Alcaligenes sp. SH-69 can synthesize poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) from a single carbon source such as glucose. To clone the phaC gene from Alcaligenes sp. SH-69, a polymerase chain reaction was performed using the oligomers synthesized based on the conserved regions of the phaC genes from other bacteria. A PCR product (550 bp) was partially sequenced and the deduced amino acid sequence was found to be homologous to that of the phaC gene from Alcaligenes eutrophus. Using the PCR fragment Southern blotting of Alcaligenes sp. SH-69 genomic DNA digested with several restriction enzymes was carried out. To prepare a partial genomic library, about 5-Kb genomic DNA fragments digested with EcoRI, which showed a positive signal in the Southern blotting, were eluted from an agarose gel, ligated with pUC19 cleaved with EcoRI, and transformed into Escherichia coli. The partial library was screened using the PCR fragment as a probe and a plasmid, named pPHA11, showing a strong hybridization signal was selected. Restriction mapping of the insert DNA in pPHA11 was performed. Cotransformation into E. coli of the plasmid pPHA11 and the plasmid pPHA21 which has phaA and phaB from A. eutrophus resulted in turbid E. coli colonies which are indicative of PHA accumulation. This result tells us that the Alcaligenes sp. SH-69 phaC gene in the pPHA11 is functionally active in E. coli and can synthesize PHA in the presence of the A. eutrophus phaA and phaB genes.
Vibrio harveyi is a pathogenic marine bacterium causing systemic symptoms resulting in mass mortalities in fishes and shrimps in aquaculture. Outer membrane proteins(OMPs) are related to the pathogenicity and thus good targets for diagnosis and vaccination for Gram negative bacteria. Recently vaccination strategies using the OMPs have been suggested to control vibriosis in several fish species. In this study, we have isolated V. harveyi from diseased marine fishes from different regions of Korea and investigated genetic variations of four OMP genes including OmpK, OmpU, OmpV and OmpW. Consequently, OmpK and U genes could be divided into 3 subgroups of type I, II, III and type A, B, C, respectively, without any correlation with geographical regions and species while OmpV and W were highly homologous. OmpW gene of V. harveyi FP4138 was fully sequenced and predicted the deduced amino acid sequence to form ${\beta}-barrel$ with hydrophobic channel. Indeed, the immunogenicity of recombinant OmpW produced in Escherichia coli was assessed by vaccinating flounder. As a result, the high antibody response with antibody titer of $4.2{\pm}0.7$ and protection with relative percent survival of 60% against artificial infection of V. harveyi were demonstrated. This result indicates that OmpW is a virulence related factor and it can be a vaccine candidate to prevent a high mortality caused by V. harveyi infection in olive flounder, Paralichthys olivaceus.
An EREBP/AP2-type transcription factor (CaPFl) was isolated by DDRT-PCR following inoculation of soybean pustule pathogen Xanthomonas axonopodis pv. glycines Bra which induces HR on pepper leaves. Genomic Southern blot analysis revealed that the CaPFl gene is present as a single copy within the hot pepper genome. The deduced amino acid sequence of CaPFl has two potential nuclear localization signals, a possible acidic activation domain, and an EREBP/AP2 motif that could bind to a conserved cis- element present in promoter region of many stress-induced genes. The mRNA level of CaPFl was induced by both biotic and abiotic stresses. We observed higher-level transcripts in resistance-induced pepper tissues than diseased tissues. Expression of CaPFl is also induced upon various abiotic stresses including ethephon, MeJA, cold stress, drought stress and salt stress treatments. To study the role of CPFI in plant, transgenic Arabidopsis and tobacco plants which express higher level of pepper CaPFl were generated. Global gene expression analysis of transgenic Arabidopsis by cDNA microarray indicated that expression of CaPFl in transgenic plants affect the expression of quite a few GCC box and DRE/CRT box-containing genes. Furthermore, the transgenic Arabidopsis and tobacco plant, expressing CaPFl showed tolerance against freezing temperature and enhanced resistance to Pseudomonas syrnigae pv. tabaci. Taken together, these results indicated that CaPFl is a novel EREBP/AP2 transcription factor in hot pepper plant and it may has a significant role(s) in regulation of biotic and abiotic stresses in plant.
