that it promotes cell proliferation through the ERK/MAPK and PI3K/Akt signaling pathways; however, the molecular mechanisms underlying FUT4-induced cell invasion remain unknown. In this study we determined the effect of FUT4 on expression of matrix metalloproteinase (MMP)-12 induced by EGF in A431 cells. Treatment with EGF resulted in an alteration of cell morphology and induced an increase in the expression of MMP-12. EGF induced nuclear translocation of nuclear factor kB (NF-${\kappa}B$) and resulted in phosphorylation of $IkB{\alpha}$ in a time-dependent manner. In addition, ERK1/2 and p38 MAPK were shown to play a crucial role in mediating EGF-induced NF-${\kappa}B$ translocation and phosphorylation of $I{\kappa}B{\alpha}$ when treated with the MAPK inhibitors, PD98059 and SB203580, which resulted in increased MMP-12 expression. Importantly, we showed that FUT4 up-regulated EGF-induced MMP-12 expression by promoting the phosphorylation of ERK1/2 and p38 MAPK, thereby inducing phosphorylation/degradation of $I{\kappa}B{\alpha}$, NF-${\kappa}B$ activation. Base on our data, we propose that FUT4 up-regulates expression of MMP-12 via a MAPK-NF-${\kappa}B$-dependent mechanism.
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.149-149
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2017
The RING (Really Interesting New Gene) finger proteins are known to play crucial roles in various abiotic stresses in plants. In this study, we report on RING finger E3 ligase, ${\underline{O}ryza}$${\underline{s}ativa}$${\underline{s}alt$-, ${\underline{A}BA}$- and ${\underline{d}rounght}$ stress-${\underline{i}nduced}$ RING finger ${\underline{p}}rotein{\underline{1}}$ gene (OsSAD1). In vitro ubiquitination assay demonstrated that unlike OsSAD1, a single amino acid substitution ($OsSAD1^{C168A}$) of the RING domain showed no E3 ligase activity, supporting the notion that the activity of most E3s is specified by a RING domain. Result of Yeast-Two hybridization, In vivo protein degradation assay supports that OsSAD1 interacting with 3 substrate, OsSNAC2, OsGRAS44 and OsPIRIN1, and mediates proteolysis of 3 substrates via the 26S proteasome pathway. Subcellular localizations of OsSAD1 while approximately 62% of transient signals were detected in cytosol, 38% of signals were showed nucleus. However, transiently expression of OsSAD1 was detected in cytosol 30% while as 70% of nucleus under 200 mM salt treated rice protoplasts. Results of bimolecular fluorescence complementation (BiFC) showed that two nucleus-localized proteins (OsSNAC2 and OsGRAS44) interacted with OsSAD1 in the both cytosol and nucleus. Heterogeneous overexpression of OsSAD1 Heterogeneous overexpresssion of OsSAD1 in Arabidopsis exhibited sensitive phenotypes with respect to Salt-, mannitol-responsive seed germination, seedling growth. In ABA conditions, OsSAD1 overexpression plants showed highly tolerance phenotypes, such as root length and stomatal closure. Our findings suggest that the OsSAD1 may play a negative regulator in salt stress response by modulating levels of its target proteins.
Ha, Sun-Hwa;Jeong, Ye-Sol;Lim, Sun-Hyung;Kim, Jae-Kwang;Lee, Dong-Ho;Lee, Jong-Yeol;Kim, Young-Mi
Horticultural Science & Technology
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v.30
no.2
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pp.107-122
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2012
In plants, color is a powerful tool to attract insects and herbivores which act as pollinators and vehicles of seed dispersion. In particular, flower color has held key post for human with aesthetic value. Horticultural industry has developed methods to produce new and attractive color varieties in flowering plants. Carotenoids are one of the main pigments being responsible for red, orange, and yellow colors. Their biosynthetic pathway has been considered as a major target of metabolic engineering for color modification of flowers and fruits. Here, we review the diverse efforts to modify pigment phenotype by the control of carotenogenic gene expression and enzyme levels. Recent reports about regulating degradation and storage of carotenoids will be also summarized to help the creation of engineered flower with novel color phenotype which is not existed in nature.