To investigate whether phospholipase D (PLD, EC 3.1.4.4) plays a role in adaptive response of post-harvest fruit to environment, a PLD gene was firstly cloned from grape berry (Vitis Vinifera L. cv. Chardonnay) using RT-PCR and 3'- and 5'-RACE. The deduced amino acid sequence (809 residues) showed 84.7% identity with that of PLD from Ricinus communis. The secondary structures of this protein showed the characteristic C2 domain and two active sites of a phospholipid-metabolizing enzyme. The PLD activity and its expression in response to heat acclimation were then assayed. The results indicated PLD was significantly activated at enzyme activity, as well as accumulation of PLD mRNA and synthesis of new PLD protein during the early of heat acclimation, primary suggesting that the grape berry PLD may be involved in the heat response in post-harvest grape berry. This work offers an important basis for further investigating the mechanism of post-harvest fruit adaptation to environmental stresses.
CaCDPK4, a full-length cDNA clone encoding Capsicum annuum calcium-dependent protein kinase 4, was isolated from chili pepper (Capsicum annuum L.). Deduced amino acid sequence of CaCDPK4 shares the highest homology with tobacco NpCDPK8 and chickpea CaCDPK2 with 79% identity. Genomic blot analyses revealed that CaCDPK4 is present as a single copy in pepper genome, but it belongs to a multigene family. CaCDPK4 was highly induced when pepper plants were inoculated with an incompatible bacterial pathogen. Induced levels of CaCDPK4 transcripts were also detected in pepper leaves by the treatment of ethephon, an ethylene-inducing agent, and high-salt stress condition. The bacterial-expressed GST-CaCDPK4 protein showed to retain the autophosphorylation activity in vitro. GUS expression driven by CaCDPK4 promoter was examined in transgenic Arabidopsis containing transcriptional fusion of CaCDPK4 promoter. GUS expression under CaCDPK4 promoter was strong in the root and veins of the seedlings. GW (-1965) and D3 (-1377) promoters conferred on GUS expression in response to inoculation of an incompatible bacterial pathogen, but D4-GUS (-913) and DS-GUS (-833) did not. Taken together, our results suggest that CaCDPK4 can be implicated on signal transduction pathway of defense response against an incompatible bacterial pathogen in pepper.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제13권1호
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pp.31-35
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2006
The ubiquitin conjugating enzyme 2 (E2) is core component of ubiquitin proteasome pathway (UPP) which represents a selective mechanism for intracellular proteolysis in eukaryotic cells. The E2 has been implicated in the intracellular transfer of ubiquitin to target protein. We show here the involvement of E2 in antiviral immune of Bombyx mori to Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV). In this study, mRNA fluorescent differential display PCR (FDD-PCR) was performed with BmNPV highly resistant silkworm strain NB and susceptible silkworm strain 306. At 24 h post BmNPV infection, FDD-PCR with the arbitrary primer AP34 showed that one cDNA band was down-regulated in the midgut of resistant strain, but highly expressed in susceptible strain. The deduced amino acid sequence of this cDNA clone share 99% identity with the recently published B. mori ubiquitin conjugating enzyme E2 (Genbank NO: DQ311351). Fluorescent quantitative PCR corroborated down regulation of E2 in resistant strain. We there conclude that BmNPV infection evokes strong response of susceptible strain including activation of UPP. BmNPV may evolve escape mechanisms that manipulate the UPP in order to persist in the infected host. In addition, the identification of down-regulation of E2 in resistant strain, as well as structure data, are essential to understanding how UPP operates in silkworm antiviral immune to BmNPV disease.
In March, 2013, twenty symptomatic freesia plants (10 plants of cultivar Shiny Lemon and 10 plants of cultivar Shiny Gold), with striking virus-like symptoms were collected in Cheongju, Korea. The plants showed chlorotic, coalescing, interveinal, whitish, necrotic, mosaic, mottling or dark brown-to-purple necrotic spots on leaves. Freesia crude sap was directly analyzed by transmission electron microscopy, which potyvirus particles as well as long virus-like particles were detected. Total RNA extracts were analyzed for the infection of Freesia sneak virus (FreSV) by reverse transcription (RT)-PCR with primers specific to FreSV coat protein (CP) gene based on the sequences of FreSV isolates (GenBank No. GU071089, FJ807730 and DQ885455), showing 9 of 20 plants were infected. All 1305bp RT-PCR products were cloned and sequenced. Comparisons of nucleotide and deduced amino acid sequences using BLAST and bioinformatics tools resulted in 99 to 100% sequence identity with FreSV isolates FOV, Virginia, and Italy, confirming FreSV in 9 symptomatic freesia plants. Of 9 determined cDNAs of FreSV isolates, sequences of 5 cDNA clones were identical (GenBank No. AB811437) and sequences of 4 cDNA clones were identical (GenBank No. AB811792). To our knowledge, this is the first report of FreSV from Freesia spp. in Korea.
Objectives Heat shock protein 90 (HSP90) is a highly conserved molecular chaperone important in the maturation of a broad spectrum of protein. In this study, an HSP90 gene was isolated from Asian paddle crab, Charybdis japonica, as a bio-indicator to monitor the marine ecosystem. Methods This work reports the responses of C. japonica HSP90 mRNA expression to cellular stress by endocrine disrupting chemicals (EDCs), such as bisphenol A (BPA) and 4-nonylphenol (NP) using real-time. reverse transcription polymerase chain reaction. Results The deduced amino acid sequence of HSP90 from C. japonica shared a high degree of homology with their homologues in other species. In a phylogenetic analysis, C. japonica HSP90 is evolutionally related with an ortholog of the other crustacean species. The expression of HSP90 gene was almost distributed in all the examined tissues of the C. japonica crab but expression levels varied among the different body parts of the crabs. We examined HSP90 mRNA expression pattern in C. japonica crabs exposed to EDCs for various exposure times. The expression of HSP90 transcripts was significantly increased in C. japonica crabs exposed to BPA and NP at different concentrations for 12, 24, 48 and 96 hours. The mRNA expression of HSP90 gene was significantly induced in a concentration- and time-dependent manner after BPA or NP exposures for 96 hours. Conclusions Taken together, expression analysis of Asian paddle crab HSP90 gene provided useful molecular information about crab responses in stress conditions and potential ways to monitor the EDCs stressors in marine environments.
Numerous virulence factors such as O antigen have been proposed to account for the fulminating and destructive nature of V. vulnificus infections. To better characterize the role of O antigen, a pmm gene encoding a phosphomannomutase was identified and cloned from V. vulnificus. The deduced amino acid sequence of the pmm was 42 to 71% similar to that reported from other Enterobacteriaceae. Functions of the pmm gene in virulence were assessed by the construction of an isogenic mutant, whose pmm gene was inactivated by allelic exchanges, and by evaluating its phenotype changes in vitro and in mice. The disruption of pmm resulted in a loss of more than 90% of phosphomannomutase, and reintroduction of recombinant pmm could complement the decrease of phosphomannomutase activity, indicating that the pmm gene encodes the phosphomannomutase of V. vulnificus. There was no difference in the $LD_50S$ of the wild-type and the pmm mutant in mice, but the $LD_50S$ observed by the mutant complemented with recombinant pmm were lower. Therefore, it appears that PMM is less important in the pathogenesis of V. vulnificus than would have been predicted by examining the effects of injecting purified LPS into animals, but it is not completely dispensable for virulence in mice.
Kim, Myoung-Ju;Chung, Hea-Jong;Park, Seung-Moon;Park, Sung-Goo;Chung, Dae-Kyun;Yang, Moon-Sik;Kim, Dae-Hyuk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제14권3호
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pp.620-627
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2004
On the foundation of a database of genome sequences and protein analyses, the ability to clone a gene based on a peptide analysis is becoming more feasible and effective for identifying a specific gene and its protein product of interest. As such, the current study conducted a protein analysis using 2-D PAGE followed by MALDI- TOF and ESI-MS to identify a highly expressed gene product of C. parasitica. A distinctive and highly expressed protein spot with a molecular size of 47.2 kDa was randomly selected and MALDI-TOF MS analysis was conducted. A homology search indicated that the protein appeared to be a fungal enolase (enol). Meanwhile, multiple alignments of fungal enolases revealed a conserved amino acid sequence, from which degenerated primers were designed. A screening of the genomic $\lambda$ library of C. parasitica, using the PCR amplicon as a probe, was conducted to obtain the full-length gene, while RT-PCR was performed for the cDNA. The E. coli-expressed eno 1 exhibited enolase enzymatic activity, indicating that the cloned gene encoded the C. parasitica enolase. Moreover, ESI-MS of two of the separated peptides resolved from the protein spot on 2-D PAGE revealed sequences identical to the deduced sequences, suggesting that the cloned gene indeed encoded the resolved protein spot. Northern blot analysis indicated a consistent accumulation of an eno1 transcript during the cultivation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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