Lu, Yue;Jeong, Yong-Tae;Li, Xian;Kim, Mi Jin;Park, Pil-Hoon;Hwang, Seung-Lark;Son, Jong Keun;Chang, Hyeun Wook
Biomolecules & Therapeutics
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v.21
no.6
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pp.435-441
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2013
Emodin, a naturally occurring anthraquinone derivative isolated from Polygoni cuspidati radix, has several beneficial pharmacologic effects, which include anti-cancer, anti-diabetic, and anti-inflammatory activities. In this study, the authors examined the effect of emodin on the production of proinflammatory cytokines, such as, tumor necrosis factor (TNF)-${\alpha}$ and interleukin (IL)-6, in mouse bone marrow-derived mast cells (BMMCs) stimulated with phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) plus the calcium ionophore A23187. To investigate the mechanism responsible for the regulation of pro-inflammatory cytokine production by emodin, the authors assessed its effects on the activations of transcriptional factor nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$) and mitogen-activated protein kinases (MAPKs). Emodin attenuated the nuclear translocation of (NF)-${\kappa}B$ p65 and its DNA-binding activity by reducing the phosphorylation and degradation of $I{\kappa}B{\alpha}$ and the phosphorylation of $I{\kappa}B$ kinase B (IKK). Furthermore, emodin dose-dependently attenuated the phosphorylations of MAPKs, such as, extracellular signal-regulated kinase 1/2 (ERK1/2), p38 MAP kinase, and the stress-activated protein kinases (SAPK)/c-Jun-N-terminal kinase (JNK). Taken together, the findings of this study suggest that the anti-inflammatory effects of emodin on PMA plus A23187-stimulated BMMCs are mediated via the inhibition of NF-${\kappa}B$ activation and of the MAPK pathway.
Activation of the epidermal growth factor receptor (EGFR) and downstream signaling pathways have been implicated in causing resistance to EGFR-targeted therapy in solid tumors, including the head and neck tumors. To investigate the mechanism of antiproliferation to EGFR inhibition in oral cancer, we compared EGFR tyrosine kinase inhibitor (Gefitinib, Iressa, ZD1839) with respect to its inhibitory effects on three kinases situated downstream of EGFR: MAPK, Akt, and glycogen synthase kinase-$3{\beta}$ (GSK-$3{\beta}$). We have demonstrated that ZD1839 induces growth arrest and apotosis in oral cancer cell lines by independent of EGFR-mediated signaling. An exposure of oral cancer cells to ZD1839 resulted in a dose dependent up-regulation of the cyclin-dependent kinase inhibitor p21 and p27, down regulation of cyclin D1, inactivation of GSK-$3{\beta}$ and of active MAPK. In resistant cells, GSK-$3{\beta}$ is constitutively active and its activity is negatively regulated primarily through Ser 9 phosphorylation and further enhanced by Tyr216 phosphorylation. These results showed that the resistance to the antiproliferative effects of ZD1839, in vitro was associated with uncoupling between EGFR and MAPK inhibition, and that GSK-$3{\beta}$ activation and degradation of its target cyclin D1 were indicators of high cell sensitivity to ZD1839. In conclusion, our data show that the uncoupling of EGFR with mitogenic pathways can cause resistance to EGFR inhibition in oral cancer.
The effect of a homolactic inoculant containing a blend of Lactobacillus plantarum, Pediococcus acidilactici and Enterococcus faecium or, the anionic surfactant, sodium dodecyl sulphate (SDS), alone or in combination on fermentation characteristics, aerobic stability and in situ DM, OM and NDF degradability of barley silage was investigated. Barley (Hordeum vulgare, L.) was harvested (45% DM), chopped and treated with water at 24 ml/kg forage (Control), inoculant at $1.09{\times}10^5$ cfu/g forage (I), SDS at 0.125% (wt/wt) of forage (S) or with the inoculant ($1.09{\times}10^5$ cfu/g) plus SDS (0.125% wt/wt; I+S). The treated forages were ensiled in triplicate mini silos and opened for chemical and microbiological analyses on d 1, 2, 3, 7, 14, 42 and 77. Silage samples from d 77 were opened and aerobically exposed for 7 d. The in situ rumen degradability characteristics of silage DM, OM and NDF were also determined. The terminal concentration of NDF in S and I+S was lower (p<0.001) than in other treatments. Lactate concentration was higher (p<0.001) and the rate and extent of pH decline were greater (p<0.001) in I and I+S than S and Control silages. A homolactic pathway of fermentation in I and I+S was evidenced by reduced (p<0.001) water-soluble carbohydrates concentration, higher lactate (p<0.01), lower acetate (p<0.01) and lower pH values (p<0.001) than in S and Control silages. All silages remained stable over 7 d of exposure to air as indicated by lower temperatures and moulds, and by non-detectable yeast populations. The treated silages had lower DM and OM degradability than in the Control but NDF degradation characteristics of I+S were improved compared to other treatments. It is concluded that the inoculant alone improved the fermentation characteristics whereas the combination of the inoculant with SDS improved both fermentation and NDF degradability of barley silage.
Kim, Sang-Hwan;Song, Young-Seon;Hwang, Sue-Yun;Min, Kwan-Sik;Yoon, Jong-Taek
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.26
no.3
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pp.334-342
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2013
Proteases and protease inhibitors play key roles in most physiological processes, including cell migration, cell signaling, and cell surface and tissue remodeling. Among these, the matrix metalloproteinase (MMPs) pathway is one of the most efficient biosynthetic pathways for controlling the activation of enzymes responsible for protein degradation. This also indicates the association of MMPs with the maturation of spermatozoa. In an attempt to investigate the effect of MMP activation and inhibitors in cultures with various hormones during sperm capacitation, we examined and monitored the localization and expression of MMPs (MMP-2 and MMP-9), tissue inhibitors of metalloproteinases (TIMP-2 and TIMP-3), as well as their expression profiles. Matured spermatozoa were collected from cultures with follicle-stimulating hormone (FSH), luteinizing hormone (LH), and Lutalyse at 1 h, 6 h, 18 h, and 24 h. ELISA detected the expression of MMP-2, MMP-9, TIMP-2, and TIMP-3 in all culture media, regardless of medium type (FSH-supplemented fertilization Brackett-Oliphant medium (FFBO), LH-supplemented FBO (LFBO), or Lutalyse-supplemented FBO (LuFBO)). TIMP-2 and TIMP-3 expression patterns decreased in LFBO and LuFBO. MMP-2 and MMP-9 activity in FBO and FFBO progressively increased from 1 h to 24 h but was not detected in LFBO and LuFBO. The localization and expression of TIMP-2 and TIMP-3 in sperm heads was also measured by immunofluorescence analysis. However, MMPs were not detected in the sperm heads. MMP and TIMP expression patterns differed according to the effect of various hormones. These findings suggest that MMPs have a role in sperm viability during capacitation. In conjunction with hormones, MMPs play a role in maintaining capacitation and fertilization by controlling extracellular matrix inhibitors of sperm.
The expression of BCL-2 interacting cell death suppressor (BIS), an anti-stress or anti-apoptotic protein, has been shown to be regulated at the transcriptional level by heat shock factor 1 (HSF1) upon various stresses. Recently, HSF1 was also shown to bind to BIS, but the significance of these protein-protein interactions on HSF1 activity has not been fully defined. In the present study, we observed that complete depletion of BIS using a CRISPR/Cas9 system in A549 non-small cell lung cancer did not affect the induction of heat shock protein (HSP) 70 and HSP27 mRNAs under various stress conditions such as heat shock, proteotoxic stress, and oxidative stress. The lack of a functional association of BIS with HSF1 activity was also demonstrated by transient downregulation of BIS by siRNA in A549 and U87 glioblastoma cells. Endogenous BIS mRNA levels were significantly suppressed in BIS knockout (KO) A549 cells compared to BIS wild type (WT) A549 cells at the constitutive and inducible levels. The promoter activities of BIS and HSP70 as well as the degradation rate of BIS mRNA were not influenced by depletion of BIS. In addition, the expression levels of the mutant BIS construct, in which 14 bp were deleted as in BIS-KO A549 cells, were not different from those of the WT BIS construct, indicating that mRNA stability was not the mechanism for autoregulation of BIS. Our results suggested that BIS was not required for HSF1 activity, but was required for its own expression, which involved an HSF1-independent pathway.
Seo, Jeongbin;Jung, Juneyoung;Jang, Dae Sik;Kim, Joungmok;Kim, Jeong Hee
Biomolecules & Therapeutics
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v.25
no.6
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pp.618-624
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2017
Betulinic acid (BA), a natural pentacyclic triterpene found in many medicinal plants is known to have various biological activity including tumor suppression and anti-inflammatory effects. In this study, the cell-death induction effect of BA was investigated in BV-2 microglia cells. BA was cytotoxic to BV-2 cells with $IC_{50}$ of approximately $2.0{\mu}M$. Treatment of BA resulted in a dose-dependent chromosomal DNA degradation, suggesting that these cells underwent apoptosis. Flow cytometric analysis further confirmed that BA-treated BV-2 cells showed hypodiploid DNA content. BA treatment triggered apoptosis by decreasing Bcl-2 levels, activation of capase-3 protease and cleavage of PARP. In addition, BA treatment induced the accumulation of p62 and the increase in conversion of LC3-I to LC3-II, which are important autophagic flux monitoring markers. The increase in LC3-II indicates that BA treatment induced autophagosome formation, however, accumulation of p62 represents that the downstream autophagy pathway is blocked. It is demonstrated that BA induced cell death of BV-2 cells by inducing apoptosis and inhibiting autophagic flux. These data may provide important new information towards understanding the mechanisms by which BA induce cell death in microglia BV-2 cells.
Aromatic hydrocarbons are known to be recalcitrant, so that they have been concerned as pollutant chemicals. Microorganisms play a major role in the breakdown and mineralization of these compounds. However, the kinetics of the biodegradation process may be much slower than desired from environmental consideration. The biodegradation of aromatic hydrocarbons is conducted by oxidation to produce catechol as a common intermediate which is metabolized for carbon and energy sources. In this study, a bacterial isolate capable of degrading several aromatic hydrocarbons was isolated from the contaminated wastewater of Yeocheon industrial complex. On the basis of biochemical characteristics and major cellular fatty acids, the isolate was identified as Pseudomonas putida Z104. The strain Z104 can utilize benzoate and catechol as the sole carbon and energy sources via a serial degradative pathway. The strain degraded actively 0.5 mM catechol in MM2 medium at pH 7.0 and 3$0^{\circ}C$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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